Файл: Сестринское дело в хирургии.pdf

ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 18.11.2021

Просмотров: 4243

Скачиваний: 21

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
background image

лизации.  Инструменты  после  гнойных  операций  и  перевязок, 
операций у  больных,  перенесших  в  течение  5  последних  лет  ге­
патит,  а  также  при  риске  СПИДа  обрабатываются  отдельно  от 
других.  Все  процедуры  дезинфекции  и  обработки  проводятся 
медперсоналом  обязательно  в  перчатках  из  латекса достаточной 
толщины, халатах, масках, водонепроницаемых фартуках, защит­
ных  очках,  с острыми  предметами  обращаются  осторожно.

После  использования  инструменты  промываются  в  емкости 

с  дезинфицирующим  раствором  и  погружаются  в  другую  ем­
кость  с  дезинфицирующим  раствором  так,  чтобы  раствор  пол­
ностью  покрывал  инструменты.  Экспозиция  вы держ ивается 
в  зависимости  от  применяемого  дезинфицирующего  раствора.

После  обеззараживания  инструменты  промываются  проточ­

ной  водой.  Очистка  проводится  путем  погружения  инструмен­
тов  в  специальный  моющий  раствор,  в  состав  которого  входит 
моющее средство,  перекись водорода и вода.  Экспозиция выдер­
живается  15—20  минут  при  температуре  40—45°С.  После  этого 
инструменты  моются  щеткой  в  этом  же  растворе,  а  затем  про­
мываются в проточной и дистиллированной воде.  Высушивание 
проводится в естественных условиях на простыне или в сухож а­

ровом  шкафу  при  температуре  80  °С  30  минут.

Стерилизация хирургических инструментов

М еталлические  хирургические  нережущ ие  инструменты 

стерилизуются  в  сухожаровом  ш кафу  или  в  автоклаве.  Есть 
инструменты  одноразового  использования,  которые  стерилизу­
ются  лучевым  способом.  Основным  методом  стерилизации  ре­
ж ущ их  инструментов  является  холодный  химический  способ  с 
применением растворов  антисептиков,  но  можно стерилизовать 
в  сухожаровом  шкафу.  Самым  лучшим  методом  стерилизации 
для  них  является  газовая  или лучевая  стерилизация.  Стерили­
зация резиновых медицинских принадлежностей (катетеры, зон­
ды,  дренажи,  наконечники,  перчатки)  проводится  путем  авто- 
клавирования  при  1  атм.  в  течение  30  минут.

В  последнее  время  все  чащ е  используются  одноразовые  ме­

дицинские  резиновые  и  пластмассовые  принадлеж ности,  под­
вергшиеся  лучевой  заводской  стерилизации.  Д ля  стерилиза­
ции  оптических  инструментов  (лапароскоп,  гастроскоп  и  пр.) 
применяю тся  газовый  способ  и  холодная  химическая  стерили­
зация.


background image

1.3. Обработка рук

Обработка  рук  —  наиболее  эффективный  метод  предупреж­

дения  распространения  микроорганизмов  между  персоналом  и 
больными  лечебно-профилактического  учреждения.

Умеренно  загрязненные  руки  моются  простым  мылом  и  во­

дой,  удаляя  с  кож и  большинство  микроорганизмов.  Мытье рук 
проводится  перед  приемом  пищи,  кормлением  больных,  рабо­
той  с  продуктами  питания;  после  посещения  туалета;  перед  и 
после ухода за пациентом;  после любого загрязнения рук;  перед 
хирургической  обработкой  рук.

Дезинфекция рук с использованием антисептических средств 

способствует  более  эффективному  удалению  микроорганизмов. 
Дезинфекция  рук  проводится  перед  выполнением  инвазивных 
процедур;  перед уходом  за  пациентом  с  ослабленным иммуните­
том;  перед и после ухода за раной и катетерами; до и после наде­
вания  перчаток  для  проведения  манипуляций;  после  контакта с 
биологическими  жидкостями  организма  или  после  возможного 
микробного  обсеменения.  Хирургическая  обработка  рук  произ­
водится  перед  любыми  хирургическими  вмешательствами,  она 
уничтожает  транзиторную  флору  микроорганизмов  и  предуп­
реждает  риск  загрязнения  хирургической  раны  при  поврежде­
нии  перчаток  (рис.  1).

Классические методы обработки рук Спасокукоцкого—Кочер- 

гина, Альфельда имеют лиш ь исторический интерес и в настоя­
щее  время  не используются.

К  современным  методам  относятся:  обработка рук  первому - 

ром,  хлоргексидином, дегмином, дегмицидом,  церигелем, АХД, 

АХД-специаль,  евросептом.

Обработка рук первомуром

Первомур  представляет  собой  смесь  муравьиной  кислоты, 

перекиси  водорода  и  воды.  Эта  смесь  является  мощным  анти­
септиком,  вызывающим  образование  тончайшей  пленки  на по­
верхности  кожи  и  закрывающ им  поры.  Используется  2,4%  р а­
створ,  обработка  проводится  в  емкостях  в  течение  1  минуты, 

после  чего  руки  высушиваются  стерильным  полотенцем.

Обработка рук хлоргексидином

Используется  0,5%  спиртовой  раствор хлоргексидина,  обра­

ботка рук проводится дважды тампоном,  смоченным антисепти­
ком,  в  течение  3  минут.


background image

Рис.  1. 

Последовательность 

обработки  рук  хирурга 

и  оп ер ац и он н ой   медсестры

Обработка дегмином  и дегмицидом

Эти антисептики относятся к группе поверхностно-активных 

веществ. Обработка проводится в емкостях в течение 5—7 минут, 
после чего руки  высушиваются  стерильным  полотенцем.

Обработка церигелем

Ц еригель  —  пленкообразую щ ий  ан ти сеп ти к.  Обработка 

проводят  в  течение  3  минут,  тщательно  нанося  его  на  поверх­
ность рук.

Обработка  АХД,  АХД-специаль,  евросептом

Это  комбинированные  антисептики,  в  состав  которых  входит 

этанол,  эфир полиольной жирной кислоты,  хлоргексидин.

Обработка проводится дважды путем втирания раствора в кожу 

рук  в  течение  2—3  минут.  Метод  считается  в  настоящее  время 
самым прогрессивным и распространенным.

Все операции  и манипуляции,  связанные  с контактом  крови 

больного, следует выполнять только в перчатках.  При необходи­
мости выполнения небольших манипуляций или в критических 

ситуациях операции без специальной обработки рук с обязатель­
ным надеванием стерильных перчаток.

1.4. Обработка операционного поля

Обработка операционного поля проводится в 2 этапа.  I этап — 

это  гигиеническое  обмывание  мы льным  раствором  и  водой,


background image

сбривание  волос.  II  этап  —  непосредственно  перед  операцией. 
В  настоящее  время  для  обработки  применяются  йодонат,  йодо- 
перин,  хлоргексидин  биглюконат,  70°  спирт,  первомур,  АХД, 
бриллиантовый зеленый.

Проводится широкая обработка от центра к  периферии 2 раза 

перед  ограничением  операционного  поля  стерильным  бельем, 

непосредственно перед разрезом, перед наложением швов на рану 

и  после  наложения  швов.

1.5.  Методы  контроля стерильности

Стерильность  медицинских  принадлежностей  подвергается 

обязательному  контролю.  Также  проводится  контроль  предсте- 
рилизационной  обработки инструментов.

Бактериологический метод  контроля стерильности является 

наиболее точным. В бактериологической лаборатории после взя­
тия  мазков  со  стерильных  предметов  производят  посев  на  раз­
личные питательные среды,  и через  3—5 дней определяется бак­
териологическая  загрязненность.  Бактериологическое  исследо­
вание  стерильности  обязательно  проводится  1  раз  в  7—10  дней.

При  термических  способах  стерильности  проводится  непря­

мой  метод  контроля,  который  позволяет  определить  величину 
температуры  необходимой для  стерилизации.

При  автоклавировании  в  стерилизационную  коробку  укл а­

дывают  ампулу  с  порошкообразным  веществом,  имеющим  тем­

пературу плавления в пределах 110—120 °С.  Если после стерили­
зации  вещество  расплавилось,  то  медицинские  принадлежно­
сти  в  биксе  считаются  стерильными.  Д ля  этого  метода  исполь­
зуется бензойная кислота (t плавления 120°С), резорцин (t плав­
ления  119°С),  антипирин (t плавления  110°С), термоиндикатор.

При  стерилизации  в  сухожаровом  шкафу  используются  ве­

щества с более высокими точками плавления:  аскорбиновая кис­

лота (t плавления  190 °С),  янтарная кислота (t плавления  190°С), 
тиомочевина (t плавления  180°С), термоиндикатор.

Контроль предстерилизационной обработки проводится после 

обработки  и  обсушивания  инструментов.  Проводится  на  нали­

чие гемоглобина (крови), окислителей, хлорсодержащих средств, 

моющего  средства,  ржавчины.  Д ля  определения  крови  приме­
няются  амидопириновая  и  азопирамовая  пробы.  Для  определе­
ния  моющего  средства  применяются  фенолфталеиновая  и  азо­
пирамовая пробы.


background image

Д ля  определения  окислителей,  хлорсодержащих  средств  и 

ржавчины  применяется  азопирамовая  проба.

При  положительной  пробе  раствор,  нанесенный  на  инстру­

мент,  изменяет  окраску.  В  лечебно-профилактических  учреж ­

дениях ежедневному контролю подвергают  1—4%  предметов ме­

дицинского назначения  и  с  каждой обработанной партии,  но  не 
менее  3—5  единиц.  При положительной пробе всю партию изде­
лий  повторно  обрабатывают.

1.6. Профилактика имплантационной  инфекции

Профилактика имплантационной  инфекции  —  обеспечение 

строжайшей  стерильности всех искусственных чужеродных м а­
териалов  и  приспособлений  с  определенной  лечебной  целью, 
внедряемых в организм больного. В организм больного могут вво­
диться  шовный  материал,  катетеры  и дренажи,  протезы  клап а­
нов  сердца,  сосудов,  суставов,  различные металлические конст­
рукции (скобки,  скребки,  винты,  спицы,  пластинки для остеос- 
литеза),  спирали,  степты,  гомофасция,  трансплантированные 
материалы.

Все имплантанты должны быть стерильны.  Способ стерили­

зации  может  быть  различным  и  зависит  от  материала,  конст­
рукции.  Основным,  наиболее  надежным  методом  в  практике 
является  заводская  лучевая  стерилизация.

Классический  способ  стерилизации  ш елка  (метод  Кохера)  и 

кетгута (метод Губарева) в настоящее время не применяются из- 
за сложности  и  достаточной  эффективности.  В  условиях  стаци­

онара  сейчас  стерилизуются  только  капрон,  лавсан  и  металли­

ческие скобки.  Стерилизуют их автоклавированием. Весь осталь­

ной шовный материал стерилизуется лучевым заводским спосо­
бом,  выпускается  в  ампулах  и  упаковках.  После  стерилизации 
или  вскры тия  упаковок  шовный  материал  хранится  только  в 
96° этиловом  спирте.

Различные  протезы  и  конструкции  выпускаются  в  гермети­

ческих  стерильных  упаковках.

При операции трансплантации источником инплантационной 

инфекции могут стать аллогенные органы. С терилизация  транс­
плантантов  невозможна,  поэтому при заборе органов  соблюда­
ется  стерильность.  После  извлечения  из  организм а  донора  и 
пром ы вания  стерильны м и  растворами  орган  пом ещ ается  в