Файл: Исследование мясопродуктов Санитарномикробиологическое исследование мясных.pdf

Санитарно-микробиологическое исследование
мясопродуктов
Санитарно-микробиологическое исследование мясных
консервов
Цель занятия. Овладеть методами бактериологического исследования мясных консервов с целью определения их качества, индикации возбудителей пищевых токсикозов и токсикоинфекций, а также возбудителей порчи. Материальное оснащение Образцы исследуемых консервных банок. Питательные среды горячий МПА столбиком, среда Вильсон-Блера в пробирках высоким столбиком, чашки Петри с агаром Эндо, Левина, Плоскирева, Смирнова. Стерильный физраствор в колбах по 300 мл и по 9 мл в пробирках, стаканы с делениями, мензурки, стерильные пипетки на 1 мл, 10 мл среды обогащения и накопления для сальмонелл. Ступки с пестиком, ножницы, скальпели, пинцеты, спирт для обжигания, спиртовки, бактериологические петли, банки с дезраствором, чашки Петри со стеклянной пластинкой х см внутри чашки положенной на 2 спички для посева по Перетцу, пустые стерильные пробирки.
Консервы – пищевые продукты, предназначенные для длительного хранения,специально обработанные и герметично упакованные в тару, которая защищает их от проникновения микроорганизмов вовремя хранения и транспортировки. Основным сырьем для выработки мясных баночных консервов служит мясо животных и субпродукты, которые всегда в той или иной степени обсеменены различными сапрофитными микробами, в том числе возбудителями порчи консервов анаэробными клостридиями и термофильными бациллами, а иногда и токсигенными и патогенными микроорганизмами (токсигенные стафилококки, сальмонеллы и др. Для выработки мясных консервов можно использовать мясо и субпродукты только от здоровых и упитанных животных. Нельзя применять сырье плохо обескровленное, загрязненное, дважды замороженное, условно годное. Степень обсеменения подготавливаемого сырья микроорганизмами находится в прямой зависимости от санитарно-гигиенических условий производства. При этом источниками обсеменения могут быть руки рабочих или оборудование, а также вспомогательные материалы (пряности, соль, сахар, жир-сырец), которые всегда содержат микроорганизмы. Стерилизация консервов – заключительный этап технологического процесса консервирования. Под стерилизацией подразумевается различная степень нагревания продукта, приводящая к получению микробиологически стабильного консервированного продукта, не содержащего микроорганизмы, способные развиваться в нем при хранении в определенных температурных условиях. Основная цель стерилизации консервов – уничтожение патогенных и токсигенных микроорганизмов, способных вызывать порчу продукта. Режим стерилизации устанавливают в зависимости от вида консервов, для мясных консервов это 112-120 С. Однако, несмотря на воздействие высоких

температур, в консервах могут сохраняться жизнеспособные микробные клетки, те. не всегда достигается полная стерилизация всех банок. Эффективность стерилизации консервов зависит не только от продолжительности и температуры нагревания, но и количественного состава микрофлоры, рН среды, содержания в нем жира, поваренной соли и сахара. Споры различных видов спорообразующих микроорганизмов обладают неодинаковой устойчивостью к высоким температурам. Так, споры многих мезофильных аэробных бацилл отмирают уже при 100 С, тогда как споры
Bac.subtilis могут сохранять жизнеспособность при 130 С. Споры анаэробных микроорганизмов отмирают при высоких температурах медленнее, чем споры аэробов. В большой степени на результаты стерилизации влияет количественный состав микрофлоры, чем выше начальная микробная обсемененность консервов, тем больше времени требуется для полного уничтожения микроорганизмов и тем больше их может выжить при нагревании. Кислая среда ускоряет коагуляцию белков и отмирание микроорганизмов, а также вызывает снижение термоустойчивости вегетативных клеток и их спор. Микроорганизмы, которые в процессе стерилизации консервов, сохранили свою жизнеспособность, принято называть остаточной микрофлорой. Состав остаточной микрофлоры стерилизованных консервов, как правило, представлен споровыми микроорганизмами. Наличие в готовых консервах жизнеспособных клеток бесспоровых бактерий всегда указывает на нарушение температурного режима, в результате которого стерилизация оказалась недостаточной. В таких случаях кроме спорообразующих микробов в консервах обнаруживают стафилококки, кишечную палочку и протей.
В соответствии с положением о порядке санитарно-технического контроля на производственных предприятиях, в розничной торговле и на предприятиях общественного питания все консервы в зависимости от состава сырья, термической обработки и величины рН подразделяют на 6 групп
-
(А, Б, В, ГДЕ группа А – полные консервы консервы из говядины, свинины, конины, мяса птицы с растительными наполнителями или без них, простерилизованные в автоклавах при 110-
120 С, со сроком хранения от 9 месяцев до 2 лет при температуре не выше 30 0
С.
группа Д - полуконсервы (ветчина, бекон, сосиски) стерилизованные при 100-110 С. Их безопасность и сохранность гарантируются при хранении при температуре от 2 до С. группы Б, В, Г, Е – растительные консервы (овощи, фрукты, плодово-ягодные компоты, соки.
Особая группа консервов - пресервы – пастеризованные консервы производят из говядины, свинины, мяса птицы, рыбы, которые подвергают тепловой обработке при температуре не выше 100 С, а в случае асептического консервирования – при 130 С. Сохранность таких консервов гарантируется хранением при температуре не выше 5 С.
Правила отбора проб.

Для контроля качества консервов от партии отбирается три единицы потребительской тары для продукции вместимостью дол включительно и одна единица, если вместимость - больше 1 л. Образцы консервных банок направляют в лабораторию с сопроводительным документом, в котором указывается дата и показатели, которые должны быть определены, размеры партии, от которой отобран средний образец, сорт и дата выработки продукта, должность и фамилия лиц, отобравших образец. Доставленные образцы осматривают и проверяют герметичность последующей методике. Банки освобождают от этикеток, помещают в один ряд в предварительно нагретую до кипения воду, воду берут в кратном количестве по отношению к массе банок. Слой воды над банками должен быть не менее 3 см. Появление струйки пузырьков указывает на негерметичность. Банки выдерживают не менее 5-7 мин, сначала на дне, потом переворачивают на крышку. Для бактериологического исследования используют только герметичные банки. В зависимости от явных и скрытых дефектов различают физический, химический и микробиологический брак. Дефектами внешнего вида тары с фасованной в нее продукцией считают видимые невооруженным глазом признаки не герметичности – пробоины, подтеки или следы продукта, вытекающего из банки, а также бомбаж – вздутие консервной банки. К дефектам консервированного продукта относятся видимые невооруженным глазом признаки развития микроорганизмов, такие как брожение, заплесневение. Перед микробиологическим анализом банки подвергают термостатированию, но только герметично укупоренные, бездефектные по внешнему виду, предназначенные для определения промышленной стерильности. Консервы, предназначенные для выявления ботулинических токсинов, бомбажные, с признаками микробиологической порчи и негерметичные, термостатированию не подлежат. Для проявления жизнедеятельности
МАФАнМ консервы термостатируют при 30-37 Св таре дол включительно, не менее 5 суток, а свыше 1 л – не менее 7 суток. Для термофильных микроорганизмов – термостатируют в любой таре не менее 3 суток. Ежедневно консервы осматривают. При появлении дефектов банки удаляют из термостата, выдерживают при комнатной температуре 24 часа и, если консервы принимают прежний вид, то их считают бездефектными и продолжают термостатирование. По истечении времени инкубирования консервы извлекают из термостата и оставляют при комнатной температуре на сутки. Отмечают дефекты тары видимые невооруженным глазом, признаки развития микроорганизмов в самом продукте в стеклянных банках брожение, плесневение), в металлической таре - бомбаж. Подготовка к микробиологическому исследованию. Банки тщательно моют теплой водой и вытирают. Затем крышку банки протирают смоченным в спирте тампоном, фламбируют и вскрывают консервным ножом. Проводят органолептическое исследование определяют

внешний вид, цвет, запахи состояние содержимого. Органолептические признаки специфичны для каждого вида консервов, они должны отвечать требованиям стандартов и технических условий. Из каждой консервной банки отбирают одну или несколько навесок, предназначенных для непосредственного высева и приготовления последовательных разведений для проведения всех видов исследования. Навеску для посева отбирают весовым или объемным методом после вскрытия банки консервов в условиях исключающих микробное загрязнение, в образце должны быть представлены все компоненты ив том же соотношении, что ив продукте. Стерильность консервов определяют в случаях, когда они выработаны по специальным заказами для поставок экспедициям, космонавтике и лечебным учреждениям. Под стерильностью консервов понимают отсутствие жизнеспособных микроорганизмов в консервированном продукте. При определении стерильности консервов 1 мл (г) исходного продукта без разведения вносят в чашку Петри, заливают расплавленными охлажденным до 50 С МПА, тщательно перемешивают содержимое чашки, охлаждают и ставят в термостат при 37 С. Через нач. подсчитывают количество выросших колоний и определяют количество микроорганизмов в 1 см или в 1 г продукта. Определение промышленной стерильности. При определении промышленной стерильности в каждой упаковочной единице устанавливают присутствие или отсутствие тех микроорганизмов, показатели которых оговариваются в нормативном документе. Поэтому при выработке различных видов консервов ориентируются обычно на консервированный продукт, соответствующий требованиям промышленной стерильности В консервированном продукте промышленной
стерильности
допускается присутствие только ограниченного числа видов
спорообразующих микроорганизмов. В нем должны отсутствовать микроорганизмы и токсины микробного происхождения, опасные для здоровья людей, а также микроорганизмы, способные развиваться и вызывать порчу продукта при температуре хранении, установленной для данного вида консервов (для потребителя температура указана на этикетке. Из пробы консервированного продукта, подготовленного для анализа, готовят исходное и ряд кратных разведений на физрастворе, обычно готовят разведения до 10 4
. Из каждого разведения по 1 мл вносят в чашки Петри, заливают горячим, охлажденным до 50 С МПА, термостатируют 24 ч. при 37 С, подсчитывают количество колоний. Расчет ведут по формуле а (V
пр
+ вод)
(1) Х-

пр . q где n – степень разведения продукта при приготовлении разведений;
вод - объем воды, использованный для приготовления пробы
пр - объем продукта, использованного для приготовления пробы q - объем посевного материала, внесенного в чашку Петри.
При анализе сливов с продукта расчет ведут по формуле
А . 10
n
. V вод
( 2) Х = ------------------
V пр .. q Из параллельных посевов определяют среднеарифметическое число колоний на чашках, умножают его на соответствующее разведение и находят количество микроорганизмов в 1 мл или 1 г продукта по формуле
(1). При анализе сливов с продукта расчет ведут по формуле (2). После подсчета колоний определяют родовую и видовую принадлежность выделенного микроба. В нормативном документе на промышленно-стерильные консервы регламентированы видовой состав и допустимое количество микроорганизмов, а также внешний вид, результаты микроскопии и значение рН. Если хотя бы водном из посевов обнаружены
мезофильные клостридии Cl.botulinum и (или) Cl.perfringens, консервы оценивают как не отвечающие требованиям промышленной стерильности Для индикации и определения БГКП предусматривают установление наличия БГКП в определенной навеске продукта и подсчет их количества. По микробиологическим нормативам не допускается наличие БГКП в 1 г консервированного мяса. Методика Для индикации БГКП проводят посев по 1 г натурального продукта и из разведений 1:10, 1:100 в среду Кесслера. Посевы культивируют 24 ч в термостате при 37 С, предварительный учет проводят через 24 ч, окончательный – через 48 ч. При отсутствии признаков роста делают заключение об отсутствии БГКП в исследуемом продукте При появлении роста, признаками которого являются помутнение среды, образование газа, изменение цвета среды, проводят дальнейшие исследования. Для подтверждения принадлежности микроорганизмов к бактериям группы кишечной палочки, из проросших пробирок делают высев
0,1 мл культуральной жидкости на одну из дифференциально- диагностических сред – агар Эндо или агар Смирнова (характерно появление желтых колоний. Посевы инкубируют в термостате при 37 Св течение 24 ч. Из изолированных колоний по своим культуральным признакам характерных для кишечной палочки делают препараты, окрашивают по
Граму, изучают тинкториальные и морфологические признаки. В некоторых случаях можно проводить первичный посев 0,1 мл исходного продукта или из кратного разведения непосредственно на