ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 09.09.2020
Просмотров: 7632
Скачиваний: 75
90
Методика.
С помощью металлической рамки ограничивают участок под-
стилки площадью 1 м
2
. Далее, аккуратно разбирая листья и осматривая их с
обеих сторон, собирают всех жесткокрылых и помещают в морилку. Насеко-
мых каждой пробы необходимо помещать в отдельную морилку. В каждом
биотопе берется 10 проб.
Можно брать пробы подстилки и помещать их в герметичные пакеты
(мешки), а позже выбирать насекомых, используя почвенные сита (рис. 4.5).
А Б
Рисунок 4.5. Колонка почвенных сит (по: Тихомирова, 1975): А – в собранном виде;
Б – в разобранном виде.
Изучение насекомых в наносах
После половодья на берегах водоемах образуются наносы, в которых
вместе с растительными остатками скапливается много насекомых, всплывших
из почвы или подстилки.
Собирать насекомых следует тогда, когда температура воздуха еще низ-
кая и уровень воды еще не спал. Пробы массой до 1 кг помещают в бязевые
мешочки. Разбирают так же, как пробы подстилки. Число проб и расположение
мест их отбора зависят от задач исследования
Этот метод позволяет более полно выявить состав насекомых-
герпетобионтов пойменных биотопов.
Изучение насекомых-копробионтов
Копробионты – это обитатели навоза. Основные группы копробионтов –
это личинки двукрылых и жесткокрылые.
Задачи
исследования
:
выявление
состава
фауны
насекомых-
копробионтов, соотношения таксонов, сезонной и суточной динамики числен-
ности видов в разных биотопах, выявление сходства и различия фаун разных
субстратов, сукцессии сообщества копробионтов по мере усыхания и перера-
91
ботки навоза, зависимости состояния фауны от воздействия факторов окружа-
ющей среды.
Методика.
До начала работы необходимо выяснить, какой период в сред-
нем занимает в данных условиях разложение одной «лепешки» навоза. На вы-
гоне, где пасется скот, в теплую погоду находят по 5 кучек свежего навоза и
помечают их, например, палочками. В этот же день берут пробу первой кучки.
Для этого можно использовать 2 способа. Более трудоемкий – раскапывание с
последующей выборкой насекомых пинцетом. Эффективнее же применять
ме-
тод флотации.
В ведро с водой порциями закладывается содержимое кучки и
тщательно перемешивается. Насекомые постепенно всплывают на поверхность.
Остается только их собрать и поместить в морилки. Как в первом, так и во вто-
ром случаях необходимо выбрать насекомых и из верхнего слоя почвы под «ле-
пешкой», куда они часто закапываются. Далее известный по предварительному
наблюдению срок разложения и усыхания навозной кучки делят на 4. Получаем
период, через который необходимо изучить следующую по счету «лепешку» из
помеченных. Такая последовательность позволяет выяснить изменение фауны
копробионтов в ходе сукцессии. Если неизвестен средний срок разложения суб-
страта, то можно воспользоваться упрощенным вариантом. Условно дифферен-
цируют субстрат на 3 стадии: помет свежий, средний свежести (сверху сухая
корка, внутри субстрат влажный), сухой. Пробы берут в один день, собирая
насекомых из 3–5 кучек каждой стадии.
Для сбора копробионтов также можно использовать ловушку, применяе-
мую для отлова некробионтов (см. ниже).
Изучение насекомых-некробионтов
Некробионты – это обитатели трупов позвоночных животных. Основные
группы некробионтов – это личинки двукрылых и жесткокрылые.
Задачи исследования
: выявление состава фауны насекомых-некробионтов,
соотношения таксонов, сезонной и суточной динамики численности видов в
разных биотопах, выявление сходства и различия фаун разных субстратов, сук-
цессии сообщества некробионтов по мере усыхания и переработки трупа, зави-
симости состояния фауны от воздействия факторов окружающей среды.
Методика.
Выкладывают специально трупы мелких млекопитающих,
пресмыкающихся, рыб, птиц в разных условиях. Трупы следует оградить про-
волочным заграждением. Можно проследить изменение фауны в течение вре-
мени разложения трупа.
Для сбора некробионтов используют также специальные ловушки. Ниже
приводится описание двух из них (по: Голуб и др., 2012).
Ловушка (рис. 4.6) состоит из сосуда, изготовленного из двух основных
частей пластиковых бутылок емкостью 2 л (1), двух поролоновых пластин в
форме параллелепипедов (300×50×20 мм) (2) и прямоугольного металлического
или пластикового ловчего корыта размером 300×80×100 мм (3). Корыто погру-
жается в почву так, чтобы его края были ниже уровня поверхности на 20 мм
(рис. 4.6, нижний справа). Поролоновые пластины устанавливаются вдоль краев
корыта так, чтобы они на 10 мм нависали над ловушкой, а остальная часть рас-
92
полагалась вровень с уровнем почвы. Для этого нужно сделать специальные
углубления в земле. В стенках сосуда необходимо проделать около 12 отвер-
стий диаметром 15 мм так, чтобы они располагались вдоль его противополож-
ных сторон.
Рисунок 4.6. Ловушка для копрофагов и некрофагов (комментарии в тексте)
Ловушка работает следующим образом. Взяв в руки две половинки сосу-
да, нужно зачерпнуть ими часть свежей «коровьей лепешки» или захватить
труп животного, после чего обе половинки следует объединить, вставив одну из
них в другую. Далее сосуд с приманкой нужно расположить горизонтально над
корытом. Насекомые (преимущественно жуки), привлеченные запахом, исхо-
дящим из многочисленных отверстий сосуда, двигаются к нему, без труда про-
давливают канавку на мягкой поверхности поролоновой пластины, проникают
под этот сосуд и оказываются в корыте (рис. 4.6).
Другой тип ловушки описан в статье В.К. Зинченко (2007) и предназна-
чен для сбора преимущественно жуков-некробионтов.
Пластиковая бутылка (0,5–1,5 л), наполненная приманкой из гниющего
мяса, рыбы, грибов, растительных остатков и др., кладётся на землю в неболь-
шое углубление горлышком над двумя (один в другом) вкопанными стаканчи-
ками. Бутылку по бокам следует привалить камешками, землёй или веточками
от сдувания ветром. Горлышко для защиты от мух желательно закрыть (напри-
93
мер, с помощью резинки) кусочком марли или другого подобного материала.
При ежедневной или более частой проверке фиксатор можно не заливать. Если
ловушка стоит более суток, то в стаканчик следует налить фиксатор (например,
3%-ный раствор уксусной кислоты). Внутренний стаканчик извлекается из
внешнего, попавшие жуки высыпаются в морилку, и стаканчик снова вставля-
ется во вкопанный. Наиболее эффективно ловушка работает в жаркий день.
Учет муравейников
Весьма трудоемкой работой является исследование гнезд муравьев.
Прежде всего, это обусловлено тем, что до сих пор единственно действенным
способом изучения остается
полная раскопка
гнезда и выборка всех оказавших-
ся там особей с последующим их пересчетом и взвешиванием. Раскопки мура-
вейников производятся путем послойного снятия наземного купола и поверх-
ностных систем ходов и камер и выборкой при помощи пинцета (крупные ви-
ды) или эксгаустера (виды с мелкими особями) имеющихся муравьев-имаго.
Плотность населения видов, сооружающих гнездовые капсулы, выражают дву-
мя показателями: количеством особей на 1 га или м
2
и суммарной площадью
оснований купола на 1 га. Численность населения и биомасса муравейников
определяется по-разному. Оценками этих характеристик служат «условная чис-
ленность населения» и «условная биомасса» – т.е. численность и биомасса осо-
бей-имаго. Для определения среднего веса взвешивают 40–50 особей с после-
дующим определением взвешенной арифметической средней (Плохинский,
1970). Биомасса семьи определяется как сумма значений по отдельным группам
и кастам. При работе на небольших площадях производится сплошной учет
всех имеющихся гнезд. Однако в большинстве случаев приходится делать вы-
борочные учеты, из которых для этой цели обычно используют 2 метода:
маршрутный учет и метод пробных площадей (Длусский, 1965).
4.3. Методы изучения насекомых, обитающих на растениях
Изучение насекомых-хортобионтов и тамнобионтов
Хортобионты – обитатели травянистой растительности, тамнобионты –
обитатели кустарников.
Задачи исследования
: выявление состава фауны названных экологических
групп насекомых, соотношения таксонов, сезонной и суточной динамики чис-
ленности видов в разных биотопах, выявление сходства и различия фаун раз-
личных биотопов, зависимости состояния фауны от воздействия различных
факторов.
Методика.
Для реализации поставленных целей обычно используется
методика кошения
. Суть метода заключается в следующем: сачком для коше-
ния делается 8–10 резких взмахов так, чтобы край сачка проходил по частям
растений, с которых намечен сбор. При кошении по травянистой растительно-
94
сти обруч сачка ориентируют перпендикулярно к поверхности земли и после
каждого взмаха поворачивают его на 180°. По окончании кошения обруч пово-
рачивают вниз параллельно поверхности земли с тем, чтобы его край закрыл
выход из сачка. Далее можно поступать по-разному. Наиболее точные данные
получаются, если все содержимое мешка поместить в морилку. Можно исполь-
зовать новые полиэтиленовые пакеты, в которые, после помещения туда пробы
насекомых, кладут ватку с замором. Пакет сразу же завязывают тугим узлом.
Чаще же сачок раскрывают, удаляют из него крупные части растений, отряхи-
вая с них насекомых в мешок. Далее осторожно вынимают пойманных насеко-
мых, при необходимости придерживая их с наружной стороны через ткань, и
помещают в морилки. Рекомендуется за единицу изучения (пробу) взять 100
взмахов, сделанных в несколько приемов (по 10–20 взмахов). Пробы берут в
солнечную погоду, после того как с растений сошла роса. Если косить по сырой
траве, то сачок быстро намокает, что резко уменьшает эффективность метода.
При кошении исследователь должен двигаться против солнца, чтобы его тень
не спугивала насекомых.
Однако наиболее точные данные о составе хортобионтов получаются при
использовании
биоценометров
. Эти приспособления бывают разных конструк-
ций, но принцип их применения один. Участок площадью 1 или 0,25 м
2
накры-
вают прибором, выбирают всех животных и пересчитывают на определенную
площадь.
Наиболее часто используется биоценометр с мешком (рис. 4.7). Основой
его служит квадратная рама. Длина каждой стороны по внутреннему краю –
50 см, высота – 10 см. Нижний край рамы остро отточен, верхний – отогнут
наружу кантом шириной около 1 см. Снаружи к биоценометру прикреплены
ручки. Площадь, покрытая такой рамой, равна 0,25 м
2
. Вторая часть биоцено-
метра – мешок высотой около 170 см (в зависимости от роста исследователя),
без дна, диаметром немного шире рамы. Нижняя половина мешка сшита из по-
лотна или бязи, верхняя – из марли.
Нижний край мешка, снабженный резинкой, надевают на верхнюю часть
рамы, выше ручек, под кантом. Затем мешок перевязывают шнурком посре-
дине, где полотно сшито с марлей. В таком виде биоценометр набрасывают на
площадку. Исследователь просовывает в верхнюю часть мешка голову и руки
(резина затягивает его на уровне груди или пояса), затем отвязывает шнурок,
перехватывающий мешок, и оказывается в биоценометре (см. рис. 4.7). Предва-
рительно исследователь должен взять все необходимое для сбора животных:
морилку, пробирки, пинцет, кисточку и пр. Сначала вылавливают из биоцено-
метра летающих насекомых, затем собирают их с растений и с поверхности
земли. После того как все быстробегающие животные собраны, обрезают во-
круг биоценометра землю, удаляют биоценометр и продолжают обследовать
изучаемую площадку. Срезанную траву переносят в банки или мешочки для де-
тального последующего анализа в лаборатории. Насекомых, обнаруженных у
корней растений, собирают в отдельные пробирки; выкапывают дерновину и
укладывают также в банку или мешочек для детального изучения.