ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 12.01.2024
Просмотров: 55
Скачиваний: 1
ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
Перед взятием мазков не надо промывать носовые ходы.
Вводят тампон в носовой ход на глубину 2–2,5 см на уровне носовой раковины.
Прижимают тампон крылом носа к носовой перегородке и вращательными движениями тампона собирают материал со слизистой носа.
Аналогичным образом берут материал в другом носовом ходе.
Помещают тампон в пробирку и доставляют в лабораторию в течение 2 часов.
При наличии в полости носа очагов воспалений или изъязвлений отдельным тампоном собирают материал из очага (очагов).
Мокрота
Бактериологическое исследование проводят в первые четыре-пять дней от начала заболевания, желательно до начала антибиотикотерапии.
Свободно отделяемая (отхаркиваемая) мокрота:
– необходим утренний сбор;
– перед сбором пробы пациент, если это возможно, должен почистить зубы и сполоснуть рот и горло теплой кипяченой водой или слабым раствором антисептика; если пациент не в состоянии сделать это сам, то туалет его ротовой полости осуществляют медицинские работники;
– предупреждают больного, чтобы он не собирал в контейнер слюну или носоглоточное отделяемое;
– пробу мокроты, полученную в результате глубокого кашля, собирают в специальный стерильный одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой или в специальным образом подготовленную стерильную стеклянную банку и сразу доставляют в лабораторию в течение 2 часов.
Индуцированная мокрота (рекомендуется преимущественно при подозрении на Mycobacterium tuberculosis и Pneumocystis yiroveci):
– необходим утренний сбор;
– перед сбором пробы пациент, если это возможно, должен почистить зубы и сполоснуть рот и горло теплой кипяченой водой или слабым раствором антисептика, почистить зубы; если пациент не в состоянии сделать это сам, то туалет его ротовой полости осуществляет медицинский персонал;
– до проведения процедуры смачивают чистую зубную щетку теплой кипяченой водой и проводят ею по слизистой обеих щек, языку и деснам;
– активно споласкивают рот пациента теплой кипяченой водой;
– используя ингалятор, дают больному проглотить 20–30 мл 3–10%-го стерильного физиологического раствора;
– собирают индуцированную мокроту в специальный стерильный одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой или в стерильную стеклянную банку, подготовленную соответствующим образом, и сразу передают пробу в лабораторию в течение 2 часов.
Аспират из придаточных пазух
С соблюдением правил асептики пунктируют пазуху.
Аспирированную жидкость из шприца вносят в стерильную пробирку с тиогликолевой средой и немедленно доставляют в лабораторию. Можно оставить материал в шприце, из которого удален воздух, а на кончик иглы надеть штатный защитный колпачок.
Забор кала на посев
Судно тщательно вымыть, удалить следы дезинфектантов.
На дно судна поместить лист чистой плотной бумаги.
Больной испражняется, следя за тем, чтобы моча не попала в пробу.
Пробу испражнений отбирают сразу после дефекации с помощью ложки-шпателя, вмонтированного в крышку стерильного контейнера (в отсутствие контейнера со шпателем для отбора материала используют стерильную петлю, стерильный деревянный шпатель и т. п.).
Количество материала:
– в случае оформленного стула – в объеме грецкого ореха;
– в случае жидкого стула его слой в посуде должен быть не менее 1,5–2 см;
– в транспортной системе со средой объем материала не должен превышать одной трети объема среды.
При наличии патологических примесей необходимо выбрать участки, содержащие слизь, гной, хлопья, но свободные от крови.
Образцы жидких испражнений отобрать с помощью стерильной пластиковой пастеровской пипетки с замкнутым резервуаром или – при ее отсутствии – с помощью стеклянной трубки с резиновой грушей.
Пробы для диагностики ОКИ, вызываемых условно-патогеными бактериями, и
дисбактериоза забираются и транспортируются только в стерильных сухих контейнерах. Время доставки проб в лабораторию не должно превышать 2 часов или 4 часов – при условии хранения в холодильнике. Пролонгирование времени транспортировки может привести к увеличению численности условнопатогенных бактерий и гипердиагностике дисбактериозов и ОКИ.
Ректальные мазки
Больному предлагают лечь на бок с притянутыми к животу бедрами и ладонями развести ягодицы.
Стерильный зонд-тампон ввести в задний проход на глубину 4–5 см и, аккуратно вращая его вокруг оси, собрать материал с крипт ануса.
Осторожно извлечь зонд-тампон и погрузить его в стерильную пробирку.
Доставить в лабораторию в течение 2 часов.
Важно: если в направлении на исследование цель исследования не указана или указана не конкретно, например «на флору», «на патогенную флору», «на тифопаратифозную группу» и т. п., в лаборатории будет выполнен стандарт исследования на патогенные энтеробактерии: шигеллы, сальмонеллы, энетропатогенные, энтеротоксигенные и энтероинвазивные эсшерихии.
Забор крови на стерильность
Пробы крови получают венопункцией периферических вен (чаще вены локтевого сгиба), артерий. При необходимости забора крови в несколько пробирок пробы на бак посев берутся в первую очередь. Кровь берут натощак, так как хилезная кровь может маскировать рост в жидкой среде. Пробы крови необходимо брать до начала антибиотикотерапии или не ранее чем через 12 часов после ее окончания. У больных, получающих антибактериальные препараты, пробы необходимо собирать непосредственно перед введением (приемом) следующей дозы препарата.
Сбор пробы из постоянного внутривенного или внутриартериального катетеров допускается только в случаях подозрения на наличие катетер-ассоциированной инфекции или отсутствия возможности ее получения венопункцией. Кровь на посев берут у постели больного или в перевязочной стерильным шприцем или системой для взятия крови одноразового пользования.
Получение пробы:
– участок кожи над выбранным для пункции сосудом продезинфицировать: обработать кожу тампоном, смоченным 70%-м этиловым спиртом, затем другим тампоном, смоченным 1–2%-м раствором йода или другим дезинфектантом, разрешенным к применению для этих целей в установленном порядке, круговыми движениями, начиная от центра, в течение 30 секунд;
– подождать, пока высохнет обработанный участок. Не допускается пальпировать сосуд после обработки кожи перед введением иглы;
– стерильным шприцем собрать необходимый объем крови;
– обработать пробки флаконов 70%-м этиловым спиртом; кровь, проколов при этом пробку флакона, внести в емкости;
– флаконы и заполненные направления доставляются в баклабораторию немедленно.
Если есть подозрение на катетер-ассоциированный сепсис, необходимо: тщательно обработать кожу в области входа катетера спиртовым раствором хлоргексидина и дать раствору полностью высохнуть перед удалением катетера (для уменьшения риска контаминации кончика катетера), произвести удаление катетера с соблюдением техники асептики; послать на посев наконечник катетера (оптимальная длина 5 см). Кончик необходимо отрезать с соблюдением техники асептики, сразу же поместить его в стерильный контейнер. Транспортировать в лабораторию его необходимо как можно скорее, чтобы предупредить чрезмерное высыхание (в идеале – не позднее чем через 4 часа).
Кратность забора крови
| Клиническое состояние | Количество проб | Примечание |
| Острый сепсис | 2 | Из двух сосудов или с двух участков кровеносного сосуда перед началом антибактериальной терапии |
| Лихорадка неясного генеза | 4 | Сначала две пробы из разных кровеносных сосудов, затем через 24–36 часов еще две пробы |
| Инфекции с лихорадочным синдромом | 6 | Первые сутки: из двух сосудов перед началом а/б-терапии в первые 1–2 часа подъема температуры три пробы с интервалом в 15 минут. Вторые сутки: повторить |
Забор ликвора на посев
Ликвор необходимо исследовать до начала антибактериальной терапии. Взятие материала производит врач.
Место пункции обрабатывают антисептиком и 70%-м этиловым спиртом. Иглу с мандреном вводят между поясничными позвонками L3–L4, L4–L5 или пояснично-крестцовыми L5–S1. Достигнув субарахноидального пространства, удаляют мандрен, и ликвор появляется на конце иглы.
Медленно набирают ликвор в стерильные пробирки с плотно закрывающимися крышками (одноразовые с пробкой или стеклянные со стерильной резиновой пробкой). Обычно используют три пробирки – для микробиологического, клинического и биохимического анализов. Для микробиологического анализа присылают вторую пробирку или пробирку с самым мутным содержимым в объеме 1–2 мл.
Ликвор немедленно доставляют в лабораторию, где тотчас, пока он теплый, его подвергают анализу. При отсутствии такой возможности материал сохраняют при 37 °С в течение нескольких часов, а для его пересылки используют изотермальные ящики, грелки, термос или любую другую упаковку, где поддерживается температура около 37 °С. Охлаждение ликвора ниже 30 °С ведет к утрате жизнедеятельности менингококков! При необходимости проведения вирусологических исследований пробы ликвора помещают в холодильник при температуре 2–8 °С или замораживают.
Забор мочи на посев
Забор мочи проводят до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения.
Собирается средняя порция утренней свободно выпущенной мочи. Суточную мочу бактериологическому исследованию не подвергают.
Для сбора и доставки проб в лабораторию используют стерильные одноразовые контейнеры с завинчивающейся крышкой. Не допускается собирать мочу с постельного белья, из мочеприемника или судна.
Перед забором мочи необходимо вымыть руки с мылом и провести тщательный туалет наружных половых органов и области заднего прохода с мылом и кипяченой водой (для проведения обработки не допускается использовать дезинфектанты).
У мужчин:
– взять половой член, как при мочеиспускании, отодвинув крайнюю плоть, освободить головку и вымыть ее водой с мылом;
– осушить головку полового члена, используя одноразовые салфетки.
У женщин:
– во время кровянистых выделений влагалище необходимо закрыть тампоном;
– раздвинуть половые губы пальцами и держать их раздвинутыми до окончания процедуры;
– подмыть половые губы с мылом, проводя рукой в направлении спереди назад;
– осушить половые губы и наружное отверстие мочеиспускательного канала, меняя одноразовые салфетки.
После туалета промежности открыть, не касаясь внутренней поверхности, емкость для сбора мочи, крышку положить внутренней поверхностью вверх на салфетку. Выделить первую струю мочи в унитаз на счет «один-два» и задержать мочеиспускание. Не касаясь половыми органами емкости, выделить мочу в количестве 10–20 мл, задержать мочеиспускание. Закрыть емкость крышкой, не касаясь внутренней поверхности. Завершить мочеиспускание в унитаз.
Мочу необходимо доставить в лабораторию вместе с заполненным направлением не позднее 2 часов после сбора, возможно хранение в течение 8 часов в холодильнике. Крышку емкости не открывать. Если время не выдержано, то анализ лучше повторить.
Катетеризацию мочевого пузыря следует проводить только в случаях необходимости и с тщательным соблюдением правил асептики, так как эта процедура связана с риском инфицирования мочевых путей:
– если мочевой пузырь заполнен, перед катетеризацией пациент должен частично его опорожнить;
– проводят туалет наружных половых органов теплой водой с мылом и высушивают их стерильными марлевыми салфетками, затем вводят катетер в мочевой пузырь;
– собирают из катетера первые 15–30 мл мочи в специальную посуду для утилизации, после чего заполняют на одну треть или половину стерильную емкость, в которой мочу доставляют в лабораторию.
Для разграничения воспалительного процесса в почках и мочевом пузыре мочевой пузырь опорожняют и промывают раствором антисептика (50 мл раствора, содержащего 40 мг неомицина и 20 мг полимиксина). Через 10 минут берут пробы мочи для исследования. При локализации процесса в мочевом пузыре моча остается стерильной, при инфекции в почках отмечается бактериурия.