Файл: Учебник для студентов медицинских вузов и слушателей последипломного образования.pdf
ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 03.12.2023
Просмотров: 529
Скачиваний: 2
ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
удобным сохранение клинической классификации заболеваний с указанием их аллельной принадлежности.
В некоторых случаях фенотипическое выражение специфической мутации может меняться в зависимости от внешних условий или
средового
фона
. На проявление мутации могут также оказывать влияние состояния каких-то других генов, модифицирующих развитие признаков, так называемых
генов-модификаторов
. В этом случае говорят о роли
генетического фона
в формировании признака. Характер взаимодействия между аллелями разных генов существенно отражается на особенностях фенотипа. Наиболее известными типами межгенных взаимодействий являются
комплементарность
,
эпистаз
и
полимерия
. Комплементарность это такой тип взаимодействия между генами, который приводит к образованию нового признака, отсутствующего у родителей. При эпистатическом взаимодействии наблюдается подавление фенотипического проявления одного гена действием другого. При полимерии несколько генов участвуют в формировании одного признака, причем их эффекты примерно одинаковы. Роль полимерии особенно велика при формировании количественных признаков.
И средовой, и генетический фон могут влиять как на проявление мутации, то есть ее
пенетрантность
, так и на степень выраженности признака, то есть его
экспрессивность
. Большой вклад в исследование этих явлений внесли работы отечественных генетиков, прежде всего Н. В.
Тимофеева-Ресовского и Б. Л. Астаурова, а также многих других ученых.
Неполная пенетрантность, при которой болезнь развивается лишь у части мутантных индивидуумов, характерна, в частности, для аутосомно- доминантного гипофосфатемического рахита, первичной легочной гипертензии,аритмогенной дисплазии правого желудочка, надклапанного стеноза аорты Эйзенберга и многих других наследственных заболеваний.
Варьирующая экспрессивность проявляется различной тяжестью клинических симптомов заболевания. У части больных, принадлежащих
В некоторых случаях фенотипическое выражение специфической мутации может меняться в зависимости от внешних условий или
средового
фона
. На проявление мутации могут также оказывать влияние состояния каких-то других генов, модифицирующих развитие признаков, так называемых
генов-модификаторов
. В этом случае говорят о роли
генетического фона
в формировании признака. Характер взаимодействия между аллелями разных генов существенно отражается на особенностях фенотипа. Наиболее известными типами межгенных взаимодействий являются
комплементарность
,
эпистаз
и
полимерия
. Комплементарность это такой тип взаимодействия между генами, который приводит к образованию нового признака, отсутствующего у родителей. При эпистатическом взаимодействии наблюдается подавление фенотипического проявления одного гена действием другого. При полимерии несколько генов участвуют в формировании одного признака, причем их эффекты примерно одинаковы. Роль полимерии особенно велика при формировании количественных признаков.
И средовой, и генетический фон могут влиять как на проявление мутации, то есть ее
пенетрантность
, так и на степень выраженности признака, то есть его
экспрессивность
. Большой вклад в исследование этих явлений внесли работы отечественных генетиков, прежде всего Н. В.
Тимофеева-Ресовского и Б. Л. Астаурова, а также многих других ученых.
Неполная пенетрантность, при которой болезнь развивается лишь у части мутантных индивидуумов, характерна, в частности, для аутосомно- доминантного гипофосфатемического рахита, первичной легочной гипертензии,аритмогенной дисплазии правого желудочка, надклапанного стеноза аорты Эйзенберга и многих других наследственных заболеваний.
Варьирующая экспрессивность проявляется различной тяжестью клинических симптомов заболевания. У части больных, принадлежащих
одной семье, могут наблюдаться стертые и абортивные формы заболевания, которые могут быть обнаружены лишь с использованием специальных методов обследования, тогда как у других наблюдается развернутая картина заболевания. Например, различные мутации в гене коллагена 7 типа
(COL7A1) приводят к девяти нозологически самостоятельным формам дистрофического буллѐзного эпидермолиза, значительно различающимся между собой по дебюту, тяжести течения, прогнозу, локализации патологических очагов, площади поражения, присутствию сопутствующих клинических проявлений в виде дистрофии ногтей и несовершенного дентиногенеза. Каких-либо закономерностей в характере мутаций в гене
COL7A1, ассоциированных с различными клиническими вариантами дистрофического буллѐзного эпидермолиза, до сих пор не выявлено.
Мутации одного и того же типа могут приводить к очень тяжелым сублетальным формам заболевания (Пасини или Барт-типа), более мягким локализованным вариантам (Коккейна–Турена, претибиальному или чешуйчатому буллѐзному эпидермолизу), самоизлечивающейся неонатальной форме преходящего буллѐзного дермолизиса. и даже к изолированной дистрофии ногтей на пальцах стоп без проявлений буллѐзного эпидермолиза. Более того, в некоторых случаях у больных с различными клиническими вариантами дистрофического буллѐзного эпидермолиза идентифицированы одинаковые мутации в гене COL7A1.
Чрезвычайно вариабельны даже в пределах одной семьи клинические проявления полиморфной дистрофии роговицы глаза – редком аутосомно- доминантном заболевании, характеризующеися метаплазией и чрезмерно быстрым ростом эндотелия клеток роговичной оболочки – от тяжѐлых форм с прогредиентным течением, до бессимптомных вариантов. Варьирующая экспрессивность характерна для аутосомно-доминантной несиндромальной гиподантии/олигодантии и многих других наследственных заболеваний.
Еще одним примером сложности взаимоотношений между геном и признаком является
плейотропия
, которая заключается в том, что мутация
(COL7A1) приводят к девяти нозологически самостоятельным формам дистрофического буллѐзного эпидермолиза, значительно различающимся между собой по дебюту, тяжести течения, прогнозу, локализации патологических очагов, площади поражения, присутствию сопутствующих клинических проявлений в виде дистрофии ногтей и несовершенного дентиногенеза. Каких-либо закономерностей в характере мутаций в гене
COL7A1, ассоциированных с различными клиническими вариантами дистрофического буллѐзного эпидермолиза, до сих пор не выявлено.
Мутации одного и того же типа могут приводить к очень тяжелым сублетальным формам заболевания (Пасини или Барт-типа), более мягким локализованным вариантам (Коккейна–Турена, претибиальному или чешуйчатому буллѐзному эпидермолизу), самоизлечивающейся неонатальной форме преходящего буллѐзного дермолизиса. и даже к изолированной дистрофии ногтей на пальцах стоп без проявлений буллѐзного эпидермолиза. Более того, в некоторых случаях у больных с различными клиническими вариантами дистрофического буллѐзного эпидермолиза идентифицированы одинаковые мутации в гене COL7A1.
Чрезвычайно вариабельны даже в пределах одной семьи клинические проявления полиморфной дистрофии роговицы глаза – редком аутосомно- доминантном заболевании, характеризующеися метаплазией и чрезмерно быстрым ростом эндотелия клеток роговичной оболочки – от тяжѐлых форм с прогредиентным течением, до бессимптомных вариантов. Варьирующая экспрессивность характерна для аутосомно-доминантной несиндромальной гиподантии/олигодантии и многих других наследственных заболеваний.
Еще одним примером сложности взаимоотношений между геном и признаком является
плейотропия
, которая заключается в том, что мутация
может приводить к развитию патологических процессов одновременно в нескольких системах, органах и тканях. Полисистемность поражения характерна для очень многих наследственных заболеваний. Какие именно органы и ткани вовлекаются в патологический процесс, зависит, в первую очередь, от характера экспрессии мутантного гена и тканеспецифических функций кодируемого им белка.
Далеко не все, а только около 5% генов человека связаны с моногенными заболеваниями. Во-первых, функции некоторых генов настолько важны, что их нарушения в результате возникновения каких-то мутаций несовместимы с жизнью. Чаще всего, такие мутации приводят к ранней эмбриональной летальности. С другой стороны, последствия мутаций в некоторых генах могут быть компенсированы за счет продуктов других генов. Существует немало примеров дублирования определенных функций организма как на генном, так и на белковом уровнях.
Для практических целей важно знать, как записываются мутации.
Разработана универсальная, стандартная система, рассчитанная как на запись аминокислотных замен в белках, так и на нуклеотидные замены и перестановки в ДНК. В первом случае при миссенс-мутации каждой аминокислоте соответствует одно- или трехбуквенный символ – табл. 4.
Слева записывается нормальный вариант аминокислоты, справа – мутантный. Номер в центре соответствует месту замены в полипептидной цепи. Например, запись P252R или Pro252Arg означает замену пролина на аргинин в 252 положении белка. Такая мутация в гене Fgf-рецептора 2 является причиной развития многих наследственных вариантов краниосиностозов, причем, как правило, она возникает de novo.
Буквой Х обозначается остановка синтеза при нонсенс-мутациях.
Например, R1226X или Arg1226X означает замену аргинина на стоп-сигнал в
1226 кодоне. Это мажорная мутация в гене коллагена 17 типа, идентифицированная у больных атрофическим буллѐзным эпидермолизом из
Америки, Германии, Голландии и некоторых других стран. Делеции или
Далеко не все, а только около 5% генов человека связаны с моногенными заболеваниями. Во-первых, функции некоторых генов настолько важны, что их нарушения в результате возникновения каких-то мутаций несовместимы с жизнью. Чаще всего, такие мутации приводят к ранней эмбриональной летальности. С другой стороны, последствия мутаций в некоторых генах могут быть компенсированы за счет продуктов других генов. Существует немало примеров дублирования определенных функций организма как на генном, так и на белковом уровнях.
Для практических целей важно знать, как записываются мутации.
Разработана универсальная, стандартная система, рассчитанная как на запись аминокислотных замен в белках, так и на нуклеотидные замены и перестановки в ДНК. В первом случае при миссенс-мутации каждой аминокислоте соответствует одно- или трехбуквенный символ – табл. 4.
Слева записывается нормальный вариант аминокислоты, справа – мутантный. Номер в центре соответствует месту замены в полипептидной цепи. Например, запись P252R или Pro252Arg означает замену пролина на аргинин в 252 положении белка. Такая мутация в гене Fgf-рецептора 2 является причиной развития многих наследственных вариантов краниосиностозов, причем, как правило, она возникает de novo.
Буквой Х обозначается остановка синтеза при нонсенс-мутациях.
Например, R1226X или Arg1226X означает замену аргинина на стоп-сигнал в
1226 кодоне. Это мажорная мутация в гене коллагена 17 типа, идентифицированная у больных атрофическим буллѐзным эпидермолизом из
Америки, Германии, Голландии и некоторых других стран. Делеции или
инсерции обозначают символами del (или ∆) и ins соответственно с указанием нуклеотидов, если их не более двух, или в противном случае - их числа. Вспомним мажорную мутацию в гене муковисцидоза – delF508.
Сплайсинговая мутация обозначается символом IVS. Например, сплайсинговая мутация
IVS46+5
G-A в гене фибрилина
1, сопровождающаяся ошибочным вырезанием экзона 51, встретились у 9 неродственных больных синдромом Марфана. Это необычная ситуация, так как в гене фибриллина практически нет мажорных мутаций, и подавляющее большинство из 563 мутаций, представленных в базе данных, уникальны, то есть описаны только у одного больного или в одной семье.
Полиморфизмы, связанные с равноценной по функциональной значимости заменой аминокислот, записывают через косую черту. Например, M/V470 означает метионин или валин в положении 470.
Таблица 4
Обозначение аминокислот
3-буквенное
обозначение
Аминокислота
1-буквенное
обозначение
3-буквенное
обозначение
Аминокислота
1-буквенное
обозначение
Ala
Аланин
A
Leu
Лейцин
L
Arg
Аргинин
R
Lys
Лизин
K
Asn
Аспарагин
N
Met
Метионин
M
Asp
Аспарагиновая кислота
D
Phe
Фенилаланин
F
Cys
Цистеин
C
Pro
Пролин
P
Gln
Глутамин
Q
Ser
Серин
S
Glu
Глутаминовая кислота
E
Thr
Треонин
T
Gly
Глицин
G
Trp
Триптофан
W
His
Гистидин
Y
Tyr
Тирозин
Y
Ile
Изолейцин
I
Val
Валин
V
Сплайсинговая мутация обозначается символом IVS. Например, сплайсинговая мутация
IVS46+5
G-A в гене фибрилина
1, сопровождающаяся ошибочным вырезанием экзона 51, встретились у 9 неродственных больных синдромом Марфана. Это необычная ситуация, так как в гене фибриллина практически нет мажорных мутаций, и подавляющее большинство из 563 мутаций, представленных в базе данных, уникальны, то есть описаны только у одного больного или в одной семье.
Полиморфизмы, связанные с равноценной по функциональной значимости заменой аминокислот, записывают через косую черту. Например, M/V470 означает метионин или валин в положении 470.
Таблица 4
Обозначение аминокислот
3-буквенное
обозначение
Аминокислота
1-буквенное
обозначение
3-буквенное
обозначение
Аминокислота
1-буквенное
обозначение
Ala
Аланин
A
Leu
Лейцин
L
Arg
Аргинин
R
Lys
Лизин
K
Asn
Аспарагин
N
Met
Метионин
M
Asp
Аспарагиновая кислота
D
Phe
Фенилаланин
F
Cys
Цистеин
C
Pro
Пролин
P
Gln
Глутамин
Q
Ser
Серин
S
Glu
Глутаминовая кислота
E
Thr
Треонин
T
Gly
Глицин
G
Trp
Триптофан
W
His
Гистидин
Y
Tyr
Тирозин
Y
Ile
Изолейцин
I
Val
Валин
V
1 2 3 4 5 6 7 8 9 ... 24
Глава 1.11. Обратная генетика, генная инженерия
Подчеркнем еще раз, что определение нуклеотидной последовательности кодирующей области гена означает расшифровку аминокислотной последовательности кодируемого белка. А знание аминокислотной последовательности белка, в свою очередь, позволяет реконструировать его третичную структуру и доменную организацию.
Является этот белок секреторным или внутриклеточным, может быть это трансмембранный белок, возможно, он выполняет функции ионного канала или рецептора, или участвует во взаимодействии с другими белками, может быть он ассоциирован с ядром или митохондриями? Оказалось, что все эти и очень многие другие функции белков связаны с определенными, как говорят, конценсусными последовательностями аминокислот.
И проводя сопоставительный компьютерный анализ, можно довольно точно реконструировать функции этого прогнозируемого белка. Вся эта дорога «от гена к белку» называется
обратной генетикой
Открытие любого гена всегда сопровождается изоляцией и клонированием его кодирующей области, так называемой молекулы
комплементарной ДНК – кДНК
. Для того чтобы определить, что такое кДНК, нужно вспомнить процесс транскрипции. Мы говорили, транскрипция это синтез молекулы РНК, комплементарной определенным участкам молекулы
ДНК, то есть генам. А есть процесс
обратной транскрипции
, когда в качестве матрицы используется молекула РНК и с помощью определенного фермента, который так и называется –
обратная транскриптаза
– производится синтез молекул ДНК. Если взять какую-то специфическую молекулу мРНК и провести обратную транскрипцию, получится очень важный класс молекул – комплементарная ДНК. Вы помните, в мРНК уже нет интронов, поскольку сплайсинг уже прошел. Поэтому обратный синтез
ДНК с использованием в качестве матрицы мРНК позволяет получить молекулу кДНК, составленную только из экзонов, то есть представляющую собой кодирующую область соответствующего этой мРНК гена.
Рисунок 25. Получение комплементарной ДНК
На следующем этапе молекулу кДНК клонируют.
Клонирование
это очень эффективный метод поддержания и размножения любых относительно небольших молекул ДНК путем их встраивания в
вектор
и введения этой конструкции в клетки-хозяина – рис. 26. Химерные молекулы, составленные из ДНК различного происхождения, называются
рекомбинантными ДНК
Вектора обеспечивают проникновение чужеродных ДНК в клетки, и их конструируют на базе тех молекул, которым свойственно проникать в клетки, чаще всего вирусных или плазмидных ДНК. При этом стараются избавиться от собственных генов вирусов, чтобы вектор ни в коем случае не обладал инфицирующими свойствами. В качестве клеток-хозяина чаще всего используют бактериальные клетки.
Рисунок 26. Клонирование ДНК
Клонированную кДНК условно называют
«ген в пробирке»
. Эта система позволяет работать с геном как с веществом. Можно наращивать число копий гена путем размножения клеток-хозяина. Одновременно могут быть обеспечены условия для экспрессии введенной в бактериальную клетку кДНК. Так, например, при клонировании генов человека в бактериях можно добиться синтеза в них чужеродных для этих клеток белков человека. Такая возможность, как мы уже указывали, определяется универсальностью генетического кода, то есть одинаковым прочтением информации, записанной в молекулах ДНК, клетками любого видового происхождения.
Клонирование лежит в основе всей
генной инженерии
и, в частности, геноинженерного производства лекарственных препаратов, таких как инсулин, интерферон и многие другие.
После получения «гена в пробирке» определяют нуклеотидную последовательность клонированной кДНК.
Процесс определения нуклеотидных последовательностей ДНК называется
секвенированием
, а сами эти последовательности иногда называют
сиквенсами
. Методы
секвенирования впервые были разработаны Сенджером, Максамом и
Гилбертом в 1977 году. В настоящее время они значительно усовершенствованы и носят характер рутинной процедуры. Переход от прогнозируемого или виртуального белка к реальному осуществляется путем получения антител либо к искусственно синтезируемым полипептидам, гомологичным прогнозируемой полипептидной последовательности, либо к продукту экспрессии кДНК в клетках-хозяина.
С помощью антител можно анализировать характер распределения этого белка in vivo в норме и при каких-то патологических состояниях, а также попытаться выделить его в количестве, достаточном для прямого биохимического анализа и выявления тех метаболитов, которые взаимодействуют с этим белком. Давайте задумаемся, что все это означает, если речь идет о заболевании, в этиологии которого есть генетическая составляющая? Идентификация подобного белка означает нахождение первичного биохимического дефекта при данном заболевании. Выделение этого белка и его биохимический анализ означает расшифровку первичной патологической метаболической цепи, то есть понимание молекулярных основ не только этиологии, но и начальных этапов патогенеза заболевания. А это, в свою очередь, создает базис для разработки не только симптоматических, но и патогенетических методов лечения заболевания – одно из главнейших направлений современной молекулярной медицины.
Подчеркнем еще раз, что самая простая дорога к пониманию того, как устроены белки, лежит через гены. Вспомним, какие грандиозные усилия тратили ученые всего мира еще 2-3 десятилетия тому назад на то, чтобы расшифровать аминокислотные последовательности наиболее просто устроенных белков или даже их фрагментов. Это методы физико- химического анализа, ядерно-магнитного резонанса, рентгено-структурного анализа, электронной микроскопии, масс-спектроскопии и др. Лучшие умы занимались этими вопросами в самых передовых хорошо оснащенных лабораториях. И успехи были достаточно скромные! Сейчас дела обстоят
Гилбертом в 1977 году. В настоящее время они значительно усовершенствованы и носят характер рутинной процедуры. Переход от прогнозируемого или виртуального белка к реальному осуществляется путем получения антител либо к искусственно синтезируемым полипептидам, гомологичным прогнозируемой полипептидной последовательности, либо к продукту экспрессии кДНК в клетках-хозяина.
С помощью антител можно анализировать характер распределения этого белка in vivo в норме и при каких-то патологических состояниях, а также попытаться выделить его в количестве, достаточном для прямого биохимического анализа и выявления тех метаболитов, которые взаимодействуют с этим белком. Давайте задумаемся, что все это означает, если речь идет о заболевании, в этиологии которого есть генетическая составляющая? Идентификация подобного белка означает нахождение первичного биохимического дефекта при данном заболевании. Выделение этого белка и его биохимический анализ означает расшифровку первичной патологической метаболической цепи, то есть понимание молекулярных основ не только этиологии, но и начальных этапов патогенеза заболевания. А это, в свою очередь, создает базис для разработки не только симптоматических, но и патогенетических методов лечения заболевания – одно из главнейших направлений современной молекулярной медицины.
Подчеркнем еще раз, что самая простая дорога к пониманию того, как устроены белки, лежит через гены. Вспомним, какие грандиозные усилия тратили ученые всего мира еще 2-3 десятилетия тому назад на то, чтобы расшифровать аминокислотные последовательности наиболее просто устроенных белков или даже их фрагментов. Это методы физико- химического анализа, ядерно-магнитного резонанса, рентгено-структурного анализа, электронной микроскопии, масс-спектроскопии и др. Лучшие умы занимались этими вопросами в самых передовых хорошо оснащенных лабораториях. И успехи были достаточно скромные! Сейчас дела обстоят
совершенно по-другому. Как только расшифровывается нуклеотидная последовательность кодирующей области гена, эта последовательность вводится в определенную компьютерную программу, которая вырисовывает соответствующий белок в объеме, в цвете, с указанием всех активных сайтов.
Одновременно будет выписан список всех других белков по всему живому миру, которые имеют области гомологии с исследуемой аминокислотной последовательностью, и будет указано, какие функции эти белки выполняют.
Таким образом, главнейшим следствием открытия гена является возможность перехода на белковый уровень анализа. В частности, открытие генов наследственных болезней человека создает методические предпосылки для изучения биохимических основ первичных патологических нарушений и разработки методов адекватной метаболической коррекции.
От работы с рекомбинантными ДНК и изучения последствий их введения в культуры клеток, то есть в системы in vitro, генная инженерия перешла на уровень экспериментальных животных и растений, то есть на системы in vivo. Этому способствовали успехи в области экспериментальной эмбриологии. Были созданы предпосылки для целенаправленного конструирования генетических модельных линий путем
трансгеноза
, то есть искусственного введения чужеродного генетического материала в оплодотворенную яйцеклетку или ранние зародыши экспериментальных объектов. Получающиеся в результате подобных манипуляций
трансгенные
линии
животных или растений являются идеальными экспериментальными системами для изучения функций отдельных генов и оценки их биологического действия на организм, исследования молекулярно- генетических основ онтогенеза, а также возможности работы со специфическими клонами клеток in vivo.
На первых этапах трансгенные модельные линии получали путем прямых микроинъекций рекомбинантных ДНК в ядра оплодотворенных яйцеклеток. Одновременно была разработана методика получения
зародышей-химер
, состоящих из клеточных клонов, полученных из разных
Одновременно будет выписан список всех других белков по всему живому миру, которые имеют области гомологии с исследуемой аминокислотной последовательностью, и будет указано, какие функции эти белки выполняют.
Таким образом, главнейшим следствием открытия гена является возможность перехода на белковый уровень анализа. В частности, открытие генов наследственных болезней человека создает методические предпосылки для изучения биохимических основ первичных патологических нарушений и разработки методов адекватной метаболической коррекции.
От работы с рекомбинантными ДНК и изучения последствий их введения в культуры клеток, то есть в системы in vitro, генная инженерия перешла на уровень экспериментальных животных и растений, то есть на системы in vivo. Этому способствовали успехи в области экспериментальной эмбриологии. Были созданы предпосылки для целенаправленного конструирования генетических модельных линий путем
трансгеноза
, то есть искусственного введения чужеродного генетического материала в оплодотворенную яйцеклетку или ранние зародыши экспериментальных объектов. Получающиеся в результате подобных манипуляций
трансгенные
линии
животных или растений являются идеальными экспериментальными системами для изучения функций отдельных генов и оценки их биологического действия на организм, исследования молекулярно- генетических основ онтогенеза, а также возможности работы со специфическими клонами клеток in vivo.
На первых этапах трансгенные модельные линии получали путем прямых микроинъекций рекомбинантных ДНК в ядра оплодотворенных яйцеклеток. Одновременно была разработана методика получения
зародышей-химер
, состоящих из клеточных клонов, полученных из разных
зигот. Если эти клетки различаются, например, по генам окраски шерсти, химерное животное будет иметь поперечную или пятнистую окрашенность.
При этом животные, независимо полученные в результате объединения бластомеров двух разных линий, будут отличаться друг от друга по характеру пятнистости, так как процесс формирования клонов из разных клеток ранних зародышей носит случайный характер – рис. 27.
Рисунок 27. Химерные животные, различающиеся по гену окраски шерсти
Более прогрессивный способ создания трансгенных линий основан на использовании в качестве клеточных векторов
эмбриональных стволовых
клеток (ЭСК)
. ЭСК получают из клеток бластоцисты (внутренней клеточной массы) или из первичных половых клеток ранних постимплантационных зародышей. Они обладают свойством
тотипатентности
, то есть способностью дифференцироваться в любые специализированные типы клеток. Генетическую модификацию ЭСК проводят в условиях культивирования, а затем их вводят в бластоцель, где они могут случайным образом участвовать в формировании эмбриональных зачатков и органов развивающегося зародыша – рис. 28.
Значительный прогресс в изучении молекулярной природы наследственных болезней человека связан с возможностью конструирования и генетического анализа трансгенных линий мышей с сайт специфической модификацией определенного гена. Техника трансгеноза позволяет направленно разрушать гены и получать так называемые
«нокаут»
-линии, вводить специфические мутации в определенный ген, получать линии животных с гиперэкспрессией, тканеспецифической или эктопической экспрессией дополнительной введенной генетической конструкции.
Генетические манипуляции могут быть проведены только в одной или нескольких специфических тканей экспериментального животного и даже в определенный момент дифференцировки. Подобные модельные линии мышей сконструированы практически для всех известных генов,
При этом животные, независимо полученные в результате объединения бластомеров двух разных линий, будут отличаться друг от друга по характеру пятнистости, так как процесс формирования клонов из разных клеток ранних зародышей носит случайный характер – рис. 27.
Рисунок 27. Химерные животные, различающиеся по гену окраски шерсти
Более прогрессивный способ создания трансгенных линий основан на использовании в качестве клеточных векторов
эмбриональных стволовых
клеток (ЭСК)
. ЭСК получают из клеток бластоцисты (внутренней клеточной массы) или из первичных половых клеток ранних постимплантационных зародышей. Они обладают свойством
тотипатентности
, то есть способностью дифференцироваться в любые специализированные типы клеток. Генетическую модификацию ЭСК проводят в условиях культивирования, а затем их вводят в бластоцель, где они могут случайным образом участвовать в формировании эмбриональных зачатков и органов развивающегося зародыша – рис. 28.
Значительный прогресс в изучении молекулярной природы наследственных болезней человека связан с возможностью конструирования и генетического анализа трансгенных линий мышей с сайт специфической модификацией определенного гена. Техника трансгеноза позволяет направленно разрушать гены и получать так называемые
«нокаут»
-линии, вводить специфические мутации в определенный ген, получать линии животных с гиперэкспрессией, тканеспецифической или эктопической экспрессией дополнительной введенной генетической конструкции.
Генетические манипуляции могут быть проведены только в одной или нескольких специфических тканей экспериментального животного и даже в определенный момент дифференцировки. Подобные модельные линии мышей сконструированы практически для всех известных генов,
ассоциированных с наследственными заболеваниями человека. Кроме того, подобные методические разработки заложили фундамент для развития
генной терапии
– лечения с использованием смысловых или регуляторных последовательностей ДНК.
Глава 1.12. Генетические основы развития
В настоящее время не подвергается сомнению тот факт, что индивидуальное развитие организма находится под генетическим контролем.
В древности существовало представление о том, что в женских половых клетках уже присутствует сформированный зародыш, в яйцеклетках которого, в свою очередь, содержится еще более маленький зародыш и так далее. По подсчетам одного из основоположников сформулированной выше гипотезы А. Галлера в яичнике Евы должно было содержаться около 200 млрд. зародышей. Сейчас очевидна несостоятельность этой теории. В половых клетках содержится не сам зародыш, а инструкция в виде заключенной в молекуле ДНК генетической информации, которая во взаимодействии с внешними факторами управляет развитием организма.
Огромное количество исследований посвящено анализу молекулярно- генетических основ онтогенеза. Процесс дифференцировки детально изучен на морфологическом уровне. В последние десятилетия произошел огромный прогресс в понимании биохимических и молекулярных превращений, участвующих в контроле развития. Однако до сих пор нет удовлетворительного ответа на вопрос, как из одной оплодотворенной яйцеклетки образуется более 200 гистологических типов клеток, составляющих наш организм. В первую очередь, это связано с тем, что процесс онтогенеза отличается необычайной сложностью и удивительной организованностью.
Зигота и различные специализированные клетки содержат одинаковые наборы генов, и это значит, что дифференцировка не сопровождается утратой генетического материала. Меняется лишь характер экспрессии генов. Мы
генной терапии
– лечения с использованием смысловых или регуляторных последовательностей ДНК.
Глава 1.12. Генетические основы развития
В настоящее время не подвергается сомнению тот факт, что индивидуальное развитие организма находится под генетическим контролем.
В древности существовало представление о том, что в женских половых клетках уже присутствует сформированный зародыш, в яйцеклетках которого, в свою очередь, содержится еще более маленький зародыш и так далее. По подсчетам одного из основоположников сформулированной выше гипотезы А. Галлера в яичнике Евы должно было содержаться около 200 млрд. зародышей. Сейчас очевидна несостоятельность этой теории. В половых клетках содержится не сам зародыш, а инструкция в виде заключенной в молекуле ДНК генетической информации, которая во взаимодействии с внешними факторами управляет развитием организма.
Огромное количество исследований посвящено анализу молекулярно- генетических основ онтогенеза. Процесс дифференцировки детально изучен на морфологическом уровне. В последние десятилетия произошел огромный прогресс в понимании биохимических и молекулярных превращений, участвующих в контроле развития. Однако до сих пор нет удовлетворительного ответа на вопрос, как из одной оплодотворенной яйцеклетки образуется более 200 гистологических типов клеток, составляющих наш организм. В первую очередь, это связано с тем, что процесс онтогенеза отличается необычайной сложностью и удивительной организованностью.
Зигота и различные специализированные клетки содержат одинаковые наборы генов, и это значит, что дифференцировка не сопровождается утратой генетического материала. Меняется лишь характер экспрессии генов. Мы