ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 09.09.2020
Просмотров: 7650
Скачиваний: 75
125
б) в случае исследования воздействия ядохимикатов или биогенов уста-
навливаются две-три станции (одна – в пелагиали и одна-две – в литорали). Бе-
рется исходная проба до начала воздействия и через 1, 3, 6, 12 и 24 суток после
него. Параллельно желательно брать пробы в те же сроки в контрольном водо-
еме.
Кроме того, выбор станций отбора проб зависит от морфометрии водоема
и преследует цель возможно полнее охватить экологически разнородные участ-
ки.
При работе на озерах, водохранилищах и водоемах с похожими экологи-
ческими условиями необходимо исследовать впадающие реки и устья наиболее
крупных ручьев, основные заливы. На остальной акватории, если она невелика,
достаточно наметить 5–7 станций, расположенных равномерно. При любых ис-
следованиях должна облавливаться вся толща воды. Точки взятия проб фито-
планктона по вертикали выбирают в соответствии с характеристиками физиче-
ских факторов, оказывающих влияние на жизнедеятельность водорослей (свет,
температура, прозрачность воды). Количество точек взятия проб по глубинам
(h), необходимое для учета фитопланктона в слоях, которые могут считаться
для него биологическими нишами, в большинстве водоемов (за исключением
очень глубоких) может быть ограничено шестью: 1) поверхность – зона макси-
мальной освещенности и прогрева воды и в тоже время наиболее подверженная
ветровому воздействия; 2) горизонт, располагающийся на половине глубины
прозрачности, – близок по характеристикам к первому, но с более «мягкими»
по всем факторам условиями; 3) горизонт на глубине прозрачности – практиче-
ски совпадает с серединой трофогенного слоя
2
; 4) горизонт, соответствующий
удвоенной глубине прозрачности, – обычно совпадает с границей трофогенной
зоны (здесь располагается компенсационная точка, а при установлении летней
стратификации – термоклин); 5) горизонт, соответствующий середине трофо-
литической зоны
3
, определяется как середина расстояния от дна до удвоенной
глубины прозрачности; 6) придонный горизонт – 0,3–0,5 м от дна (проба берет-
ся осторожно, чтобы не взмутить ил). При изучении особенностей вертикально-
го распределения фитопланктона пробы с каждого горизонта помещают в от-
дельную емкость.
Если целью исследования не является определение закономерностей вер-
тикального распределения отдельных видов фитопланктона или его продукци-
онных характеристик, то на каждой станции отбирают батометром серию проб
с пропуском по глубине в 1 м до глубины утроенной прозрачности, измеренной
по белому диску. Все отобранные на станции пробы сливают в один сосуд (чи-
стое эмалированное ведро), тщательно перемешивают и в зависимости от сте-
пени развития фитопланктона заполняют пол-литровые или литровые бутыли и
консервируют.
2
Трофогенный слой (эпилимнион) – верхний прогреваемый слой воды, в котором происходит продукция
органического вещества первичными продуцентами – водорослями и высшими растениями.
3
Трофолитическая зона (гиполимнион) – нижний слой водоема, в котором преобладают процессы разложения
органики.
126
При обследовании реки, особенно в месте впадения крупных притоков,
необходимо закладывать поперечные трансекты, уменьшая число станций на
них по мере смешивания двух водных масс – основной и впадающей рек. При
закладывании трансекты вдоль реки необходимо учитывать влияние крупных
населенных пунктов и промышленных комплексов. Перед населенным пунктом
можно отбирать пробу на одной русловой станции, но ниже его необходимо за-
кладывать 2-3 поперечные трансекты. Учитывая, что влияние промышленных и
бытовых стоков на фитопланктон может сказаться только через 2–3 суток, по
скорости течения реки рассчитывают место заложения поперечных трансект.
Так, при скорости реки у исследуемого пункта 0,5 м/сек первую трансекту це-
лесообразно заложить через 43, вторую – через 86, а третью – через 130 км (эти
расстояния водная масса пройдет за 1, 2 и 3 суток соответственно). При иссле-
довании влияния сточных вод в мало- или беспроточных водоемах трансекты
закладываются с учетом ветровых сгонов так как ветровые течения часто пре-
восходят склоновые. Поскольку в реках вертикальное распределение фито-
планктона относительно равномерное, отбор проб в них обычно производят с
горизонта 0,2–1 м батометром или простым зачерпыванием определенного объ-
ема воды (в случае бедных планктоном вод – 1 л, богатых – 0,5 л и менее).
На мелководных водоемах производят тотальный отбор проб от поверх-
ности до дна.
6.1.2. Методы сбора пресноводных водорослей
6.1.2.1. Отбор проб фитопланктона
Для количественного учета фитопланктона отбор проб производится спе-
циальными приборами – батометрами разнообразных конструкций (Рутнера,
Мейера-Фрацева, Кожевникова, Дьяченко и др.) (рис. 6.1). Батометр опускают в
воду и при достижении необходимой глубины сильным встряхиванием троса
(или же посредством специального «посыльного груза») закрывают крышки от-
верстий одного или двух цилиндров (в зависимости от конструкции батомет-
ров). Затем батометр в закрытом виде извлекают на поверхность. При изучении
фитопланктона поверхностных слоев водоема пробы отбирают, зачерпывая во-
ду в сосуд определенного объема.
Для работы на пресных водоемах чаще всего используются 1–2-литровые
батометры, а в морях – 2- и 5-литровые. В водоемах, бедных фитопланктоном,
отбирают пробы объемом не менее 1 л. В водоемах, богатых фитопланктоном –
0,5 л, а при «цветении» воды – даже 0,25 л. Отбор проб батометрами позволяет
отбирать водоросли всех размерных групп, как для качественного, так и для ко-
личественного учетов.
127
Рисунок 6.1. Приборы для сбора количественных проб фитопланктона: 1 – батометр
Рутнера; 2, 3 – сосуд Мейера (опускается в воду в закрытом виде – 2; при достижении опре-
деленной глубины открывается рывком за трос, прикрепленный к пробке, и после заполне-
ния его водой поднимается в открытом состоянии – 3).
Для обнаружения малочисленных видов фитопланктона (к примеру, для
флористико-систематических целей) проводят качественный лов планктона.
Для этих целей используют планктонную сеть. Такая сеть состоит из металли-
ческого кольца и пришитого к нему мешка конической формы из мельничного
шелкового или капронового сита № 77 (рис. 6.2). Внизу сеть заканчивается ста-
канчиком, в который собирается планктон при фильтрации воды через сеть.
Для количественного учета водорослей планктонная сеть непригодна. При сет-
ном сборе фитопланктона в планктонную сеть попадают только колонии и
крупные клетки водорослей, тогда как клетки небольших размеров «проскаки-
вают» через фильтрационную поверхность сита. Поэтому обловы фитопланк-
тона сетью должны сочетаться с пробами, собранными с помощью батометра.
Это позволяет более полно исследовать фитопланктон.
6.1.2.2. Отбор проб фитобентоса
Существующие методы отбора проб фитобентоса предусматривают сбор
водорослей, обитающих на поверхности донных грунтов и отложений, в их
толще (глубиной до 1 см) и придонном слое воды толщиной 2–3 см.
Для изучения видового состава фитобентоса достаточно извлечь на по-
верхность некоторое количество донного грунта и отложений на нем.
На мелководьях (глубиной до 0,5–1 м) это достигается с помощью опу-
щенной на дно пробирки или сифона – резинового шланга со стеклянными
трубками на концах, в который засасывают наилок.
На больших глубинах количественные пробы отбирают с помощью ве-
дерка или стакана, прикрепленного к шесту, а также различными дночерпате-
лями.
Для отбора количественных проб фитобентоса используют микробенто-
метр Владимировой (рис. 6.3). Основная его часть представляет собой латун-
ную трубку длиной 25–30 см с внутренним диаметром 4–5 см. На верхнем кон-
128
це этой трубки находится втулка с конусообразной воронкой, в которую на ры-
чаг герметически входит притертая крышка-клапан.
Рисунок 6.2. Планктонные сети. 1–3 – сеть Апштейна; 4 – сеть Берджи; 5 – стаканчик
к ней; 6 – цилиндрическая сеть «цепеллин».
Рисунок 6.3. Микробентометры Владимировой в открытом (I) и закрытом (II) виде и
Травянко и Евдокимовой в поперечном (III) и продольном (IV) сечении: 1 – железная трубка,
соединяющаяся с разборной штангой; 2 – шнур; 3 – кронштейн; 4 – крышка-клапан; 5 –
втулка с конусом; 6 – рычаг; 7 – зажим-пружина; 8 – клапанная коробка;
9 – клапан; 10 – основное тело микробентометра; 11 – лопасти стабилизатора;
12 – свинцовый груз; 13 – штуцер для слива придонного слоя воды; 14 – переходная муфта;
15 – трубчатый нож.
129
Трубку с отрытой крышкой на деревянной штанге опускают на дно и вре-
зают заточенным нижним концом в толщу грунта на несколько сантиметров.
Потянув за веревку, закрепленную на свободном конце рычага, закрывают
верхнюю втулку трубки крышкой, после чего прибор осторожно извлекают на
поверхность.
При выходе трубки из воды нижнее отверстие трубки закрывают ладо-
нью, чтобы не допустить выпадение грунта. Открыв крышку, осторожно сли-
вают верхние слои воды в стеклянную посуду до появления мути (в дальней-
шем эту часть воды выливают).
Оставшуюся в трубке воду, ил и грунт легко встряхивают и переносят в
приготовленную посуду, предварительно измерив ее объем.
Микробентометр Владимировой удобен при работе на глубинах до
2–2,5 м. Другая модель – микробентометр Травянко и Евдокимовой – позволяет
отбирать пробы с любых глубин (рис. 6.3). В данной конструкции верхний кла-
пан закрывается автоматически после удара прибора о грунт. Прибор извлека-
ют на поверхность; при выходе его из воды нижнее отверстие трубки закрыва-
ют ладонью. Остальная процедура отбора пробы идентична той, которая ис-
пользуется при работе с прибором Владимировой.
6.1.2.3. Отбор проб перифитона
Отбор проб перифитона с поверхности камней, гидротехнических соору-
жений, стеблей и листьев растений осуществляется с помощью обычного ножа
или специальных скребков или ложек. Однако при этом часть материала гибнет
или уносится токами воды; кроем того, нарушается картина распределения
компонентов биоценоза. Поэтому лучше всего собирать водоросли перифитона
вместе с субстратом, который полностью или частично извлекают из воды и
помещают в специально приготовленный для этого сосуд.
Субстрат заливают небольшим количеством фильтрованной воды (взятой
из того же водоема) для дальнейшего изучения собранного материала в живом
состоянии.
6.1.3. Концентрирование и фиксация проб фитопланктона
В водоеме концентрация отдельных видов водорослей различается на не-
сколько порядков величин. Кроме того, сама численность водорослей, за ис-
ключением отдельных видов во время «цветения», очень низка. Поэтому по-
давляющее число видов водорослей практически невозможно учесть без их
предварительного концентрирования. Рассмотрим несколько общепринятых
методов концентрирования.
Осадочный метод концентрации проб (пробы отстаиваются 10 суток, а за-
тем фильтрат очень медленно отсасывается сифоном через двойной слой газа
№ 76) в целом предпочтительнее метода ультрафильтрации, так как в большей
степени способствует сохранению тонких структур водорослей. Уплотнение
пробы проводится в два этапа: от 0,5 до 0,1 л, затем после вторичного отстаи-
вания (можно не более 5 суток) раствор отсасывается вновь. Бедные пробы