ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 11.12.2023
Просмотров: 29
Скачиваний: 1
ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
На чувствительность животных к вирусам влияют следующие факторы:
1 Возраст. 2 Наличие неспецифических ингибиторов, которые выполняют
защитную функцию организма. 3 Пол животных. Наиболее чувствительны
особи женского пола — самки (болезнь Марека), менее — мужского пола
(самцы). 4 Генетические линии.
Одни животные более чувствительны, другие — резистентны.
По генетическим качествам лабораторных животных делят на четыре
группы:
1) животные смешанного происхождения, полученные от разных
животноводов, такие животные гетерогенны;
2) животные, полученные непосредственно из одного источника, однако
генетически такие животные вариабельны;
3) инбредные линии животных. Их получают в результате спаривания брата с
сестрой или родителей с детьми по крайней мере не менее 20 поколений. При
таком методе разведения достигается все возрастающая степень
гомозиготности. Из большого числа инбредных линий в качестве примера
можно указать две линии мышей: инбредная линия СЗН, полученная Стронгом (1920 г.) путем скрещивания самок мышей Ваgg-Albino с самцами ДВА (мыши этой линии имеют светло- коричневую окраску).
4) однородные гибриды F1. Высокая степень гетерозиготности, характерная для каждого гибрида, связана здесь с генетическим однообразием, которое
соответствует 11 степени гомозиготности родительских линий. Как правило,
однородные гибриды Р1 менее изменчивы, чем обе родительские линии.
Отрицательная сторона выделения вируса на лабораторных животных —
возможность диагностических ошибок вследствие активации скрытого
вирусоносительства. В последнее время для обнаружения вируса в
определенном окружении используют «сторожевых» животных», т е.
животных, выставляемых в качестве поста в целях выявления инфекционного
агента. В лабораториях таких животных используют для выявления утечки
вируса. Для некоторых вирусологических работ, например при выделении
вируса с невыясненными болезнетворными свойствами, необходимо
использовать гнотобиотов. Термин «гнотобиоты» объединяет две категории
животных: безмикробных (стерильных), не содержащих никаких жизнеспособных микробов, и гнотофор — носителей одного (моногнотофоры), двух (дигнотофоры) или более (полигнотофоры) микроорганизмов. Безмикробных животных все шире применяют в вирусологических исследованиях, так как обычные животные часто являются латентными вирусоносителями, что сказывается на результатах экспериментов. Доказана большая чувствительность гнотобиотов к вирусной инфекции.
В настоящее время безмикробные животные по динамике роста делятся на три
группы: I — обезьяны, поросята, цыплята растут лучше обычных животных или наравне с ними; II — крысы, мыши, собаки, кошки растут наравне с обычными животными; III — морские свинки, кролики, козлята, ягнята растут хуже обычных животных. Особое значение среди гнотобиотов занимают СПФ-животные, которые свободны только от патогенных микроорганизмов. В их организме имеются все необходимые для нормальной жизнедеятельности бактерии и вирусы, которые в совокупности создают группу так называемой резидентной (полезной) микрофлоры. В настоящее время получены лабораторные СПФ-животные — крысы, морские свинки, кролики, поросята, птицы и др. Другим недостатком выделения вирусов на животных является то, что для их содержания и кормления требуются немалые материальные затраты. Способы заражения животных
Перед заражением всех животных выдерживают на карантине в течение 2...3
нед. Для культивирования вирусов используют только животных клинически
здоровых, одного возраста и породы, из хозяйства, благополучного по
инфекционным заболеваниям. Метод заражения подопытных животных
животных подбирают с учетом тропизма культивируемого вируса (к данному
виду). При культивировании нейротропных вирусов, развивающихся в клетках нервной системы, животных заражают в головной мозг (фиксированный вирус бешенства). При культивировании пневмотропных вирусов (инфекционная пневропневмония коз) в качестве вируссодержащего материала используют суспензиюиз легких, смывы из носовой и ротовой полостей и зева, в качестве вируссодержащего материала берут легкие. При пантропных инфекциях (чума свиней, классическая чума птиц, чума крупного рогатого скота, африканская чума свиней и др.) используют в качестве 12 вируссодержащего материала кровь, селезенку, печень, лимфатические железы больных животных, которые извлекают с соблюдением условий стерильности. Из органов и тканей готовят соответствующую суспензию, которую применяют для последующего заражения внутривенным или подкожным методами. Для культивирования дерматропных вирусов (оспа овец и птиц,) используют пораженные участки кожи больного животного, суспензию из везикул и пустул (при оспе, ящуре), изоспенных эпителиом или дифтеритических клеток (при оспе, дифтерите птиц) или материал, взятый из трахеи (при ларинготрахеите птиц). Вируссодержащий материал лабораторным животным вводится внутрикожно.[4]
64. Уличный и фиксированный вирус бешенства. Лабораторная диагностика при бешенстве.
Возбудитель бешенства - вирус Neuroiyctes rabid, относится к группе миксовирусов рода Lyssavirus семейства Rhabdovtridae. Имеет форму винтовочной пули, размеры от 90-170 до 110-200 нм, содержит однонитевую РНК.
Вирус устойчив к фенолу, замораживанию, антибиотикам. Разрушается кислотами, щелочами, нагреванием (при 56°С инактивируется в течение 15 мин, при кипячении - за 2 мин. Чувствителен к ультрафиолетовым и прямым солнечным лучам, к этанолу к высушиванию. Быстро инактивируется сулемой (1:1000), лизолом (1-2%), карболовой кислотой (3-5%), хлорамином (2-3%).
Вирус патогенен для большинства теплокровных животных и птиц. Различают уличный (циркулирующий в природе) и фиксированный вирус бешенства, поддерживаемый в лабораториях. Фиксированный вирус не выделяется со слюной и не может быть передан во время укуса. Размножается в различных тканевых культурах (первично трипсинизированных и перевиваемых, в культурах диплоидных клеток человека или фибробластов эмбриона хомячка), а после адаптации - на куриных и утиных эмбрионах, что используют при получении антирабических вакцин. Механизм вирусной персистенции в клеточных культурах связывается с образованием и накоплением Ди-частиц. Проникновение вируса в клетки происходит путем адсорбционного эндоцитоза - вирионы выявляются в виде включений, окруженных мембраной, адсорбированных на микротрубочках и в составе лизосом.
Источниками инфекции для 60% заболевших бешенством служат собаки, для 24% - лисицы, для 10% - кошки, для 3% - волки и для 3% - другие животные. Животное становится заразным за 3-10 дней до появления признаков болезни и остается заразным в течение всего периода заболевания. Бешенство встречается почти во всех странах мира, за исключением островных государств (Великобритания, Япония, Кипр, Австралия и др.}, а
также ряда государств на севере (Норвегия, Швеция) и юге Европы (Испания, Португалия).
Диагноз на бешенство ставят на основании комплекса эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и главным образом на основании лабораторных исследований.
Для исследования направляют в лабораторию с нарочным: свежий труп или голову от собаки (кошки, лисицы, песца, овцы, теленка и др.), от крупных животных - голову или головной мозг (свежий или консервированный в 30 - 50 %-ном растворе глицерина). Для серологических исследований пригоден только неконсервированный мозг.
Лабораторная диагностика бешенства заключается в микроскопическом исследовании головного мозга (с целью обнаружения телец Бабеша-Негри), серологическом (обнаружение специфического рабического антигена), а также в постановке биологической пробы на белых мышах или кроликах.
Из головного мозга, поступившего для исследования, делают сначала засев на питательные среды. Часть мозга сразу же помещают в холодильник и сохраняют на случай необходимости повторного исследования. Из оставшейся части мозга берут материал для микроскопического исследования, серологических реакций и биологической пробы.
Список использованной литературы
1.Барышников, П. И. Лабораторная диагностика вирусных болезней животных : учебное пособие / П. И. Барышников, В. В. Разумовская. — 2-е изд., испр. — Санкт-Петербург : Лань, 2015. — 672 с.
2.Белоусова Р.В. Ветеринарная вирусология / Р.В. Белоусова, Э.А. Преображенская, И.В. Третьякова. – М.: КолосС, 2007. – 424 с.
3.Госманов Р.Г. Частная ветеринарно-санитарная микробиология и вирусология: учебное пособие / Р.Г. Госманов, Р.Х. Равилов, А.К. Галиуллин — Санкт-Петербург: Лань, 2019. — 316 с.
4.Магдеева Э.А. Моноклональные антитела / Э.А. Магдеева, А.К. Галиуллин. — Казань: КГАВМ им. Баумана, 2018. — 13 с.
5.Перетрухина, А. Т. Частная вирусология : учебное пособие / А.Т. Перетрухина, Е.И. Блинова. — Мурманск : МГТУ, 2014. — 150 с.
6.Хазиев Л.Р. Способ оптимизации состава и свойств культуральной среды для репродукции вирусов / Л.Р. Хазиев, И.С. Глаголева, Э.М. Плотникова [и др.] // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. — 2012. — № 211. — С. 183-187.