Файл: Была направлена в кгбуз Красноярская межрайонная больница скорой медицинской помощи им. Н. С. Карповича в урологическое отделение.docx
ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 10.01.2024
Просмотров: 121
Скачиваний: 4
ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
В последний день практики дневник заверяется печатью ЛПУ и подписью общего руководителя
| Дата | Содержание работы | Оценка | Подпись | |||||||||||||||||||||
| 28. 06. 2021 | 8.30 ч. Приступила к практике. Участвовала в определении группы крови и резус-фактора. Алгоритм «Определение группы крови с помощью цоликлонов». 1. Убедиться в пригодности цоликлонов и крови донора. 2. Надеть маску, очки , фартук, нарукавники, перчатки. Обработать перчатки раствором спирта 70%. Подогреть флакон с кровью до температуры 3 градусов. Раствор с цоликлоном до 20 градусов. 3. На планшете написать фамилии пациента 4. Вскрыть ампулы с цоликлоном анти А красный цвет , анти В синий. Нанести на планшет или тарелку по 1 капле анти А и анти В . Посредине капаем 1 к крови и разными концами палочки или стекла смешиваем кровь . с цоликлоном. соотношение 1:10, 1 это кровь. Окончание результата ждем 2,5 мин. Оценка результатов при отсутствии аглютинации с 2 мя цоликлонами кровь 1 группа , при наличии аглютинации с цоликлонами АВ кровь 2 группа, с цоликлонами анти В 3 гр, если аглютинация с 2мя цоликлонами , то 4 группа . но 4 группа нужно подставить с цоликлонами анти АВ. Алгоритм «Определение резус-фактора со стандартной сывороткой анти-резус». Оснащение: 1. Стандартная сыворотка анти-резус 2. Стерильная пробирка 3. Исследуемая кровь ( в пробирке) 4. Физиологический раствор ( в пробирке) 5. Стерильные пипетки 2 шт 6. Ёмкость с 3% раствором хлорамина Техника манипуляции: 1. Внести пипеткой в пробирку две капли сыворотки анти-резус 2. Внести отдельной пипеткой одну каплю крови 3. Вращать между ладонями 5 мин 4. Внести 1 каплю физраствора в случае если наблюдается агглютинация. 5. Встряхнуть пробирку, наблюдать агглютинацию 5 мин. 6. Форма ответа: при определении резус фактора со стандартной сывороткой анти-резус.. 1. Агглютинация не наблюдается – резус фактор отрицательный 2. Агглютинация наблюдается – резус фактор положительный 7. После проведения манипуляции все использованные предметы замачиваются в емкости с трехпроцентным раствором хлорамина. Техника проведения пробы на индивидуальную групповую совместимость Показания: необходимость переливания крови, подготовка к оперативному вмешательств. Приготовить: пробирка с кровью пациента; флакон с кровью донора; стандартная белая тарелочка для определения группы крови; пипетки; стеклянные палочки; лотки; часы; изотонический раствор хлорида натрия;перчатки; емкости для отработанного материала; контейнеры с дезинфицирующими растворами. Подготовка к манипуляции: Медицинская сестра полностью подготовлена к выполнению манипуляции: одета в костюм (халат), маску, перчатки, колпак, сменную обувь. Подготовить все необходимое для выполнения манипуляции. Выполнение манипуляции: Нанести на белую фарфоровую тарелочку 2 капли сыворотки крови реципиента. Добавить 1 каплю крови донора, в 5 раз меньшую капли сыворотки пациента. С помощью стеклянной палочки перемешать каплю крови донора с сывороткой крови пациента. Если произошла реакция агглютинации, то для исключения ложной агглютинации добавить 1 каплю изотонического раствора хлорида натрия и тарелочку покачать. Результат читать через 5 минут. Оценка результата: а) если произошла агглютинация, то кровь донора и реципиента не совместима – переливать ее нельзя; б) если агглютинации нет, то кровь донора и реципиента совместимы и переливать ее можно. Окончание манипуляции: Снять перчатки, поместить их в дезинфицирующий раствор. Вымыть руки, осушить полотенцем. Проба на резус - совместимость с использованием 10% раствора желатина производится в вакутейнерах при температуре 46 – 48 Со в течении 10 минут. На дно вакутейнера, соответственно обозначенного, помещают 1 каплю эритроцитов донора, затем добавляют 2 капли подогретого до разжижения 10% раствора желатина и 2-3 капли сыворотки реципиента. Содержимое вакутейнера перемешивают, путем встряхивания и помещают в водяную баню при температуре 46-48 Со на 10 минут. Затем вакутейнер извлекают из водяной бани, добавляют в него 5-8 мл. физиологического раствора, перемешивают содержимое путем 1-2-х перевертываний вакутейнера и просматривают в проходящем свете. Наличие агглютинации означает, что кровь реципиента не совместима с кровью донора.
| | |
В последний день практики дневник заверяется печатью ЛПУ и подписью общего руководителя
| Дата | Содержание работы | Оценка | Подпись | |||||||||||||||||||||
| 29. 06. 2021 | 8.30 ч. Приступила к практике. Проведение инфузионной терапии в центральную вену 1. Приготовить стерильный лоток со стерильным шприцем, перевязочный материал, стерильную систему для введения стерильных растворов, два флакона со спиртом, пинцет, штатив, 10% изотонический раствор хлорида натрия, раствор гепарина. 2.Заполнить систему для капельного введения стерильных растворов. 3.Собрать стерильный шприц, набрать 5 мл изотонического раствора хлорида натрия (для промывания катетера). 4.Попросить больного повернуть голову в противоположную сторону от подключичного катетера и задержать дыхание. 5.Снять заглушку подключичного катетера. 6.Опустить заглушку во флакон со спиртом. 7.Подсоединить канюлю стерильного шприца к подключичному катетеру, разрешить больному дышать. 8.Проверить нахождение подключичного катетера в вене (натянуть поршень шприца на себя), при появлении крови ввести 2 мл изотонического раствора хлорида натрия. 9.Попросить больного задержать дыхание. 10.Отсоединить шприц и ввести в подключичный катетер канюлю капельницы. 11.Продолжать дыхание. 12.Отрегулировать определенное количество капель. 13.Закрыть замок на капельнице, закончив вводить стерильный раствор в подключичный катетер. 14.Попросить больного повернуть голову в противоположную сторону от подключичного катетера и задержать дыхание. 15.Убрать канюлю капельницы. 16.Ввести в подключичный катетер 0.2 мл гепарина с 2 мл изотонического раствора хлорида натрия для предупреждения образования тромбов (по окончанию вливания - гепариновый замок). 17.Закрыть вход в подключичный катетер заглушкой, вытащив ее из флакона со спиртом с помощью пинцета. Алгоритм постановки внутривенного катетера Подготовка к процедуре Вымыть руки и собрать набор, в который входят: стерильный лоток, лоток для мусора, шприц с гепарином (1:100), стерильные ватные шарики и салфетки, лейкопластырь, спирт 70%, внутривенный катетер, жгут, ножницы, СИЗ. Проверить целостность упаковки и сроки хранения медицинских изделий. Алгоритм выполнения процедуры – выбрать место для постановки катетера; – наложить жгут выше места постановки катетера; – надеть стерильные перчатки, обработав руки антисептиком; – обработать место катетеризации, дать высохнуть антисептику; – взять катетер и снять защитный чехол, срез иглы направить вверх; – зафиксировать вену, прижав ее пальцами ниже места введения катетера; – проколоть кожу под острым углом и ввести катетер, при появлении крови в камере уменьшить угол наклона, приблизив катетер к коже; – продвинуть катетер по вене и мягко потянуть иглу-проводник назад, появление крови подтвердит правильное положение катетера в вене; – полностью продвинуть канюлю в вену; – снять жгут; – пережать пальцем вену и окончательно удалить проводник; – присоединить инфузионную систему; – зафиксировать катетер; – если не предполагается немедленное начало внутривенной терапии, то промыть катетер гепаринизированным раствором натрия хлорида 0,9%; – оценить состояние пациента; – утилизировать используемый материал с учетом правил безопасности; – обработать руки; – зарегистрировать процедуру. Осуществление ухода за катетером в центральной вене. 1) Обработать кожу вокруг катетера раствором спирта (70 град.), раствором бриллиантового зеленого (1 %) 2) Провести контроль на отсутствие перегибов, плотности резиновой пробки 3) Проверить проходимость катетера: подсоединить шприц с 20 мл. физраствора, попросить больного задержать дыхание на вдохе, потянуть поршень и кровь должна войти в шприц беспрепятственно 4) Смену инфузионной системы производить только на вдохе После каждой инфузии ввести 5 тыс. единиц гепарина и плотно закрыть пробкой. 5) Обработать кожу вокруг катетера раствором спирта (70 град.), раствором бриллиантового зеленого (1 %) 6) Провести контроль на отсутствие перегибов, плотности резиновой пробки 7) Проверить проходимость катетера: подсоединить шприц с 20 мл. физраствора, попросить больного задержать дыхание на вдохе, потянуть поршень и кровь должна войти в шприц беспрепятственно 8) Смену инфузионной системы производить только на вдохе После каждой инфузии ввести 5 тыс. единиц гепарина и плотно закрыть пробкой. Проведение инфузионной терапии в центральную вену. 1. Приготовить стерильный лоток со стерильным шприцем, перевязочный материал, стерильную систему для введения стерильных растворов, два флакона со спиртом, пинцет, штатив, 10% изотонический раствор хлорида натрия, раствор гепарина. 2.Заполнить систему для капельного введения стерильных растворов. 3.Собрать стерильный шприц, набрать 5 мл изотонического раствора хлорида натрия (для промывания катетера). 4.Попросить больного повернуть голову в противоположную сторону от подключичного катетера и задержать дыхание. 5.Снять заглушку подключичного катетера. 6.Опустить заглушку во флакон со спиртом. 7.Подсоединить канюлю стерильного шприца к подключичному катетеру, разрешить больному дышать. 8.Проверить нахождение подключичного катетера в вене (натянуть поршень шприца на себя), при появлении крови ввести 2 мл изотонического раствора хлорида натрия. 9.Попросить больного задержать дыхание. 10.Отсоединить шприц и ввести в подключичный катетер канюлю капельницы. 11.Продолжать дыхание. 12.Отрегулировать определенное количество капель. 13.Закрыть замок на капельнице, закончив вводить стерильный раствор в подключичный катетер. 14.Попросить больного повернуть голову в противоположную сторону от подключичного катетера и задержать дыхание. 15.Убрать канюлю капельницы. 16.Ввести в подключичный катетер 0.2 мл гепарина с 2 мл изотонического раствора хлорида натрия для предупреждения образования тромбов (по окончанию вливания - гепариновый замок). 17.Закрыть вход в подключичный катетер заглушкой, вытащив ее из флакона со спиртом с помощью пинцета. Продолжать дыхание. Набор инструментов для катетеризации подключичной вены Показания: интенсивная гемотрансфузионная терапия (ИГТТ), проведение парентерального питания, противопоказания к ИГТТ через периферическую вену, невозможность проведения инфузий и трансфузий через периферическую вену, потребность в специальных диагностических исследованиях. Приготовить: 1. Стерильные марлевые шарики, салфетки. 2. Флаконы с 70% раствором спирта, 1% раствором йодоната, 0,25% раствором новокаина, клеол. 3. 5000 ЕД. гепарина, 100 мл 0,9% раствора натрия хлорида 4. Лейкопластырь. 5. Шприцы 10 мл с иглами для анестезии кожи. 6. Корнцанг. 7. Пинцет хирургический. 8. Иглы для пункции вены (толстые иглы со срезом под углом 45º длиной 10 – 15 см). 9. Катетер с канюлей и заглушкой диаметром 0,8 – 1 мм, проводник к нему и два или три резиновых колпачка – заглушки. 10. Стерильные полотенца для ограничения операционного поля. 11. Стерильные перчатки.
| | |
В последний день практики дневник заверяется печатью ЛПУ и подписью общего руководителя
| Дата | Содержание работы | Оценка | Подпись | |||||||||||||||||||||
| 30. 06. 2021 | 8.30 ч. Приступила к практике. Осуществление термической и химической дезинфекции инструментов Термическая стерилизация: - Перед стерилизацией инструментария проводится дезинфекция, ПСО, контроль качества ПСО - Завернуть инструмент в чистую ткань - Заложить в бикс - Стерилизовать в рабочем режиме автоклава (132 град. 2 атм. 45 мин.) или сухожарового шкафа (180 град. 60 мин.) Химическая стерилизация: - раствор 6% перекиси водорода при 50 град. 3 часа при 18 град. 6 часов - раствор дезоксона при 18 град. 45 мин. Осуществление контроля за стерильностью с помощью термоиндикаторов. 1)Рекомендуется контролировать каждый цикл стерилизации. 2)Для этого от рулона отрезают требуемое количество полосок индикатора длиной примерно 3 см. 3)Число полосок, закладываемых в стерилизатор, зависит от объема камеры стерилизатора (прилагается схема размещения) 4)Не допускается размещение индикаторов внутри стерилизуемых изделий и упаковок 5)По окончании цикла стерилизации индикаторы извлекают и сравнивают с эталоном 6)Наименование индикатора, срок годности, номер партии и завод-изготовитель указаны на упаковке индикатора Использованные индикаторы могут подклеиваться в журнал учета стерилизации. Проведение проб на качество предстерилизационной обработки инструментов Цель: провести комплексный контроль качества ПСО Оснащение: Азопирамовый реактив, пипетки для раствора азопирама и 3%-ного раствора перекиси водорода, лоток с ватными тампонами, инструменты, подвергающиеся контролю. Обязательные условия: использование свежеприготовленного раствора азопирама 30 – 40 мин; соблюдение сроков хранения азопирама. Температура изделий от +18 до +25 градусов по С. 1.Надеть маску, вымыть руки, осушить, надеть перчатки. 2. Подготовить оснащение. 3. Приготовить рабочий раствор азопирама: а) открыть флакон с азопирамом, взять пипетку с маркировкой «азопирамовый реактив», набрать определенное количество реактива в пипетку, выпустить р-р из пипетки в емкость с маркировкой «рабочий р-р азопирама», пипетку в специальную емкость для хранения пипеток. Закрыть флакон с азопирамовым реактивом; б) открыть флакон с 3%-ным р-м перекиси водорода, взять пипетку с маркировкой «3%-ный р- р перекиси водорода», набрать раствор в том же количестве, как азопирамовый реактив, выпустить раствор в емкость с маркировкой «рабочий раствор азопирама»; в) смешать ингредиенты, закрыть раствор; г) подготовить необходимые инструменты в разобранном виде для постановки пробы. 4. Взять пипеткой с маркировкой «рабочий раствор азопирама» небольшое количество раствора. Нанести его на предмет, в полости инструмента, резьбу зажима, в места соприкосновения с биологическими жидкостями. 5. Держать предмет или инструментарий над ватой, наблюдая за цветом стекающего реактива.Оценить результат. Примечание: проба считается положительной, если цвет реактива изменяется в течение первой минуты в сине-фиолетовый цвет Проба считается отрицательной, если цвет реактива не изменился. 6. Сделать отметку о проведении предстерилизационной очистки 1) Азопирамовая проба проводится на наличие СМС: розовое окрашивание – остатки моющих щелочей 2) Фенолфталеиновая проба поводится на кровь: фиолетово-зеленое окрашивание – остатки крови Для проб берется 1 % от партии. Бритье операционного поля. Операционное поле бреется медсестрой за 30 минут до операции (более раннее бритье может дать возможность попадания инфекции через микроссадины, образовавшиеся от лезвия бритвы. Цель: достижение стерильности участка кожи, где будут проводить разрез, пункция и т.д.; облегчение перевязок больных в послеоперационном периоде. Оснащение: антисептик, лоток, бритва одноразового использования, перчатки, стерильные марлевые салфетки. · жидкое антисептическое мыло, крем Последовательность выполнения: 1. объяснить больному необходимость данной процедуры и получить его согласие на ее проведение; 2. изолировать больного от окружающих; 3. придать больному удобное положение; 4. надеть перчатки; 5. обработать кожу салфеткой, смоченной в растворе антисептика; 6. намылить кожу антисептическим мылом или кремом; 7. сбрить волосы; 8. обработать кожу раствором антисептика.
| | |
В последний день практики дневник заверяется печатью ЛПУ и подписью общего руководителя
| Дата | Содержание работы | Оценка | Подпись | |||||||||||||||||||||
| 01. 07. 2021 | 8.30 ч. Приступила к практике. Правила укладки в биксы операционного белья, одежды, перевязочного и расходного материалов Показание: подготовка к стерилизации материала, применяемого во время операций, перевязок, проведения медицинских манипуляций (простых медицинских услуг) Оснащение: - дезраствор - 2 ветоши с маркировкой «для биксов» - 2 ёмкости для дезраствора - перчатки, маска - большая полотняная (бязевая) салфетка для выстилания внутренней поверхности бикса - перевязочный материал: салфетки (сложить по 10 штук, перевязать), шарики (уложить в марлевые мешочки по 30-50 штук), тампоны, турунды - индикаторы стерильности по 3 штуки - бирка с указанием отделения (кабинета), содержимого бикса, даты укладки и фамилии (росписи) укладывающего бикс Последовательность действий при укладке биксов: 1. Вымыть руки, осушить 2. Проверить исправность бикса 3. Надеть перчатки, маску 4. Приготовить ёмкость с дезраствором, ветошь 5. Обработать бикс изнутри (от середины бикса постепенно переходя на боковые поверхности и внутреннюю часть крышки) и снаружи дезраствором последовательно (от наружной крышки боковых поверхностей и дна бикса) двукратно с интервалом 15 минут, разной ветошью 6. Снять перчатки, погрузить в емкость с дезинфицирующим раствором 7. Снять маску, вымыть руки, вытереть насухо 8. Открыть сетку бикса (если бикс без фильтра). Отверстия бикса должны оставаться открытыми до конца стерилизации. 9. Выстелить салфеткой дно и края бикса без фильтра так, чтобы она свисала на 2/3 высоты бикса (для сбора конденсата) 10. Поместить на дно бикса индикатор стерильности 11. Уложить перевязочный материал послойно, секторально, вертикально, рыхло (перед закладкой халаты, простыни, полотенца тщательно осматривают, обнаруженные дырки штопают, оторванные пояса и завязки пришивают; простыни расстилают на столе и с узкого конца загибают на ширину 50 см., затем складывают вчетверо продольно /пополам дважды/ и скручивают в рыхлый рулон, начиная с незагнутого конца; халаты складывают продольно пополам рукавами и вязками внутрь, в правый карман кладут пояс или тесемку, выполняющую его функцию, затем борты халата продольно загибают и халат рыхло скручивают в виде рулона, начиная с подола; полотенца складывают пополам и скатывают в рулон; белье укладывают в биксы вертикально параллельно движению пара, кроме этого позволяет сразу найти, то, что нужно и извлечь необходимый материал, не нарушая порядок в биксе; материал укладывают рыхло /между рулонами должна свободно проходить ладонь/, что обеспечивает свободное прохождение пара; перевязочный материал/салфетки, шарики укладывают стопками по секциям; ножницы, зажимы и подобные инструменты укладываются в раскрытом виде) 12. Поместить индикатор стерильности в центральную часть бикса 13. Накрыть салфеткой, свисающей с краев бикса, весь уложенный материал 14. Поместить поверх салфетки под крышку бикса индикатор стерильности 15. Поместить поверх салфетки под крышку бикса пинцет 16. Закрыть крышку бикса на замок, привязать к ручке бикса бирку, написать на бирке название отделения, название укладки, дату укладки и поставить подпись ответственного за укладку. После стерилизации – дату стерилизации и подпись медсестры, производившей стерилизацию. После извлечения бикса из автоклава, отверстия (через которые проникает пар) закрывают. Осуществление стерилизации инструментов в сухожаровом шкафу и холодным образом Загрузка сухожарового шкафа Показание: стерилизация хирургического инструментария Оснащение: -суховоздушные аппараты различной конструкции - хирургические инструменты Последовательность действий 1. Разложить на металлические сетки хирургический инструментарий так, чтобы часть отверстий была открыта для циркуляции нагретого воздуха 2. Поместить в пяти точках индикаторы стерильности З. Закрыть дверцу шкафа, включить рубильник 4. Прогреть стерилизационную камеру в течение 5-10 минут 5. Открыть дверцу сухожарового шкафа, установить сетку с хирургическими инструментами на полки шкафа 6. Закрыть дверцу сухожарового шкафа 7. Установить ручку реле времени на требуемую длительность стерилизации Примечание. По достижении заданной температуры в стерилизаторе на пульте управления загорится сигнальная лампа, указывающая начало стерилизации При автоматической стерилизации электронагреватели по окончании заданного цикла автоматически отключаются, и сигнальная лампа гаснет. При полуавтоматическом режиме работы шкафа медицинская сестра по окончании стерилизации отключает его от сети, выключив рубильник или выключатель. Примечание. Контрольные тесты помещают на расстоянии не менее 5 см от стенок стерилизационной камеры. Холодные способы стерилизации включают различные приемы уничтожения микроорганизмов 1. Химическая стерилизация, или дезинфекция – это уничтожение патогенных (болезнетворных) микроорганизмов с помощью химически ядовитых веществ (антисептиков). Метод используют в медицине. К антисептикам, или дезинфицирующим средствам относятся мыла, красители (зелёнка), соли тяжёлых металлов, окислители (хлор, йод, перекись водорода, перманганат калия), формалин , формальдегиды, спирты и др. 2. Физические методы стерилизации: стерилизация ультрафиолетовыми лучами (УФ) – используют при кварцевании, ультразвуком (УЗ), током ультравысокой частоты (УВЧ) и др. Эти приемы широко используют в медицине. 3. Стерилизация фильтрованием. Механическое освобождение от микроорганизмов путем фильтрации различных жидких сред через фильтры, задерживающие микробы. К таким мелкопористым фильтрам, у которых размеры пор меньше размеров бактерий, относятся фильтры Шамберлана из каолина, пластинчатые асбестовые фильтры Зейтца, мембранные фильтры из нитроцеллюлозы. Их используют для обработки легко портящихся от нагревания жидкостей.
| | |
В последний день практики дневник заверяется печатью ЛПУ и подписью общего руководителя
| Дата | Содержание работы | Оценка | Подпись | |||||||||||||||||||||
| 02. 07. 2021 | 8.30 ч. Приступила к практике. Заполняла документацию. Изготовление перевязочного материала (шарик, салфетка, турунда, тампон) Шарики марлевые Показания: - для обработки операционного поля, операционных ран, при перевязке ран Оснащение: марля. Примечание. Марля должна быть белой, мягкой, гигроскопичной и обезжиренной. Последовательность действий: Раскроить марлю для шариков размером: 6х7 см — для малых, 11х12 см — для средних, 17х 17 см — для больших; - сложить приготовленный кусок марли по длине с двух сторон к середине - заправить в полученный треугольник свободные концы - сложить марлевые шарики в подготовленный марлевый мешок по 50 штук Примечание. Следить за тем, чтобы не было ниток из марли в приготовленных шариках, для предотвращения попадания их в рану. Изготовление салфеток Показание: для защиты от воздействия внешней среды операционной раны, раневых поверхностей, полученных вне лечебного учреждения. Оснащение: марля. Примечание. Марля используется мягкая, гигроскопичная, обезжиренная. Последовательность действий: - раскроить марлю для салфеток размером: 20х25 см — для малых, 30х40 см -для средних, 60х40 см -для больших - сложить марлю по длине с двух сторон к середине (на середине салфетки концы соприкасаются) - сложить по ширине сложенную по длине салфетку (на середине салфетки концы соприкасаются) - перегнуть салфетку на середине, на месте соприкосновения концов салфетки - сложить салфетки по 1О штук, связав полосками марли Примечание. Следить за тем, чтобы в приготовленных салфетках не было ниток из марли, для предотвращения попадания их в рану Изготовление турунды Показание: для дренирования гнойных ран. Оснащение: бинт шириной 5 см. Последовательность действий: — разрезать бинт на отрезки длиной 40-50 см — подвернуть концы бинта с двух сторон внутрь на 1-1,5 см — сложить отрезок бинта по длине с двух сторон так, чтобы концы соединились на середине отрезка — сложить еще раз отрезок бинта по длине так, чтобы концы, соединенные на середине, оказались внутри отрезка бинта — прогладить о край стола отрезок бинта для закрепления — намотать на 2-4 пальцы левой руки приготовленную турунду — снять с пальцев и оставшуюся часть турунды продернуть в отверстие, оставленное после снятия турунды с пальцев Изготовление тампона Показание: для тампонады ран при кровотечении. Оснащение: бинт шириной 1О см, длиной — 5 м. Последовательность действий: — сложить бинт небольшими отрезками продольно так, чтобы концы соединились на середине — сложить еще раз отрезок так, чтобы концы, соединенные на середине, были спрятаны внутрь прогладить о край стола отрезок бинта для закрепления — скрутить тампон в клубок Примечание. Готовить тампон небольшими кусочками. Полученные 4 слоя бинта разрезают поперечно на куски длиной 20, 30, 50 см. Транспортировка пациентов с различными видами хирургической патологии в лечебно-профилактических учреждениях (ЛПУ) Оснащение: транспортные средства; носилки; импровизированные носилки; лямки; щит. Выполнение манипуляции: Транспортировка пострадавших с повреждениями костей черепа и головного мозга: 1. перед транспортировкой провести иммобилизацию головы с помощью ватно-марлевого круга, надувного подкладного круга или подручных средств; 2. Транспортировку осуществлять в положении лежа на спине. При локализации раны в затылочной области и переломе затылочной кости: 1. оказать первую помощь; 2. пострадавшего транспортировать в положении на боку. Транспортировка пострадавших, находящихся в бессознательном состоянии: 1. уложить пострадавшего на бок; 2. зафиксировать это положение, что обеспечивает хорошую иммобилизацию и предупреждает развитие асфиксии от западения языка и аспирации рвотных масс. Транспортировка пострадавших с переломами костей носа и повреждениями челюсти: 1. придать пострадавшему полусидячее положение, что предупредит аспирацию крови; 2. если пострадавший при этом находится в бессознательном состоянии, придать ему положение лежа на животе и подложить под лоб и грудь валики из одежды, одеяла или других вещей. Транспортировка при переломах ребер и ключицы: 1. транспортировку осуществлять в положении сидя; 2. при тяжелом состоянии транспортировать пострадавшего на носилках в полусидячем положении. Транспортировка пострадавших с переломами бедра и других костей нижних конечностей: 1. провести иммобилизацию транспортными шинами; 2. транспортировать пострадавшего на носилках в положении лежа на спине. Транспортировка пострадавших при переломах костей верхних конечностей: 1. провести иммобилизацию транспортными шинами; 2. оценить состояние пострадавшего; 3. при удовлетворительном состоянии транспортировать его в положении сидя; 4. если травма у пострадавшего сопровождается шоком или значительной кровопотерей, уложить пострадавшего на носилки; 5. во время транспортировки контролировать состояние пациента. Транспортировка при переломах костей таза: 1. уложить пострадавшего на щит в положении на спине с полусогнутыми в коленных и тазобедренных суставах нижними конечностями; 2. под колени подложить тугой валик из одежды, одеяла и др. высотой 25-30 см; 3. бедра несколько развести в стороны; 4. во время транспортировки контролировать состояние пациента. Транспортировка при переломах позвоночника: 1. уложить пострадавшего строго в горизонтальном положении на спине на ровной жесткой поверхности; 2. при переломах шейного отдела позвоночника транспортировать пострадавшего на спине с валиком под шеей, обеспечивающем некоторое откидывание головы назад и ее фиксацию; во время транспортировки контролировать состояние пациента. Транспортировка при всех травмах и заболеваниях, сопровождающихся шоком, а также значительной кровопотерей: 1. транспортировать пострадавшего с приподнятым ножным концом носилок для уменьшения обескровливания головного мозга; 2. во время транспортировки контролировать состояние пациента. Завершение манипуляции: После доставки пациента в ЛПУ использованные средства иммобилизации и транспортировки подвергаются дезинфекции в соответствии с Сан.Пин.
| | |