ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 26.10.2023

Просмотров: 84

Скачиваний: 2

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.


Сульфат анилина. Из многочисленных модифика­ций рецептов реактива наиболее удобен принятый ГФ1Х (стр. 773): 5 частей сульфата анилина растворяют в 40 мл дистиллированной воды и 50 мл 50° спирта и разбавляют водой до 100 мл. Одревесневшие оболочки от реактива при­нимают ярко-желтую окраску. Прибавление к реактиву сер­ной кислоты усиливает окраску, которая очень устойчива. Аналогично действует солянокислый анилин.

Сафранин. Один из самых распространенных красителей па одревесневшие оболочки. Применяется в виде 0,5—1% раствора в 50° этиловом спирте. Реактив хранится в склянке с притертой пробкой. Препарат помещают в краску на пол­часа, затем промывают водой, переносят в 96° спирт для отмывания излишней краски и быстро промывают кислым спиртом (на 100 мл 96° спирта добавляют 2 капли соляной кислоты), который извлекает краску из всех тканей, кроме одревесневших. Препарат переносят в глицерин. Окраска одревесневших оболочек от сафранина розовая до малиново-красной. Интенсивность окраски зависит от степени одре­веснения.

Паранитроанилиы. 1 % водный раствор паранитроанилина быстро окрашивает одревесневшие ткани в оран­жевый цвет. После окраски объекты помещают в глицерин.

Реакции на опробковевтие и кутинизированные оболоч­ки. Xлор-цинк-йод. Реактив окрашивает пробку и кутикулу в желтый цвет до коричневого. Эта реакция, од­нако, не специфична, так как частично этим реактивом ок­рашиваются одревесневшие и ослизневшие оболочки.

Раствор Судана III(состав реактива см. раздел «Реакции на жиры). Окрашивает опробковевшие и кутини­зированные оболочки в оранжево-желтый цвет.

Реакции на крахмал. Крахмал в объектах следует на­блюдать в воде или сильно разбавленном глицерине, без на­гревания. Он находится в виде зерен различной формы и величины, характерных для каждого вида сырья; иногда крахмал находится в виде клейстера (например, в клубнях салепа), что зависит от способа заготовки сырья.

Единственной и вместе с тем классической реакцией на крахмал является йодная реакция. Для этой реакции можно применять раствор йода в спирте (если объект содержит значительное количество влаги), или в водном растворе йодида калия. Во всех случаях следует избегать больших концентраций йода.


Раствор йода (раствор Люголя). Приготовле­ние раствора см. раздел «Реактивы на целлюлозу». Крах­мальные зерна окрашиваются йодом в синий цвет, крах­мальный клейстер — в красновато-фиолетовый. Йодная реакция очень яркая, чувствительная, однако нестойкая, вследствие чего в постоянных препаратах се сохранить не удастся.

Реакции на инулин. Инулин можно видеть в препаратах (в глицерине или в концентрированном растворе хлоралгид­рата) в виде бесформенных, бесцветных, стекловидных глыбок, комков (смотреть без нагревания!). В свежих объектах, выдержанных в течение недели и более в 70° спирте или в глицерине, инулин имеет вид хорошо сформированных округлых сферокристаллов, обычно прилегающих к клеточ­ным стенкам. Дополнительная обработка спиртом усиливает формирование сферокристаллов; они имеют лучистое ра­диальное строение и концентрическую слоистость. Наличие инулина в лекарственном сырье можно обнаружить некото­рыми микрохимическими реакциями.

Спиртовой (15—20%) раствор α-нафтола или тимола (реактив Молиша). Препарат помещают в один из указанных реактивов, затем под края покровного стекла вводят 1—2 капли концентрированной серной кис­лоты; появляется розово-фиолетовое окрашивание (α-нафтол) или карминово-красное (тимол). Присутствие в срезе воды вызывает выпадение осадка, поэтому срезы лучше предварительно обсушить (можно полоской фильтровальной бумаги или осторожно подогреть на горелке). Указанные реактивы па полисахариды дают соответствующую реакцию и с крахмалом, поэтому при испытании на инулин всегда следует исключить присутствие крахмала по реакции с йодом.

Реакции на жиры. Для открытия жиров в лекарствен­ном сырье пользуются различными красителями. Однако эти красители совершенно так же окрашивают эфирные масла, смолы, кутинизированные оболочки, содержимое млечников. Поэтому при исследовании лекарственного сырья па содер­жание жиров необходимо установить их локализацию и про­вести другие пробы.

Судан IIIокрашивает капли жирного масла в оранже­во-красный цвет. Реактив состоит из 0,01 г анилиновой кра­ски Судан Ш, 5 г спирта и 5 г глицерина. Срезы помещают на несколько часов в реактив, затем промывают в 50е спир­те и переносят в глицерин. Для ускорения реакции препарат в Судане III можно нагреть, после чего вместо испаривше­гося реактива добавить под покровное стекло глицерин.

Алканин. Применяется спиртовой раствор корневищ алканы

, который окрашивает жиры в розовый или вишнево-красный цвет. Состав реактива: 0,5 г порошка корневищ алканы растворяют при нагревании в 20 мл 20% уксусной кислоты, добавляют 50 мл 50° спирта и фильтруют. При работе реактив разбавляют равным объемом воды. Срезы помещают в реактив на определенное время (10—12 часов), после чего промывают 50° спиртом и заключают в гли­церин.

Шарлаховый красный употребляется в виде на­сыщенного раствора в 70е спирте. Окрашивает жиры в крас­ный цвет.

Омыление по Розенталеру. Срезы помещают в 15% раствор едкой щелочи и слегка подогревают. Через некоторое время выделяются кристаллы жирнокислых солей в виде отдельных игл или пучков, что хорошо видно под микроскопом. Эта реакция дает возможность отличить жиры от эфирных масел, смол.


Реакции на эфирные масла, смолы, содержимое млечни­ков. Все реактивы, используемые для открытия жиров, дают реакции с указанными веществами.

Цветные реакции на смолы те же, что и на жиры, и на каучук. Для обнаружения смол можно воспользоваться спе­цифической реакцией. Концентрированный водный раствор уксуснокислой меди окрашивает смолы в изумрудно-зеле­ный цвет. Кусочки материала помещают в раствор от 5 дней до месяца, затем промывают в проточной воде и просмат­ривают в глицерине.

Реакции на слизь. Слизь сильно преломляет свет, в воде разбухает и растворяется; в смеси спирта с глицерином представляется в виде стекловидной массы; в растворе хло­ралгидрата постепенно становится слоистой; в спирте жел­теет и становится слоистой.

Реакции с окрашиванием. Для окрашивания сли­зи применяют ряд реактивов. Срезы помещают на 5—10 ми­нут в концентрированный раствор сернокислой меди, затем прополаскивают в воде и наносят 1—2 капли 50% раствора едкого кали. Слизь окрашивается в голубой цвет (растения сем. мальвовых, орхидных) или в зеленый (морской лук).

Метиленовый синий. Спиртовой раствор реактива (1: 5000) окрашивает слизь в голубой цвет. Можно исполь­зовать аналогичный раствор метиленового зеленого.

Водный раствор едкой щелочи (3—5 %) окра­шивает слизь в лимонно-желтый цвет. Такую же реакцию дает раствор аммиака.

Реакция с тушью. Смесь туши и воды (продаж­ную, жидкую черную тушь разводят водой 1: 10; реактив приготовляют по мере надобности). Исследуемое сырье из­мельчают в порошок и помещают па покровное стекло в каплю туши, тщательно размешивают иголкой, накрывают покровным стеклом и просматривают под микроскопом. В по­ле зрения на темно-сером фоне выделяются белыми ост­ровками клетки со слизью, так как тушь в слизь не прони­кает. Эти клетки постепенно разбухают и растекаются бла­годаря растворению слизи в воде.

Реакция двойного окрашивания. Срез иссле­дуемого объекта помещают на 20 минут в раствор хлорида окисного железа, затем переносят на короткое время в рас­твор метиленового синего, промывают водой и заключают в глицерин. При этом клетки со слизью окрашиваются в желтый цвет; механические волокна - в голубой; сосуды древесины - в зеленый.

Реакции на алкалоиды. Микрохимические реакции на алкалоиды проводятся с использованием реактивов
, осаж­дающих эти соединения. На предметное стекло берут поро­шок или мелкий соскоб, добавляют 2—3 капли 5% раствора уксусной кислоты, закрывают покровным стеклом. Через 2—3 минуты накладывают рядом другое покровное стекло, под которое засасывается жидкость, и убирают первое по­кровное стекло вместе с порошком. На некотором расстоя­нии от покровного стекла наносят каплю реактива на алка­лоиды (Вагнера, Майера, Драгендорфа или др.) и осторожно палочкой соединяют каплю с уксуснокислым извлечением, находящимся под стеклом. По мере поступления реактива под стекло на границе жидкостей постепенно образуется мутная зона (смотреть па черном фоне без микро­скопа).

Из микрохимических реакций на алкалоиды сравнитель­но хорошо воспроизводимой является реакция с йод-калия йодидом на алкалоиды атропин (гиосциамин), скополамин (в следующем сырье: лист белладонны, белены, дурмана обыкновенного, корень белладонны). Срезы из свежих частей растений просматривают в указанном реактиве; в клетках, содержащих алкалоиды, виден коричневый осадок, через не­которое время выпадают звездчатые кристаллы с металличе­ским оттенком.

Присутствие алкалоидов в свежем млечном соке мака снотворного можно обнаружить в виде многочисленных бес­цветных призматических или звездчатых кристаллов, при действии концентрированной серной или разбавленной со­ляной кислоты.

Микрохимические реакции на алкалоиды в лекарствен­ном сырье рекомендуется проводить со свежими растениями или с только что заготовленным сырьем. При микрохимиче­ском исследовании на алкалоиды совершенно обязательно проведение контрольных реакций, так как алкалоидные ре­активы реагируют по только с алкалоидами, но также и с некоторыми другими веществами (белки, частично гликозиды и углеводы). Обычно проводят контрольные - реакции после удаления алкалоидов из сырья. Для этой цели поль­зуются смесью винной кислоты и спирта (1:20), извлекая алкалоиды из сырья. Продолжительность обработки зависит от материала; иногда довольно продолжительная (неделю и больше).

Извлечение алкалоидов ведется в закрытых склянках, бюксах при частом взбалтывании. Обработанные таким об­разом срезы могут служить в качестве контрольных.

Реакции па гликозиды. Наличие гликозидов в сырье оп­ределяют методами гидролиза, с помощью цветных реак­ций, реакций осаждения, биологическими реакциями. Выявление гликозидов непосредственно в клетках расте­ния сопряжено с большими трудностями и для многих групп гликозидов микрохимические реакции не разработаны. Они имеются лишь для некоторых гликозидов.