ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 23.04.2019
Просмотров: 3509
Скачиваний: 2
3.2. Для ПСО используют физические и химические средства, разре-
шенные к использованию в Республике Беларусь согласно инструкциям по
применению, согласованным Минздравом
Растворы, содержащие перекись водорода и моющие средства («Ло-
тос», «Лотос-автомат», «Астра», «Виксан-мед», «Прогресс»), готовят в ус-
ловиях лечебного учреждения, применяя перекись водорода — медицин-
скую или техническую (марки А и Б). Для снижения коррозионного дей-
ствия моющих растворов с перекисью водорода и моющим средством
«Лотос» и «Лотос-автомат» целесообразно периодически использовать
ингибитор коррозии — 0,14 % раствор олеата натрия. Инструменты с ви-
димыми пятнами коррозии, а также с наличием оксидной пленки можно
подвергать химической очистке не более 2 раз в квартал.
3.3. ПСО проводят ручным или механизированным (с помощью спе-
циального моечного оборудования) способом.
ПСО ручным способом осуществляют, используя емкости из пласт-
масс, стекла или покрытых эмалью (без повреждений).
Методика проведения ПСО механизированным способом должна со-
ответствовать инструкции по эксплуатации, прилагаемой к конкретному
оборудованию.
3.4. При наличии у средства, наряду с антимикробными свойствами (в
том числе обязательно в отношении возбудителей парентеральных вирусных
гепатитов и ВИЧ-инфекции) также и моющих свойств, ПСО изделий на эта-
пе замачивания в растворе может быть совмещена с их дезинфекцией. При
этом время замачивания должно соответствовать экспозиции при вирусных
инфекциях, а в противотуберкулезных учреждениях — при туберкулезе.
Совмещение дезинфекции и ПСО в одном этапе позволяет упростить
обработку инструментов, уменьшить количество емкостей, сократить вре-
мя пребывания изделий в растворах, что в конечном итоге сокращает вре-
мя обработки и способствует сохранению инструментария.
3.5. Разъемные изделия подвергают ПСО в разобранном виде. При
замачивании в моющем растворе изделия полностью погружают в раствор
моющего средства, заполняя им каналы и полости изделий.
Мойку изделий осуществляют с помощью ерша, ватно-марлевого там-
пона, тканевых салфеток; каналы изделий промывают с помощью шприца.
Использование ерша при очистке резиновых изделий не допускается.
3.6. ПСО лигатурного шовного материала (нити хирургические шел-
ковые крученые, нити хирургические капроновые крученые, шнуры хи-
рургические полиэфирные) в лечебных учреждениях на проводят.
3.7. Растворы средств для ПСО допускается применять многократно
до появления видимых признаков загрязнения (изменение цвета, помутне-
ние, появление хлопьев и осадка), но не более чем в течение времени, ука-
занного в методическом документе по применению конкретного средства.
136
При применении растворов, содержащих перекись водорода с моющим
средством, растворов моющих средств «Лотос», «Лотос-автомат», «Астра»,
«Айна», «Маричка», «Прогресс», а также натрия двууглекислого, неизмен-
ный раствор можно использовать до 6 раз в течение рабочей смены.
3.8. После проведения ПСО изделия высушивают до полного исчез-
новения влаги в сушильных шкафах. Сушку изделий, имеющих оптиче-
ские детали, проводят путем протирания чистой тканевой салфеткой и
просушивания при комнатной температуре.
3.9. Контроль качества ПСО изделий проводят в соответствии с из-
ложенным в разделе 4.
4. Контроль качества предстерилизационной очистки
изделий медицинского назначения
4.1. Контроль качества ПСО проводят специалисты территориальных
санитарно-эпидемиологических учреждений в зависимости от эпидзначи-
мости медучреждений и конкретной эпидситуации.
Самоконтроль в лечебном учреждении проводят: в централизованных
стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях — не реже 1 раза в не-
делю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра (аку-
шерка) отделения, главная медсестра — 1 раз в месяц.
4.2. Контролю подлежит: в ЦС — 1 % от каждого наименования из-
делий, обработанных за смену, в отделениях — 1 % одновременно обрабо-
танных изделий каждого наименования, но не менее 3 единиц.
4.3. Качество ПСО изделий оценивают путем постановки азопирамо-
вой пробы (на наличие остаточных количеств крови).
Методика приготовления реактивов для постановки пробы
4.3.1. Азопирамовая проба.
4.3.1.1. Приготовление исходного раствора. Для приготовления 1 л
(дм
3
) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0–
1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и до-
водят до объема 1 л (дм
3
) 95 % этиловым спиртом. Смесь тщательно пере-
мешивают до полного растворения ингредиентов.
Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом
флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопи-
рама составляет: при температуре 4 °С (в холодильнике) — 2 месяца; при
комнатной температуре (20 °С) — не более 1 месяца. Умеренное пожелте-
ние исходного раствора без выпадения осадка в процессе хранения не
снижает рабочих свойств раствора.
4.3.1.2. Приготовление реактива азопирама. Перед постановкой про-
бы готовят реактив азопирам, смешивая равные объемные количества ис-
ходного раствора азопирама и 3 % раствора перекиси водорода.
Реактив азопирама можно хранить не более 2 часов. При длительном
стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При
137
температуре выше +25 °С раствор розовеет быстрее, поэтому его необхо-
димо использовать в течение 30–40 мин. Не следует подвергать проверке
горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и
вблизи нагревательных приборов.
В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют
следующим образом: 2–3-капли реактива наносят на пятно крови. Если не
позже, чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, преходящее
затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению; если окраши-
вание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.
Методика постановки пробы
Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной
реактивом, или наносят 2–3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.
В шприцы вносят 3–4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз
продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверх-
ность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где, чаще всего,
остается кровь; реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на
марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в
чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы,
через них пропускают реактив, вытесняя 3–4 капли на марлевую салфетку.
Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают пу-
тем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или
пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 1 мин, после чего сливают
на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия,
зависит от его величины.
Учет результатов постановки пробы
При положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови
немедленно или позднее, чем через 1 мин появляется вначале фиолетовое,
затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-
сиреневое или буроватое окрашивание реактива.
Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях оста-
точных количеств:
― пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков);
― окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с
отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.);
― ржавчины (окислов и солей железа);
― кислот.
При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окис-
лителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях
происходит окрашивание в розово-сиреневый цвет.
При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактива, насту-
пившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.
Результаты контроля отражают в журнале по форме № 366/у.
138
5. Контроль стерилизации
5.1. Паровые, воздушные и газовые стерилизаторы, используемые для
стерилизации изделий медицинского назначения, подлежат контролю.
Контроль позволяет оперативно выявить несоответствие режимов стери-
лизации, вызванное техническими неисправностями аппаратов и наруше-
нием технологии проведения стерилизации.
5.2. Контроль стерилизации предусматривает проверку параметров
режимов стерилизации и оценку ее эффективности. Контроль режимов сте-
рилизации проводят физическим (с помощью контрольно-измерительных
приборов: термометров, мановакуумметров и др.), химическим (с исполь-
зованием химических индикаторов) и бактериологическим (с использова-
ние споровых тест-культур) методами.
Организация и порядок проведения контроля за стерилизацией изде-
лий медицинского назначения осуществляется согласно методическим
указаниям МУ № 90-9908 «Контроль качества стерилизации изделий ме-
дицинского назначения».
Самоконтроль работы стерилизаторов проводит персонал лечебного
учреждения физическим и химическим методами – при каждой загрузке
стерилизаторов, бактериологическим – ежемесячно. Специалисты сани-
тарно-эпидемиологических учреждений проводят плановый контроль со-
гласно действующим нормативным документам.
5.3. Проверку температурного режима осуществляют с помощью макси-
мальных термометров, которые помещают в контрольные точки стерилизаторов.
Для контроля температуры используют также химические индикато-
ры различных типов (наружные, внутренние, мультипараметрические, ин-
теграторы), которые помещают в контрольные точки.
Медицинский персонал, использующий средства физического и хи-
мического контроля, регистрирует результаты контроля в журнале по
форме № 257/у.
Бактериологический контроль работы стерилизационной аппаратуры
осуществляют с помощью биотестов, оценивающих гибель спор термоус-
тойчивых микроорганизмов. Биотесты представляют собой дозированное
количество спор тест-культуры на носителе (или в нем), помещенном в
упаковку, которая предназначена для сохранения целостности носителя со
спорами и предупреждения вторичного обсеменения после стерилизации.
В качестве носителей можно использовать инсулиновые флаконы, чашеч-
ки из алюминиевой фольги (для паровых и воздушных стерилизаторов), а
также диски из фильтровальной бумаги (для воздушных стерилизаторов).
Упакованные биотесты помещают в те же контрольные точки стерилиза-
ционной камеры, что и средства физического и химического контроля.
5.4. Основанием для заключения об эффективной работе стерилиза-
ционной аппаратуры является отсутствие роста тест-культуры при бакте-
риологических исследованиях всех биотестов в сочетании с удовлетвори-
тельными результатами физического и химического контроля.
139
Окончание приложения 2
Таблица 6 — Дезинфекция физическими методами
Режим дезинфекции
температура, °С время выдержки, мин
Метод
дезин-
фекции
Дезинфици-
рующий
агент
номи-
нальное
значение
предель-
ное от-
клонение
номи-
нальное
значение
предельное
отклоне-
ние
Применяе-
мость
Условия
проведения
дезинфек-
ции
Приме-
няемое
оборудо-
вание
Дистиллиро-
ванная вода
99 ±
1 30
Кипя-
чение
Дистиллиро-
ванная вода с
натрием дву-
углекислым
2 % (пище-
вая сода)
99 ±
1 15
Для изделий из
стекла, металлов,
термостойких по-
лимерных мате-
риалов, резин, ла-
текса
Полное по-
гружение из-
делий в воду
Кипятиль-
ник дезин-
фекционный
Паро-
вой
Водяной на-
сыщенный пар
под
избы-
точным дав-
лением
р = 0,05 МПа
(0,5 кгс/см
2
110
± 2
20
+ 5
То же
В стерили-
зационных
коробках
Паровой
стерилиза-
тор; камеры
дезинфек-
ционные
Воз-
душный
Сухой горя-
чий воздух
120 ±
3 45
Для изделий из
стекла, метал-
лов, силиконо-
вый резины
Без упа-
ковки
(в лотках)
Воздушный
стерилизатор
140