Файл: Туровцев. Биоиндикация.pdf

216 

mo) Махорка 

(Nicotiana 

rustica) 

Сельдерей 

{Apium graveolens)

Крыса 

(Rattus rattus

легочной ткани 

Хлор (С1

2

) 

Личинки  синей  мухи 

красноголо-вой 

{Calli-

phora erythrocephala)

Шпинат 

{Spinacia  ole-

racea 

Фасоль 

(Phaseolus  vul-

garis) 

Салат 

(Lactuca 

sativa

Повышение  смертно-

сти личинок 

Побледнение 

листьев 

Деформация  хлоропла-

стов 

С

2

Н

4

Петуния 

{Petunia  nucta-

giniflora 

cv. White Joy) 

Салат 

(Lactuca  sativa) 

Томат 

(Lycopersicon  es-

culentum

Отмирание  цветочных 

почек, мелкие цветки 

Закручивание  краев  ли-

стьев,  повышение  пи-

роксидазной  активно-

сти 

радионуклиды 

90

Sr, 

137

Cs 

Олений  мох 

{Cladonia 

rangiferina) 

Исланд-

ский  мох 

{Cetraria 

island ica)

Накопление  в  сухом 

веществе 

Фторид-ион, ионы метал-

eB(Pb,Zn,Cd,Mn,Cu) 

Райграс  многоцветко-

вый 

{Lolium multiflorum 

cv.  Optima)  Полевица 

ползучая  и  полевица 

тонкая 

(Agrostis  stolo-

nifera, A. tenuis)

Накопление  в  сухом 

веществе 

Изменение  в  соотноше-

нии Т- и В-лимфоцитов, 

уменьшение 

В-

лимфоцитарной  реак-

217 

Мышь 

{Mus musculus)

Пчела  медоносная 

{Apis 

mellifera)

Горчица  белая 

(Sinapis 

alba) 

Листовая  капуста   

{Brassica  oleracea 

var. 

acephala) 

Конский    

каштан 

{Aesculus  hip-

pocastanum) 

Мхи 

{Sphagnum 

sp.,   

Hyp-

num 

cupressiforme,  

Pohlia  nutans,  Pleuro-

zium schreberi)

ции 

Накопление в меде 

Накопление  в  сухом 

веществе 

Сочетание  вредных  ве-

ществ  в  воздухе  (SO

2

, 

НО, NO

2

, HF) 

Выводковые 

почки 

Marchantia polymorpha

Листовые  и  кустистые 

лишайники 

{Hypogym-

nia  physodes,  Pseude-

vernia furfuracea, Cetra-

ria glauca)

Пихта 

(Abies  alba) 

Ель 

(Picea  abies) 

Сосна 

(Pi-

nus sylvestris)

Уменьшение  прироста 

клеток 

Снижение  содержания 

хлорофиллов  а  и  Ь, 

уменьшение  содержа-

ния  живых  клеток  во-

дорослей 

Снижение  содержания 

хлорофиллов  а  и  Ь, 

уменьшение 

возраста 

хвоинок  и  задержка 

роста 

218 

Рис. 7. Некрозы на листьях табака Nicotiana tabacum BeI W 3 под дейст-

вием содержащегося в воздухе озона (О

3

) на Британских островах 

Классы некрозов (% поврежденной листовой поверхности): 1 - › 0,01 %; 

2 - › 0,54 %; 3 - › 1,06 %; 4 - › 1,59 %; 5 – 2,11-2,64 % (по: Tompson, Farrar, 

1980). 

Кресс-салат как тест-объект для оценки загрязнения почвы и воздуха. 

Кресс-салат,  отличающийся  быстрым  и  почти  стопроцентным  прорас-

танием применяют для исследования почв, загрязненных солями тяжелых 

219 

металлов,  воздуха  –  выхлопными  газами.  Семена  кресс-салата  проращи-

вают в чашках Петри по 50 семян на фильтрованной бумаге или на иссле-

дуемой почве в течение 10 дней. Контролем служат семена, проращивае-

мые  в чистом  воздухе и  на  незагрязненной почве.  Растения  можно  выса-

живать и в открытый грунт. При наличии загрязняющих веществ снижает-

ся всхожесть и рост зародышевых корешков. В открытом грунте под влия-

нием газообразных выбросов снижается общая длина проростков. 

9.2. Биотестирование загрязнений почвы

. 

Для тестирования остатков пестицидов, нитратов, тяжелых металлов в 

почве и воде используют стандартный микробиотест, позволяющий опре-

делить  эффект  суммарного  присутствия  всех  токсикантов  и  токсическое 

действие широкого круга загрязнителей. С этой целью в питательную сре-

ду на основе почвенной водной вытяжки (почва: вода = 1 : 10) высеивают 

культуру  фотобактерий  фосфорных.  Количественную  оценку  содержа-

щихся в почве токсикантов дают по степени ингибирования фермента лю-

цеферазы, что регистрируется биолюминаметром БАМ 8101 по изменению 

замедленной флюоресценции (Пшеничников, Закирова и др., 1995). 

Классическим  тест-объектом  на  загрязнения  почв  является  однокле-

точная  зеленая  водоросль  хлорелла  обыкновенная.  Метод  основан  на 

оценке  влияния  токсикантов  на  продолжительность  жизни  и  продуктив-

ность тест-системы, численность живых клеток хлореллы обыкновенной и 

динамику ее фитомассы в загрязненной почве (Круглов, 1991). Имеющие 

зеленый  цвет  зеленые  и  диатомовые  водоросли  под  действием  токсикан-

тов в загрязненной почве меняют окраску на густо-коричневую, обесцве-

чиваются или теряют тургор и легко повреждаются (Jain, Sarbhoy, 1987). 

Для тестирования почвы, загрязненной тяжелыми металлами, проводят 

учет  биологического  разнообразия  водорослей  на  единице  площади.  Ис-

чезновение зеленых и особенно желтозеленых водорослей происходит уже 

при незначительном загрязнении почвы. 

220 

При  оценке  экологических  последствий  применения  химических 

средств защиты растений проводится определение остаточных количеств 

этих  препаратов  в  почве  и  в  меньшей  степени  в  получаемой  продукции 

возделываемых  культур.  Однако  это  определение  не  дает  полной  объек-

тивной  информации  о  токсичности,  поскольку  она  обуславливается  не 

только остаточными количествами  препаратов в почве и в меньшей сте-

пени в получаемой продукции возделываемых культур. Однако это опре-

деление  не  дает  полной  объективной  информации  о  токсичности,  по-

скольку она обуславливается не только остаточными количествами препа-

ратов, но и

их метаболитами в почве и продукции. Известно, что метабо-

литы ряда пестицидов в 2-10 раз токсичнее

самих препаратов и устойчивы 

к разложению почвенной микрофлорой. Применение препаратов, как пла-

вило, приводит к увеличению численности опрeделѐнных групп микроор-

ганизмов, особенно грибов и актиномицетов, многие из которых способ-

ны продуцировать фитосинтетические вещества. 

Одним из перспективных методов определения токсичности почвы 

и получаемой продукции считается метод биотеста. В США в качестве 

биотеста  наиболее  часто  используют  семена  кукурузы,  огурца,  сахар-

ной свѐклы; в Великобритании - гороха, чечевицы, сахарной свѐклы; в 

Австралии - пшеницы; в Италии - капусты, фасоли, огурца, проса; в 

Новой  Зеландии  -  овса,  репы;  в  России  -  редиса,  мака,  пшеницы, 

вики,  салата,  горчицы,  кукурузы.  Для  определения  токсичности  пред-

почтительнее  мелкие  семена  с  небольшим  запасом  питательных  ве-

ществ. Обычно с этой целью в полевых или вегетационных условиях вы-

севают семена растений-индикаторов,  токсический эффект определяют 

через  15-30  дней  по  снижению  массы  растений,  высоты  проростков, 

длины  корневой  системы  по  сравнению  с  контрольным  вариантом.  Хо-

рошие результаты даѐт определение энергии прорастания и лаборатор-

ной всхожести семян, замоченных на одни сутки в воде (контроль) и в