Таблица П.9.5

№ п/п	Концентрация в порядке ранжирования, мг/м	Длительность отбора пробы, t, мин	Длительность отбора пробы, % от Σt	Накопленная частота, %	Статистические показатели и их значения
1	2	3	4	5	6
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16	4,0 11,8 14,2 17,8 18,8 20,0 21,5 23,3 23,7 29,9 39,4 40,5 59,5 110,6 121,1 173,3	40 16 30 38 21 15 15 10 11 13 10 10 7 10 5 5	15,6 6,3 11,7 14,8 8,2 5,9 5,8 3,9 4,3 5,1 3,9 3,9 2,7 3,9 1,9 2,0	15,6 21,9 33,6 48,4 56,6 62,5 68,3 72,2 76,5 81,6 85,5 89,4 92,1 96,0 97,9 99,9	Среднесменная концентрация Ксс = 25,5 мг/м3 Макс. концентрация Кмакс= 105 мг/м3 Мин. концентрация Кмин = 4,0 мг/м3 Медиана Me = 15,0 Стандартное геометрическое отклонение, σg=2,8

Σ_t = 256 (100 %) Σ = 99,9 %

2. Для определения среднесменной концентрации расчетным методом заполняем табл. П.9.6 в соответствии с требованиями раздела 4 прилож. 9.

Рассчитываем средние концентрации для каждой операции (K₀₁ - К₀₄):

По результатам определения средних концентраций за операцию (К_о) и длительности операции (Т_о) рассчитываем среднесменную концентрацию (К_сс) как средневзвешенную величину за смену:

Определяем статистические показатели, характеризующие процесс загрязнения воздуха рабочей зоны в течение смены: минимальную концентрацию за смену (К_мин); максимальную концентрацию за смену (К_макс); медиану (Me); стандартное геометриче­ское отклонение (σ_g).

Таблица П.9.6

Определение среднесменной концентрации расчетным методом

Ф.,И.,О. _________________Петров А.И.____

Профессия ________________машинист_______

Предприятие ________________ЖБИ______

Цех, производство _______Цех №3. производство бетонных изделий_

Наименование вещества _____пыль цемента__

Наименование и краткое описание этапа производственного процесса (операции)	Длительность операции (этапа производственного процесса), Т, мин	Длительность отбора разовой пробы, t, мин	Концентрация вещества в пробе, К, мг/м3	Произведение концентрации на время, Kt	Средняя концентрация за операцию, Ко, мг/м3	Статистические показатели, ха­рактеризующие процесс пылевы-деления за смену
1	2	3	4	5	6	7
Этап 1	70	10	40,5	405,0	91,9	Среднесменная концентрация Ксс = 27,9 мг/м3 Минимальная концентрация в течение смены Кмин = 4,0 мг/м3 Максимальная концентрация в течение смены Kмакс = 173,3 мг/м3 Медиана Me =18,4 Стандартное геометрическое отклонение σg = 2,6
		7	59,5	416,5
		5	173,3	866,5
		10	110,6	1106,0
		5	121,1	605,5
Этап 2	193	21	18,8	394,8	20,2
		38	17,8	676,4
		13	29,9	388,7
		15	20,0	300,0
Этап З	150	10	39,4	394,0	21,5
		30	14,2	426,0
		11	23,7	260,7
		10	23,3	233,0
Этап 4	67	15	21,5	322,5	9,5
		16	11,8	188,8
		40	4,0	160.0

---

Приложение 10

(обязательное)

Общие требования к контролю содержания микроорганизмов в воздухе рабочей зоны

1. Общие положения

1. Методика определяет требования к измерению в воздухе рабочей зоны концентраций микроорганизмов, живых клеток и спор, находящихся в составе товарных форм бактериальных препаратов, на биотехнологических предприятиях, а также в воздухе общественных и промышленных зданий.

2. К использованию в технологических процессах допускаются штаммы микроорганизмов, разрешенные к применению Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека.

3. Контроль воздуха на содержание вредных веществ биологической природы –продуктов микробного синтеза (ферменты, витамины, антибиотики и др.) проводится так, как это принято для химических веществ.

2. Требования к отбору проб

1. Отбор проб воздуха для контроля содержания микроорганизмов проводится путем аспирации их из воздуха на поверхность плотной питательной среды.

2. Отбору проб должна предшествовать краткая характеристика микроорганизмов: указываются семейство, род, вид, штамм, морфологическая характеристика колоний на твердой питательной среде и оптимальные условия роста колоний на твердой питательной среде (рН, Т°).

3. Отбор проб воздуха проводят:

• при засеве инокуляторов в зоне дыхания и между инокуляторами;

• при отборе проб из инокуляторов;

• при засеве посевных аппаратов (при условии прямого засеивания);

• при отборе проб из посевных аппаратов у пробника и между посевными аппаратами;

• при отборе проб из ферментеров;

• при спуске культуральной жидкости из ферментеров в коагуляторы или прямо на фильтрацию.

Если в технологическом процессе имеет место сушка биомассы, то отбор проб проводится:

• при перемешивании;

• при выгрузке из сушильных аппаратов;

• при фасовке биомассы.

Перечисленные точки отбора ориентировочные и на каждом предприятии устанавливаются индивидуально с учетом данных валидации, характеристик процесса, методологии тестирования и т. п.

4. При текущем контроле в одном помещении число контрольных точек долж­но быть не менее трех.

5. Для сравнительного анализа концентраций микроорганизмов в воздухе ра­бочей зоны отбор проб должен проводиться не реже 1 раза в неделю в аналогичной по интенсивности технологического процесса временной период.

6. Объем пробы воздуха должен быть достаточным для обнаружения микроорганизмов. Он устанавливается опытным путем с учетом характеристик используемого пробоотборника и концентрации микроорганизмов в тестируемой зоне.

Примечание. Для импакторов и центрифужных пробоотборников одним из ограничивающих факторов является высыхание поверхности агара при больших объемах проб, а так же возможность повреждения поверхности агарового слоя (растрескивание).

---

7. Отбор проб проводится с концентрированием воздуха на чашке Петри с посевной средой.

Отбор проб на содержание микроорганизмов проводят в рабочей зоне; высота установки прибора 1,5 м от уровня пола.

3. Характеристика метода

1. Метод основан на аспирации микроорганизмов из воздуха на поверхность плотных питательных сред – элективных (избирательных для данного микроорганизма) или элективно-дифференциальных (путем добавления в среду ингибиторов – антибиотики, желчь, молочная кислота, красители; цветных индикаторов или других специфических химических веществ, позволяющих выявить диагностические признаки данного микроорганизма). После инкубации в термостате производится подсчет выросших колоний по типичным морфологическим признакам.

Примечания.

1. Выбор питательной среды является одним из важных факторов. Базовой средой для культивирования бактерий является среда № 1(МПА)^, среда №2 (агар Сабуро) и солодовый агар для культивирования дрожжей и мицелиальных грибов^. Посевы бактерий выращивают в термостате при t 35–40 °С в течение 24–48 ч, культуры дрожжей и грибов – при t 25–30 °С в течение 72 и более часов.

2. Перед отбором проб разлитые на чашки Петри или пластины питательные среды выдерживают в термостате при 137 °С в течение 24 ч для подтверждения стерильности. Проросшие чашки бракуют.

3. Ростовые свойства питательных сред должны быть проверены соответствующими тест-штаммами.

2. Микроорганизмы, выросшие на чашке Петри, подлежат макро- и микроскопической идентификации. К макроскопическим признакам относятся форма и размеры колоний, цвет, консистенция, к микроскопическим признакам – форма (кокки, бациллы, овоиды и т. п.), подвижность (количество жгутиков), отношение к окраске по Граму, наличие спор и капсул.

3. Для дальнейшей индикации и дифференциации микроорганизмов могут быть использованы биохимические методы, различные автоматизированные системы, а также любые современные методы идентификации микроорганизмов.

4. Предел измерения от 1 до 5 х 106 кл/м³.

4. Приборы и посуда

1. Для бактериологического анализа воздуха используют импактор воздуха микробиологический «Флора-100» (ТУ 64-098-33–95).

Примечание. Современная отечественная модель – высокопроизводительный импактор «Флора 100» работает в автоматическом режиме, отбирает заданный объем воздуха и осаждает биологический аэрозоль на чашку Петри с плотной питательной средой. Импактор полностью заменяет широко используемый для контроля прибор Кратова и превосходит его по всем техническим характеристикам (точность определения, масса, габариты, скорость пробоотбора, автоматический контроль параметров пробоотбора и диагностики неисправностей).

Импактор «Флора 100» прошел государственные испытания и рекомендован Комитетом по новой технике (протокол № 7 от 26.12.95) к применению в медицинской практике.

---

2. Методику проведения контроля с использованием импактора «Флора-100» рекомендуется согласовывать с разработчиком импактора для уточнения времени аспирации в зависимости от особенностей контролируемой микрофлоры.

3. Прибор для бактериологического анализа воздуха, модель 818 (ТУ 64-1-791–77).

4. Секундомер ГОСТ 9586–75

5. Чашки бактериологические, плоскодонные, стеклянные диаметром 100 мм, ГОСТ 10937–75.

6. Термостаты электрические суховоздушные, типа ТС, ТУ 64-1-1382–76.

7. Пипетки мерные, ГОСТ 1770–74.

8. Колбы конические, ГОСТ 1770–74.

9. Весы аналитические ВЛА-200-М.

10. Камера для стерильной сушки чашек Петри типа ЕМЗ 804-014СП.

5. Методика проведения контроля

1. Воздух аспирируют со скоростью от 10–20 до 150–200 л/мин на поверхность плотной питательной среды на чашках Петри.

2. Время аспирации (2–10 мин) зависит от концентрации микроорганизма в воздухе.

3. Термостатирование чашек Петри с пробами воздуха производится при температуре 25–40 °С в зависимости от биологической характеристики микроорганизма.

4. Метод предполагает учет по типичным морфологическим признакам количества колоний, выросших на 2–4 сутки и более после посева пробы воздуха в зависимости от видовой принадлежности микроорганизма.

5. Прямой метод позволяет учитывать на чашке Петри до 150–200 колоний. Результаты рассчитывают в кл/м .

Примечание. Проблемной комиссии по гигиеническому нормированию с целью унификации методических подходов принято согласованное решение единицей измерения принять «клетки» (а не колониеобразующие клетки, хотя это правильно).

Единицы измерения указывать обязательно.

6. Результаты замеров вносятся в протокол.

---

Смотрите также файлы

• Контрольная работа по логике.doc

• Общая социология-в печать.doc

• маніпуляції.doc

• mysql__ukr_54_22.12.10.doc

• Методичка AutoCAD.doc