ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 09.09.2020

Просмотров: 8002

Скачиваний: 76

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
background image

290 

 

Численность  клеток  гетеротрофных  микроорганизмов  в  1  мл  воды  рас-

считывают по формуле: 

10

NR

A

где 

– число колоний в чашке, кл.; 

– разведение, из которого произведен по-

сев; 

10 

– пересчет на 1 мл. 

Качество воды из тестируемого водоема определяют по таблице 13.9. 

 

Таблица 13.9. 

Классы качества воды природных водоемов по бактериальным показателям 

Показатель

 

Классы качества воды

 

 
 

предельно 

чистая

 

чистая

 

удовлетво-

рительно 

чистая

 

загрязнен-

ная

 

грязная

 

Численность  бактерий  планк-
тона, млн. кл./мл 

< 0,3 

0,3–1,5 

1,6–5,0 

5,1–11,0 

> 11,0 

Численность  гетеротрофных 
бактерий, тыс. кл./мл 

< 0,1 

0,1–1,0 

1,1–5,0 

5,1–10,0 

> 10,0 

Численность  бактерий  группы 
кишечной палочки, тыс. кл./мл 

< 0,003 

0,003–2,0 

2,1–10,0 

11,0–100,0 

> 100,0 

 
13.2.2.2.2. Использование водных грибов в целях биоиндикации 

Хитридиевые  грибы  и  оомицеты,  имеющие  короткий  жизненный  цикл  и 

подвижные  жгутиковые  зооспоры,  пригодны  для  экспресс-оценки  состояния 
окружающей  среды.  Изменения  видового  состава,  встречаемости  и  обилия  от-
дельных видов оомицетов могут характеризовать уровень сапробности среды и 
загрязнения бытовыми и промышленными сточными водами. К типичным оби-
тателям  сточных  вод  относятся  лептомитус  молочный  (индикатор  сильноза-
грязненных полисапробных вод), сампромицес рейнский, виды рода 

Pitium

. Уг-

леводороды нефти подавляют развитие оомицетов. Высокие значения pH воды, 
а  также  высокое  содержание  азотных  и  фосфорных  соединений  способствуют 
лизису зооспор питиума дальнего. 

Среди вторичноводных грибов в качестве индикаторов используют гифо-

мицеты. Видовой состав комплекса гифомицетов в значительной степени зави-
сит от химических особенностей, температуры воды, количества растворенного 
кислорода.  Водные  гифомицеты  практически  не  реагируют  на  загрязнение  пе-
стицидами, включая ДДТ, но испытывают  угнетение при контакте с нефтепро-
дуктами, бытовыми и промышленными стоками сахарных, спиртовых и других 
предприятий  с  высоким  содержанием  органических  веществ.  В  воде,  как  и  в 
почве, загрязненной нитратами и фосфорными соединениями, значительно воз-
растает  жизнеспособность  конидий  отдельных  видов  рода  фузариум,  обладаю-
щих фитопатогенными свойствами. 

 

13.2.2.2.3. Биоиндикация по фитопланктону и перифитону 

Изучение  фитопланктона  водоемов  производится  путем  сбора  проб  на 

установленных станциях. Для определения видового состава фитопланктона из 
пробы  на  предметное  стекло  наносится  капля  материала,  закрывается  покров-


background image

291 

 

ным  стеклом  и  анализируется  под  микроскопом.  Идентификация  видов  осу-
ществляется с помощью определителя.  

Для

  количественного  анализа  фитопланктона 

в  реках  и  на  мелководьях 

воду 

зачерпывают 

с 

поверхности 

в 

объеме 

0,5–1,0 

л. 

Наиболее 

распространенным  методом  концентрирования  фитопланктона  является 
осаждение,  либо  фильтрация  через  мелкопористые  мембранные  фильтры.  При 
осадочном  методе  фитопланктон  сперва  сгущают.  Для  этого  пробу  воды 
помещают  в  0,5–1,0-литровые  бутылки  и  консервируют  их  фиксатором.  Через 
3–4 дня отстаивания пробы в темноте воду над осевшим осадком осторожно по 
каплям  сливают  сифоном  до  100  см

3

  пробы.  За  2–3  дня  до  количественной 

обработки  пробы  разливают  в  мерные  цилиндры  и  после  отстаивания  их  в 
темноте  доводят  объем  до  5–10  см

3

.  Затем  пробу  переносят  без  потерь  в 

пенициллиновые склянки и фиксируют 1–2 каплями 40%-ного формалина. 

В  системе  Гидромета  концентрируют  пробы  методом  мембранной  филь-

трации. Фильтрация проб осуществляется под слабым вакуумом в специальной 
воронке, укрепленной на колбе Бунзена, которая соединяется с насосом Камов-
ского. Для фильтрации применяют мембранные фильтры  № 5 и  № 6 с диамет-
ром  пор  1,2  и  2,5  мкм  соответственно.  Фильтры  перед  применением  кипятят  в 
дистиллированной воде в течение 20–30 мин. Предназначенная для фильтрации 
проба в объеме 0,5–1,0 л не менее чем за 30 минут до фильтрации консервиру-
ется  5–10  каплями  формалина  или  фиксатором,  состоящим  из  двух  растворов, 
до слабо-желтого цвета: 

Раствор 1: йодистый калий 10 г, вода дистиллированная 50 см

3

, йод кри-

сталлический 5 г. 

Раствор 2: хромовая кислота 5 см

3

, ледяная уксусная кислота 10 см

3

, фор-

малин 40% 80 см

3

Оба раствора готовят отдельно, затем сливают и хранят в темной склянке. 

Фильтр, вставленный в воронку, смачивают несколькими каплями дистиллиро-
ванной  воды.  Пробу  тщательно  встряхивают  и  фильтруют  при  минимальном 
разрежении. Фильтрацию прекращают, когда воды над осадком уже нет, но по-
верхность фильтра еще влажная. Фильтр с осадком помещают в склянки из-под 
пенициллина,  куда  добавляют  пипеткой  5–10  см

3

  фильтрата.  Затем  осадок  с 

фильтра счищают мягкой кисточкой, и проба консервируется. 

При подсчете численности водорослей используют счетные камеры Наж-

отта и др. Перед счетом одну каплю пробы тщательно перемешивают и перено-
сят  в  камеру.  Равномерное  перемешивание  пробы  проводят  продуванием  воз-
духа через пипетку с отпиленным концом. Камеру закрывают покровным стек-
лом, и после оседания водорослей на дно проводят определение и подсчет всех 
обнаруженных  видов  водорослей,  измерение  размеров  их  клеток  для  последу-
ющего  вычисления  биомассы.  Для  статистической  обработки  и  установления 
биомассы доминирующих видов нужно, чтобы каждый из них был встречен не 
менее 100 раз. 

Вычисление биомассы фитопланктона осуществляют методом суммирова-

ния  биомасс  популяций  отдельных  видов.  Для  этого  надо  установить  среднюю 
массу  клеток  водорослей,  составляющих  популяцию  в  пробе.  Для  вычисления 
биомассы измеряют не менее 30 экземпляров водорослей каждого вида в каждой 


background image

292 

 

пробе  с  определением  средних  значений  для  популяции  каждого  вида.  Найден-
ный для каждой клетки объем (в мкм

3

) умножают на численность клеток (в ты-

сячах клеток на литр) и получают значение биомассы в мг/л или г/м

3

 воды. 

Индикацию  по  фитопланктону  можно  проводить  и  в  природных  услови-

ях.  Наиболее  эффективно  для  оценки  качества  воды  в  естественных  водоемах 
использование водорослей. При наличии в водоеме органических веществ в ви-
де различных отбросов, клоачных, сточных вод и т.д., благодаря биологической 
деятельности  бактерий  и  водорослей,  происходит  их  самоочищение.  В  само-
очищающихся водоемах различают 4 зоны, соответствующие той или иной сте-
пени очищения (табл. 13.10). 

 

Таблица 13.10.  

Индикация сапробности водоемов 

Зона  

сапробности 

Характеристика 

Индикаторы 

Полисапробная

 

Сильная  загрязненность  све-
жими,  легко  разлагающими 
органическими  веществами. 
Содержание кислорода в воде 
очень мало. 

Обильны  бактерии  и  сине-зеленые  водо-
росли  – 

Spirulina

Anabaena

.  Индикатор 

зоны: водоросль 

Euglena viridis

α-
мезосапробная 

 

Свежее,  но  слабое  загрязне-
ние,  самоочищение  уже  про-
шло начальную стадию 

Численность  бактерий  высокая,  массовое 
развитие  цианей  из  родов 

Oscillatoria

Phormidium

. Индикатор зоны: роды 

Closte-

rium

Cosmarium

, а также некоторые виды 

хламидомонадовых  и  представители  рода 

Gonium.

 

β-
мезосапробная 

 

Более  слабое  начальное  за-
грязнение  или  еще  дальше 
продвинулся  процесс  само-
очищения.  Насыщение  воды 
кислородом 

относительно 

высокое. 

Численность  бактерий  сильно  сокращена. 
Индикаторы: роды 

Melosira

Asterionella

, a 

также  зеленые  водоросли: 

Synura

Pedi-

astrum

Scenedesmus

Chaetophora

.  Из  ци-

аней  встречаются  вилы  родов 

Nostoc

  и 

Aphanisomenon

Олигосапробная 

  Органические 

загрязнители 

отсутствуют 

или 

окончен 

процесс  самоочищения.  В 
этой  зоне  высокое  содержа-
ние кислорода. 

Индикаторы:  диатомовые  водоросли: 

Me-

ridion

 и 

Surirella

, из зеленых водорослей – 

Ulothrix

Cladophora

Spyrogira.

 

 
При  выборе  места  для  отбора  гидробиологических  проб  учитывают  гид-

рологические  факторы,  определяющие  характер  распределения  и  распростра-
нения загрязнения в контролируемом водоеме. Нередко даже сильное загрязне-
ние у одного берега долго не обнаруживается у другого берега. Для взятия проб 
на  предмет  оценки  качества  воды  в  реках  наиболее  подходящим  местом  явля-
ются перекаты, а не заводи. 

Особенно  следует  отметить  индикационную  роль  перифитона.  Составля-

ющие  его  организмы  характеризуют  условия  данного  пункта,  а  не  занесены 
случайно из других мест, как это может быть с фитопланктоном. Перифитон с 
различных  подводных предметов, расположенных  на быстром  течении перека-
тов  и  быстрин,  благодаря  быстрой  смене  окружающей  их  воды,  совершенно 


background image

293 

 

свободен от случайных местных загрязнений и показывает среднее загрязнение, 
господствующее в данном водоеме. 

Наиболее пригодными для сбора перифитона являются нейтральные суб-

страты  (камни, бетонные сооружения). Не следует отбирать пробы с затоплен-
ных  деревьев,  деревянных  мостков,  ибо  гниющая  древесина  сильно  повышает 
сапробность.  Сбор  перифитона  с  субстратов  производится  скребком.  Сбор  об-
растания  с  листьев  и  стеблей  макрофитов  производят,  смывая  его  мягкой  ки-
сточкой. Мелкие растения помещают в банку с водой и тщательно полощут, за-
тем растения вынимают, а смытый оброст сохраняют для анализа. 

Каждая проба должна быть этикетирована, а информация о ней записана 

в  полевой  дневник.  На  этикетке  указывается  название  водоема,  номер  створа, 
дата  отбора,  местоположение  створа  (выше,  ниже  города  или  села,  источника 
загрязнения и др.), расстояние от берега, глубина, скорость течения и темпера-
тура воды. 

Для отбора проб фитопланктона наиболее просты и удобны планктонные 

сетки конической формы. Для их изготовления используют мелкое  (не ниже N 
70) мельничное сито из шелковой или капроновой нити (см. главу 2). 

Пробу рассматривают до тех пор, пока перестанут встречаться новые ви-

ды.  Обычно  просматривают  3–4  препарата.  Одновременно  с  определением  ви-
дового  состава  оценивается  и  встречаемость  (h)  каждого  вида  по  глазомерной 
шкале (табл. 13.11). 

Таблица 13.11. 

Шкала для пересчета организмов-сапробионтов в 100 полях зрения микроскопа на частоту 

встречаемости 

Частота встречаемости в баллах 

Сапробионты 

1-я категория крупности 

(организмы размером до 50 мкм) 

1 (очень редко) 

Не более 1 в каждом 2-м поле зрения 

2 (редко) 

Не более 2 в поле зрения 

3 (нередко) 

Не более 10 в поле зрения 

5 (часто) 

Не более 30 в поле зрения 

7 (очень часто) 

Не более 60 в поле зрения 

9 (масса) 

Более 60 в поле зрения 

2-я категория крупности 

(организмы размером 50–200 мкм) 

1 (очень редко) 

Не более 1 в каждом 20-м поле зрения 

2 (редко) 

Не более 1 в каждом 5-м поле зрения 

3 (нередко) 

Не более 1 в поле зрения 

5 (часто) 

Не более 3 в поле зрения 

7 (очень часто) 

Не более 6 в поле зрения 

9 (масса) 

Более 6 в поле зрения 

3-я категория крупности 

(организмы размером 200–1000 мкм) 

1 (очень редко) 

1 в 100 полях зрения 

2 (редко) 

1 в 50 полях зрения 

3 (нередко) 

Не более 1 в 10 полях зрения 

5 (часто) 

Не более 1 в 4 полях зрения 

7 (очень часто) 

Не более 1 в 2 полях зрения 

9 (масса) 

Приблизительно 1 в поле зрения 


background image

294 

 

Сапробность  водоемов  по  составу  водорослей  определяется  методом 

Пантле-Букка. Для этого используют список организмов-индикаторов загрязне-
ния.  В  Приложении  3  приведены  наиболее  широко  распространенные  виды-
индикаторы сапробности водоемов. 

Метод Пантле-Букка предполагает принадлежность каждого вида к опре-

деленной  зоне  сапробности  от  0  до  4.  Сапробность  водоема  определяется  по 
формуле: 

=

∑( × ℎ)

 

где 

S

 – сапробность водоема, 

h

 – численность индикатора (оценивается по гла-

зомерной шкале: см. выше), 

s

 – сапробность индикатора.  

В  системе  Гидробиологической  службы  контроля  поверхностных  вод 

Российской  Федерации  принята  классификация  качества  вод,  содержащая  6 
классов (табл. 13.12). 

Таблица 13.12.  

Классификация качества вод суши по гидробиологическим показателям 

Класс вод 

Качество вод 

Индекс сапробности по Пантле-Букку 

Очень чистые 

<1 

II 

Чистые 

1,1–1,5 

III 

Умеренно загрязненные 

1,6–2,5 

IV 

Загрязненные 

2,6–3,5 

Грязные 

3,6–4,0 

VI 

Очень грязные 

>4,0 

 

Для  статистически  достоверных  результатов  необходимо,  чтобы  в  пробе 

содержалось не мене 12 индикаторных видов с общей суммой частоты встреча-
емости h, равной 30. Индекс сапробности указывается с точностью до одной со-
той (табл. 13.13).  

Таблица 13.13. 

Пример расчета индекса сапробности для перифитона 

Виды водорослей 

Зона сапробности 

s×h 

Cladophora glomerata 

β

 

1,65 

11,55 

Navicula gracilis 

β-α

 

1,65 

11,55 

Scenedesmus quadricauda 

β

 

2,00 

6,00 

Cymbella prostrata 

β

 

1,65 

3,30 

Achnanthes lanceolata 

χ-β

 

0,75 

1,50 

Gomphonema olivaceum 

β

 

0,85 

3,70 

Navicula rhynchocephala 

α

 

2,70 

13,75 

Cocconeis pediculus 

β

 

1,75 

8,75 

Cymbella ventrosa 

β

 

1,35 

4,05 

Closterium moniliferum 

β

 

2,15 

4,30 

Caloneis silicula 

о-β

 

1,50 

3,00 

Cymatopleura solea 

β-α

 

2,35 

4,70 

Nitzschia sigmoida 

β

 

2,00 

4,00 

Navicula hungarica 

β-α

 

2,40 

4,80 

Pediastrum boryanum 

β

 

1,85 

3,90 

 

 

∑= 54 

 

∑ = 99,10 

S  =  99,10/54  =  1,83.  Эта  вода  по  качеству  соответствует  III  классу  –  умеренно 
загрязненная.