Файл: tsyrkunov_v_m_i_dr_infektsionnye_bolezni_i_epidemiologiya.pdf
ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 03.11.2019
Просмотров: 13444
Скачиваний: 2
~ 506 ~
возбудителей
больше
,
чем
в
других
местах
.
Перед
взятием
слизи
из
носа
необходимо
предварительно
очистить
нос
(
предложить
больному
высморкаться
)
сухим
ватным
фитилем
и
удалить
корки
.
Тампон
вводят
в
каждую
ноздрю
,
плотно
прикасаясь
всеми
сторонами
его
к
стенкам
и
перегородке
носа
.
Полу
-
ченный
материал
с
тампона
немедленно
высевается
на
соответствующие
плотные
питательные
среды
,
а
также
наносится
на
предметное
стекло
,
обводится
стеклографом
,
подсушивается
и
направляется
в
лабораторию
для
микроскопического
исследования
.
Забор
материала
для
риноцитологического
исследования
производится
следующим
способом
.
Небольшой
ватный
тампон
на
деревянной
палочке
,
увлажненный
физиологическим
раствором
,
вводят
в
носовой
ход
на
глубину
2–3
см
,
слегка
прижимая
всеми
сторонами
к
слизистой
оболочке
нижней
носовой
раковины
.
Затем
с
тампона
делаются
отпечатки
на
чистом
,
обезжиренном
эфиром
предметном
стекле
.
Границы
отпечатков
обводятся
стеклографом
.
Отпечатки
подсушиваются
и
направляются
в
лабораторию
,
где
после
специальной
окраски
при
микроскопии
в
них
определяются
клеточный
состав
и
характер
внутриклеточных
включений
.
Мазки
-
отпечатки
слизистой
носа
можно
приготовить
также
на
специальных
пластинках
из
стекла
или
плексигласа
.
Пластинки
должны
иметь
длину
70–80
мм
,
ширину
5–6
мм
,
толщину
2–2,5
мм
,
закругленные
и
хорошо
отшлифованные
края
.
После
обработки
пластинки
эфиром
ее
вводят
в
носовой
ход
на
глубину
2–3
см
,
слегка
прижимая
к
носовой
перегородке
.
Выводят
пластинку
наружу
также
по
носовой
перегородке
,
стараясь
не
смазать
отпечаток
.
Границы
отпечатка
отмечают
стеклографом
,
подсушивают
и
направляют
в
лабораторию
для
дальнейшего
исследования
.
Для
иммунофлюоресцентной
диагностики
(
метод
ускоренной
диагностики
гриппа
и
других
ОРВИ
в
первые
дни
болезни
)
исследуемый
материал
обрабатывают
сыворотками
,
содержащими
специфические
антитела
,
меченые
флюорохромами
.
Соединение
меченых
антител
с
гомологичными
антигенами
сопровождается
характерным
свечением
комплексов
,
выявляемых
в
люминесцентном
микроскопе
.
Смывы
из
носоглотки
используются
главным
образом
для
выделения
вирусов
при
гриппе
,
кори
,
краснухе
,
ветряной
оспе
и
других
вирусных
инфекциях
.
Они
производятся
в
первые
дни
болезни
,
когда
возбудитель
интенсивно
размножается
в
эпителиальных
клетках
дыхательных
путей
.
Больному
предлагают
прополоскать
горло
стерильным
физиологическим
раствором
.
~ 507 ~
Процедуру
повторяют
трижды
,
используя
при
этом
каждый
раз
по
10–15
мл
жидкости
.
Смывы
собирают
в
широкогорлую
стерильную
банку
.
Кусочками
стерильной
ваты
,
захваченной
пинцетом
,
протирают
заднюю
стенку
глотки
и
носовые
ходы
.
Ватные
тампоны
опускают
в
банку
со
смывом
.
Материал
направляют
в
лабораторию
для
последующего
изучения
(
вирусологический
,
иммунофлюоресцентный
и
другие
методы
исследования
).
25.
Забор
материала
при
кишечных
инфекциях
Бактериологические
методы
основаны
на
выделении
микробов
-
возбудителей
в
чистой
культуре
путем
посевов
материала
,
взятого
от
больного
,
на
искусственные
питательные
среды
.
Забор
материала
для
бактериологических
исследований
должен
осуществляться
до
начала
лечения
этиотропными
средствами
,
посев
необходимо
производить
немедленно
после
забора
материала
непосредственно
у
постели
больного
.
Если
собранный
материал
нельзя
направить
в
лабораторию
,
в
него
добавляют
консервирующую
смесь
.
При
отсутствии
последней
материал
нужно
хранить
в
холодильнике
при
температуре
+4°
С
или
на
льду
.
Посев
крови
лучше
всего
делать
в
начальном
периоде
болезни
или
в
разгаре
,
сразу
после
озноба
(
наиболее
выраженная
бактериемия
).
Посев
крови
производится
на
жидкие
питательные
среды
–
сахарный
,
сывороточный
,
желчный
бульон
и
др
.
Состав
среды
выбирается
в
зависимости
от
биологических
особенностей
возбудителя
предполагаемой
у
больного
инфекции
.
Чтобы
избежать
влияния
бактерицидных
свойств
крови
,
ее
необходимо
разводить
большим
количеством
среды
,
примерно
в
отношении
1:10.
Обычно
берут
10–20
мл
крови
и
засевают
в
колбу
,
содержащую
90–180
мл
среды
.
Переливать
кровь
из
шприца
в
колбу
надо
над
пламенем
спиртовки
,
предварительно
сняв
иглу
.
Колбу
с
посевом
направляют
в
лабораторию
,
а
вечером
и
ночью
помещают
в
термостат
.
При
отсут
-
ствии
питательной
среды
кровь
собирают
в
стерильную
пробирку
с
соблюдением
таких
же
правил
.
Посевы
испражнений
производятся
при
кишечных
инфекциях
(
брюшной
тиф
,
паратифы
А
и
В
,
дизентерия
,
сальмонеллезы
,
эшерихиозы
и
др
.),
а
также
когда
возникает
подозрение
на
кишечные
инфекции
или
имеются
признаки
поражения
желудочно
-
кишечного
тракта
.
Забор
испражнений
(2–3
г
)
производится
стерильным
деревянным
шпателем
или
стеклянной
палочкой
из
судна
,
горшка
,
специального
лотка
,
а
также
непосредственно
из
прямой
кишки
с
~ 508 ~
помощью
ватных
тампонов
,
металлических
петель
или
через
трубку
ректоскопа
.
В
судне
или
горшке
не
должно
оставаться
следов
дезинфицирующего
средства
,
для
чего
их
необходимо
тщательно
промыть
горячей
водой
.
Нужно
стремиться
взять
слизь
,
гной
,
фибринные
пленки
,
избегая
примеси
крови
в
связи
с
ее
бактерицидным
действием
.
Забор
материала
из
прямой
кишки
не
зависит
от
числа
дефекаций
и
может
быть
сделан
в
любой
момент
.
Для
забора
материала
петлей
(
тампоном
)
больного
просят
лечь
на
бок
с
приведенными
к
животу
бедрами
и
ладонями
развести
ягодицы
.
Петля
осторожным
движением
вводится
в
задний
проход
на
глубину
5–6
см
и
также
осторожно
вынимается
.
Затем
петля
помещается
в
стерильную
пробирку
и
направляется
в
лабораторию
.
Лучше
всего
сразу
же
сделать
посев
материала
на
питательную
среду
.
Желчь
(10–20
мл
)
забирается
во
время
дуоденального
зондирования
.
В
отдельные
стерильные
пробирки
собирают
все
три
порции
желчи
(
А
,
В
и
С
).
Конец
зонда
предварительно
обрабатывают
спиртом
,
затем
после
выделения
1–2
мл
желчи
(
не
используется
для
исследования
)
наполняют
пробирки
непосредственно
через
зонд
или
с
помощью
стерильного
шприца
.
При
наличии
кислой
реакции
(
примеси
желудочного
сока
),
хлопьев
,
белесоватого
оттенка
жидкости
материал
считается
непригодным
.
Промывные
воды
желудка
(20–50
мл
)
собираются
в
стерильные
банки
после
промывания
желудка
кипяченой
водой
без
добавления
натрия
гидрокарбоната
,
калия
перманганата
и
др
.
26.
Забора
материала
для
паразитоскопической
диагностики
Паразитоскопические
исследования
проводятся
чаще
для
диагностики
малярии
,
амебиаза
,
лямблиоза
,
балантидиаза
,
гельминтозов
и
другой
паразитарной
патологии
.
В
качестве
материала
используются
различные
биологические
среды
,
полученные
от
больных
,
в
частности
,
кровь
,
испаражнения
,
желчь
и
др
.
Амебиаз
.
Балантидиаз
.
Для
обнаружения
патогенных
форм
гистолитической
амебы
,
балантидий
исследуют
только
свежевыделенные
испаражнения
больного
(
не
позднее
10–15
мин
.
после
дефекации
).
При
невозможности
немедленного
исследования
фекалии
помещают
в
консервирующую
жидкость
в
расчете
1
г
фекалий
на
3
мл
консерванта
следующего
состава
: 0,2%
раствор
азотнокислого
натрия
– 80
мл
;
формалин
– 10
мл
;
раствора
Люголя
–
2
мл
и
глицерин
– 2
мл
(
консервант
Павловой
)
или
консервант
Барбагалло
(
смесь
3
частей
формалина
и
9
частей
физиологического
раствора
хлорида
натрия
).
~ 509 ~
Малярия
.
Основным
методом
лабораторной
диагностики
малярия
является
обнаружение
эритроцитарных
форм
плазмодиев
в
толстой
капле
или
мазке
крови
.
Исследуют
преимущественно
толстые
капли
,
так
как
за
один
и
тот
же
промежуток
времени
в
толстой
капле
можно
просмотреть
в
30–50
раз
большее
количество
крови
,
чем
в
мазке
,
а
следовательно
,
и
количество
плазмодиев
в
ней
больше
.
Паразитоскопия
мазка
крови
проводится
с
целью
определения
видовой
принадлежности
найденных
паразитов
,
что
по
толстой
капле
установить
не
удается
.
Кровь
забирают
при
первом
подозрении
на
эту
инфекцию
вне
зависимости
от
температуры
(
лучше
всего
во
время
лихорадки
или
сразу
после
озноба
),
так
как
паразиты
циркулируют
в
крови
и
в
интервале
между
приступами
.
Кровь
для
исследования
берется
в
любой
период
заболевания
,
но
лучше
во
время
лихорадки
,
сразу
после
озноба
,
когда
в
крови
находится
наибольшее
количество
возбудителей
.
Забор
крови
производится
из
IV
пальца
левой
руки
или
мочки
уха
,
которые
об
-
тираются
ватой
,
смоченной
спиртом
.
Прокол
кожи
делается
быстрым
колющим
движением
иглой
-
копьем
одноразового
пользования
или
толстой
инъекционной
иглой
.
Перед
взятием
крови
и
после
него
игла
стерилизуется
кипячением
не
менее
45
мин
.
Если
кровь
из
прокола
выступает
плохо
,
то
просят
больного
сделать
несколько
энергичных
движений
рукой
,
кистью
и
слегка
массируют
палец
(
мочку
уха
)
в
направлении
к
месту
укола
.
Когда
и
после
этого
кровь
не
идет
,
де
-
лают
новый
укол
на
другом
пальце
или
меняют
руку
.
Первую
выступившую
каплю
крови
стирают
сухой
ватой
,
затем
палец
поворачивают
проколом
вниз
и
ко
второй
капле
прикасаются
хорошо
обезжиренным
предметным
стеклом
в
2–3
местах
.
Образующиеся
при
этом
на
стекле
капли
-
отпечатки
размазывают
углом
другого
стекла
,
делая
круговые
движения
и
доводя
диаметр
капель
до
10–15
мм
.
Полученные
таким
образом
толстые
капли
высушиваются
при
комнатной
температуре
не
менее
2–3
ч
.
Если
проявляется
поспешность
и
недостаточно
подсохнувшие
капли
подвергаются
окраске
,
то
они
часто
отстают
от
стекла
.
Капли
получают
трещины
и
отваливаются
от
стекла
при
высушивании
на
солнце
и
вблизи
от
нагревательных
приборов
.
При
направлении
в
лабораторию
следует
на
обратной
стороне
стекла
написать
фамилию
больного
или
поста
-
вить
соответствующий
регистрирующий
номер
.
Изготовление
тонкого
мазка
производится
обычным
способом
.
Для
этого
палец
повертывают
проколом
вверх
.
К
выступившей
крови
прикасаются
нижней
поверхностью
предметного
стекла
так
,
чтобы
капля
величиной
немного
больше
булавочной
головки
оказалась
на
~ 510 ~
расстоянии
1,5–2
см
от
его
узкого
края
.
Затем
стекло
перевертывают
каплей
вверх
и
берут
в
левую
руку
.
Правой
рукой
устанавливают
шлифованное
стекло
под
углом
45°
к
первому
с
наклоном
в
сторону
капли
,
осторожно
подвигают
к
краю
капли
и
ждут
,
пока
кровь
растечется
вдоль
края
шлифованного
стекла
в
углу
,
образованном
обоими
стеклами
.
После
этого
быстрым
равномерным
движением
проводят
шлифованным
стеклом
вдоль
предметного
стекла
в
обратном
направлении
и
получают
тонкий
мазок
крови
.
Его
высушивают
и
направляют
в
лабораторию
.
Фамилию
больного
или
порядковый
номер
можно
написать
тупой
иглой
или
простым
карандашом
непосредственно
на
мазке
,
лучше
на
его
первой
половине
.
Лямблиоз
.
Лямблий
легко
обнаруживают
при
исследовании
дуоденального
содержимого
и
фекалий
.
В
дуоденальном
содержимом
находят
подвижные
или
при
стоянии
желчи
в
течение
2–3
часов
неподвижные
трофозоиты
лиямблий
,
чаще
в
порции
"
А
".
В
нативных
мазках
из
фекалий
обнаруживают
цисты
лямблий
и
лишь
при
диарее
находят
вегетативные
формы
.
Для
забора
желчи
у
больного
проводится
дуоденальное
зондирование
.
Исследование
желчи
и
дуоденального
содержимого
производится
при
подозрении
на
гельминтозы
печени
и
желчного
пузыря
(
описторхоз
,
фасциолез
и
др
.)
и
12-
перстной
кишки
,
а
также
для
диагностики
активного
лямблиоза
.
Для
выявления
вегетативных
форм
лямблий
желчь
необходимо
микроскопировать
незамедлительно
после
зондирования
.
При
лабораторном
поиске
диагностических
стадий
гельминтов
из
исследуемой
жидкости
выбирают
плавающие
в
ней
хлопья
и
добавляют
эфир
в
соотношении
1:1.
Центрифугируют
в
течение
5
мин
.
при
1000
об
/
мин
,
надосадочную
жидкость
сливают
,
осадок
микроскопируют
.
При
микроскопии
нативных
мазков
обращают
внимание
на
увеличение
числа
эпителиальных
клеток
желчных
протоков
,
лейкоцитов
,
могут
обнаруживаться
эозинофилы
(
сви
-
детельство
острого
или
хронического
холангита
или
холецистита
паразитарной
этиологии
)
трофозоиды
простейших
,
яйца
и
личинки
гельминтов
.
Для
выявления
ооцист
изоспоры
и
криптоспоридия
окрашивают
мазки
по
модифицированному
методу
Циля
–
Нильсена
.
Для
паразитологического
исследования
дуоденального
содержимого
используется
«
Энтеро
-
Тест
».
Данная
система
включает
в
себя
специальный
шнурок
,
один
конец
которого
прикрепляется
к
коже
исследуемого
в
области
губы
,
а
другой
–
с
грузом
,
помещенным
в
желатиновую
оболочку
,
пациент
проглатывает
.
Через
4
часа
шнурок