Файл: белорусский государственный технологический университет.docx

ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 11.12.2023

Просмотров: 1132

Скачиваний: 1

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.

СОДЕРЖАНИЕ

Секция

ТЕХНОЛОГИИ ОРГАНИЧЕСКИХ ВЕЩЕСТВ

РАЗРАБОТКА ТВЕРДОФАЗНЫХ МЕТОДОВ СИНТЕЗА ФЕРРИТА ВИСМУТА BiFeO3 Феррит висмута BiFeO3 – один из наиболее перспективных мате- риалов, на основании которого разрабатывают новые магнитоэлектри- ческие материалы (мультиферроики). Связь между магнитной и элек- трической подсистемами, предоставляющая возможность с помощью электрического поля управлять магнитными свойствами материала и, наоборот, позволяет говорить о мультиферроиках как о возможных ма- териалах для создания принципиально новых устройств в области ин- формационных и энергосберегающих технологий, устройств магнит- ной памяти, сенсоров магнитного поля и др. Не смотря на то, что синтез и свойства BiFeO3 исследованы достаточно широко, установлено, что получение BiFeO3 и твердых растворов на его основе путем взаимодей- ствия соответствующих оксидов осложняется рядом факторов и не поз- воляет получать однофазные твердые растворы, не содержащие приме- сей Bi25FeO39 и Bi2Fe4O9. В связи с этим целью работы являлась разра- ботка твердофазных методов синтеза BiFeO3 на основе примесных фаз Bi25FeO39 и Bi2Fe4O9, используемых в качестве прекурсоров, и соответ- ствующих оксидов.Первый способ твердофазного синтеза BiFeO3 предполагал взаи-модействие предварительно полученного прекурсора Bi25FeO39 с окси- дом Fe2O3 по реакции Bi25FeO39 + 12Fe2O3 = 25BiFeO3. На основании полученных данных было показано, что предложенный метод позволил уменьшить температуру и время синтеза по сравнению с твердофазным методом синтеза из оксидов Bi2O3 и Fe2O3, и незначительно снизить со- держание примесных фаз с 5 до

КВАСЦЫ КАК КОАГУЛИРУЮЩИЕ АГЕНТЫ В ПРОИЗВОДСТВЕ ЭМУЛЬСИОННЫХ КАУЧУКОВСпрос на высокомолекулярные соединения постоянно нарастает во всем мире. Каучуки, изготовленные эмульсионной сополимериза- цией, обладают необходимыми свойствами и находят свое применение для изготовления резинотехнических изделий и композиционных со- ставов различного назначения и др. [1, 2]. Однако применяемые в настоящее время для выделения каучука из латекса соли металлов пер- вой группы обладают дешевизной, но их расходные нормы (сотни ки- лограмм для производства одной тонны каучука) плохо сказываются на экологии. Поэтому снижение расхода солевого коагулянта имеет важ- ное практическое значение. Интерес в этом плане представляют квасцы. 4Квасцы – это двойные соли, содержащие в качестве одного из ка- тионов трёхвалентные металлы (Fe3+, Cr3+, Al3+), второй катион – это щелочные металлы (Na+, K+, Cs+, Rb+) или ион аммония NH4+. На месте аниона стоит сульфат-ион SO 2-. Квасцы известны с древних времён как осветлители мутных жид- костей. Это основано на их флокулирующих свойствах. Такое свойство объяснимо с точки зрения атомного состава солей. Квасцы находят ши- рокое применение как протрава при крашении и дублении, в медицине, в косметике, в приготовлении пищи и др. Квасцы не обладают дефи- цитностью, имеют доступную цену и широко используются в различ- ных отраслях промышленности.Целью данной работы – рассмотрение флокулирующего дей- ствия квасцов при производстве эмульсионных каучуков.Объектами исследования послужили алюмокалиевые, хромкали- евые квасцы. Изучение процесса снижения агрегативной устойчивости латекса марки СКС-30 АРК осуществляли по методике, представлен- ной в работе, с употреблением в качестве коагулирующих веществ вод- ных растворов вышеуказанных солей (мас. дол. 0,02 ед). После введе- ния солей в латекс бутадиен-стирольного каучука систему гомогенизи- ровали 3–4 минуты, а затем и при постоянном перемешивании вводили водный раствор серной кислоты с массовой долей 0,02 ед. из расчета 15 кг/т каучука. Систему перемешивали в течение 3–5 минут. Образующуюся крошку каучука извлекали из водной фазы (серума), промывали водой и обезвоживали в сушильном агрегате при 80–85 оС. Полноту коагуля- ции оценивали визуально по прозрачности серума и гравиметрически – по массе выделяемой крошки каучука.Промышленный латекс СКС-30 АРК имел следующие характери- стики: рН = 9,6; поверхностное натяжение  = 57,4 мН/м; содержание сухого остатка 21,2 %; содержание связанного стирола 22,6 %.Проведенными исследованиями установлено, что квасцы могут быть использованы для снижения агрегативной устойчивости латекс- ной дисперсии. Наименьшим расходом на выделение одной тонны ка- учука из латекса обладали хромкалиевые квасцами, 20 кг. Расход алюмокалиевых квасцов, необходимый для полного выделения каучука из латекса составил 40 кг.Квасцы, как сказано выше, обладают катионом с зарядом (+3), из чего можно сделать вывод: процесс коагуляции латекса проводится по концентрационному механизму. Согласно Правилу Шульце-Гарди зна- чения порогов коагуляции для противоионов с зарядами 1, 2 и 3 соот- носятся как 1 : 1/20 : 1/500. Чем выше заряд, тем меньше расход элек- тролита.Интерес к использованию солей, содержащих положительно за- ряженный ион (3+), в технологии выделения эмульсионных каучуков из латекса базируется на том, что расход их в 5-10 раз меньше расхода хлорида натрия, который составляет

МОЛЕКУЛЯРНО-БИОЛОГИЧЕСКАЯ ИДЕНТИФИКАЦИЯ ДРОЖЖЕЙ, ВЫДЕЛЕННЫХ ИЗ РАЗЛИЧНЫХ ЭКОСИСТЕМ АНТАРКТИКИТаксономия и систематика дрожжей до настоящего времени находится в процессе становления, несмотря на то, что первая класси- фикация этих организмов была предложена еще в 1904 году. В совре- менных научных исследованиях наибольшую достоверность в иденти- фикации видов приобрели молекулярно-биологические методы, к кото- рым можно отнести MALDI-TOF масс-спектрометрию и секвенирова- ние участков ДНК.Первичная идентификация видовой принадлежности проводи- лась с использованием масс-спектрометрического профилирования ри- босомальных белков микроорганизмов, находящихся в экспоненциаль- ной стадии роста при поддержке Института биоорганической химии Национальной академии наук Беларуси. Метод основан на ионизации матрично-активированной лазерной десорбции/ионизации с детекцией во время пролетном масс-анализаторе высокого разрешения [1]. Дан- ные после обработки анализировали с использованием системы управ- ления базами данных BioTyper для идентификации микроорганизмов.Полученные параметры достоверности в пределах от 1,700 до 1,999 («желтая область») позволили идентифицировать 7 изолятов до рода, из которых 6 были отнесены к Sporobolomyces roseus (изоляты 4- 1, 4-7, 4-9, 4-10, 4-11 и 7-71) и один к Pseudozyma aphidis (изолят 1-15). Параметр достоверности в пределах от 2,000 до 2,299 («зеленая об- ласть») позволили достоверно идентифицировать до рода и возможна идентификация до вида изолята 1-32 как Pseudozyma aphidis. Одна культура дрожжей попала в диапазон 2,300-3,000 («зеленая область»), что позволило достоверно идентифицировать ее до вида (культура 2-2– Cryptococcus liquefaciens). Остальные результаты параметров досто- верности находились в «красной области» (значения показателей ниже 1,700), поэтому достоверно идентифицировать их не имелось возмож- ности. Основной причиной являлось отсутствие в используемой базе данных таких видов дрожжей и данных о них.Полученные результаты свидетельствовали о необходимости дальнейшей идентификации с использованием амплификации фраг- ментов ДНК с последующим секвенированием. Для идентификации дрожжевых культур проводили амплификацию фрагмента 18S рДНК с использованием праймеров NS1-NS4 (размер фразмента 1100 пн) и межгенные участки окаймленные праймерами ITS1-ITS4, ITS1-LR3 и ITS1-LR5 (размер фрагментов

Секция

ХИМИЧЕСКОЙ ТЕХНОЛОГИИ И ТЕХНИКИ

РАЗРАБОТКА СОСТАВОВ СТЕКОЛ И ТЕХНОЛОГИИ ПОЛУЧЕНИЯ ЛЮМИНЕСЦИРУЮЩИХ СТЕКЛОКРИСТАЛЛИЧЕСКИХ МАТЕРИАЛОВСтеклокристаллические материалы, соактивированные ионами эрбия и иттербия представляют практический интерес и предназначены для использования в качестве ап-конверсионных люминофоров, осу- ществляющих эффективное преобразование инфракрасного лазерного излучения (

1; д БНБК 2; е МОС

Рисунок 1 – Микрофотографии колоний нитчатых бактерий различных штаммов на среде R2A, ×100

Показано, что в жидких питательных средах R2A, ССВ образуют нити бактерии штаммов Волковичи, БНБК 2, МОС, Альбертин (рису- нок 2, а–з), в среде ССВ также штамм Раубичи (рисунок 2, и). Однако

в среде I Medium нитчатую структуру сохраняют лишь бактерии штам- мов Волковичи и Раубичи (рисунок 2, и–л), остальные же длинных ни- тей не образуют и представлены короткими фрагментами или отдель- ными клетками.



а,д Волковичи; б,е БНБК 2; в,ж МОС; г, з Альбертин;

и, л Раубичи; к Волковичи

Рисунок 2 – Микрофотографии бактерий различных штаммов в средах R2A (а–г), ССВ (д–з), I Medium (и–л), ×100

Все выделенные бактерии грамположительны. Выявлена способ- ность к образованию эндоспор для бактерий штамма Альбертин, чех- лов штамма Раубичи, капсул – штамма МОС (в среде R2A).

Таким образом, в результате исследований определены основные морфологические характеристики для нитчатых бактерий, выделенных из биоценозов АИ различных очистных станций. Показано, что способ- ность бактерий формировать нитчатые структуры, а также размер ни-
тей зависят от состава среды. Полученные результаты позволят при- близиться к решению проблемы нитчатого вспухания АИ.

ЛИТЕРАТУРА

  1. R2A агар [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.mibio.ru/contents.php?id=1664. Дата доступа: 01.03.2022.

  2. Вещества поверхностно-активные. Метод определения биораз- лагаемости в водной среде: ГОСТ 32509-2013. Введ. 01.01.2015. [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://docs.cntd.ru/document/1200107410. Дата доступа: 01.03.2022.

  3. Среда для выделения железобактерий [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://www.himedialabs.ru/m622.– Дата доступа: 01.03.2022.

  4. Белясова, Н.А. Микробиология. Лабораторный практикум: учеб. пособие для студентов специальностей «Биотехнология», «Био- экология», «Биология» / Н.А. Белясова. Минск: БГТУ, 2007. 160 с.

УДК 579.66:579.222.3

Студ. А.С. Хоронеко

Науч. рук. доц. И.А. Гребенчикова (кафедра биотехнологии, БГТУ)

ПРОДУКЦИЯ УКСУСНОКИСЛЫМИ БАКТЕРИЯМИ УКСУСНОЙ КИСЛОТЫ В УСЛОВИЯХ


ОТЪЕМНО-ДОЛИВНОГО РЕЖИМА ФЕРМЕНТАЦИИ

При получении уксусной кислоты (УК) микробным синтезом перспективен глубинный способ ферментации, позволяющий повысить выход УК за счет обеспечения постоянного равномерного снабжения культуры продуцента кислородом воздуха и компонентами питатель- ной среды.

Целью настоящей работы являлось установление условий отъемно-доливного режима ферментации, обеспечивающих эффектив- ную продукцию кислоты уксуснокислыми бактериями (УКБ), выделен- ными из природных источников [1].

Динамику накопления бактериями УК устанавливали следую- щим образом. УКБ культивировали в жидкой среде Лойцянской [2] с добавлением дрожжевого экстракта в качестве источника факторов ро- ста. Концентрация источника углерода этилового спирта– составляла 2% об. Эксперимент проводили в течение 30 суток при температуре 30°С и частоте встряхиваний 200 мин–1 (шейкер-инкубатор Environmental Shaker-incubator ES-20 (BIOSAN, Латвия)).

Отбор проб КЖ производили с периодичностью 1–6 суток, одно- временно вносили эквивалентный объем концентрированной питатель- ной среды. Состав подпитки включал все компоненты среды в количе- стве, равном первоначальному, за исключением воды. В пробах анали- зировали содержание уксусной кислоты титриметрическим методом
[2], устанавливали значение рН, а также измеряли оптическую плот- ность суспензий при помощи спектрофотометра Specord M40 (Carl Zeiss Industrielle Messtechnik GmbH, Германия) при длине волны 600 нм (кюветы с толщиной оптического слоя 1 см).

Результаты эксперимента свидетельствуют, что при ежесуточном внесении подпитки, а также ее периодичности один раз в двое суток максимально достигаемая концентрация УК не превышает 5,6%, при этом содержание УК в КЖ значительно колеблется. При подпитке один раз в трое суток количество УК варьируется в интервале 5,0–6,4%, при этом амплитуда колебаний уменьшается. Это обстоятельство показы- вает, что скорость разбавления среды при данных режимах выше ско- рости образования кислоты продуцентом. Подпитка один раз в пятеро- шестеро суток позволяет получить концентрацию УК в КЖ около 6,0.

Наиболее привлекательным выглядит режим ферментации с подпиткой через четверо суток, при котором за время около 30 суток возможно получение КЖ с концентрацией УК 6,6% при ее равномерном образо- вании бактериями.

Установлено, что концентрация биомассы при ежесуточной под- питке невелика за счет ее вымывания из системы (оптическая плот- ность КЖ не превышает значения 0,36). Для других режимов оптиче- ская плотность колеблется в основном около 0,40, в случае с подпиткой один раз в пятеро-шестеро суток достигает 0,45, что свидетельствует об удержании клеток продуцента в биосистеме. Однако в последних случаях концентрация УК в КЖ увеличивается медленнее за счет более редкого внесения с подпиткой дополнительного количества этилового
спирта.

Среднее значение рН на протяжении эксперимента составляло 3,65–3,90 и уменьшалось пропорционально увеличению продолжи- тельности периода между внесением подпиток. Наибольшие значения и значительные колебания этого показателя отмечены при ежесуточ- ном внесении подпитки, что говорит о несбалансированности биосин- теза УК и ее удаления из системы в составе КЖ.

Таким образом, показана зависимость показателей ферментации от режима внесения дополнительных компонентов питательной среды при условии достижения содержания этилового спирта в смеси 2% об. Установлено, что наиболее приемлемым является внесение подпитки один раз в четверо суток, что позволяет добиться концентрации УК в КЖ около 6,6%. Такой режим характеризуется равномерным накопле- нием кислоты, отсутствием значительных колебаний концентрации биомассы продуцента и средним значением рН КЖ около 3,75, что дает возможность проводить процесс ферментации без соблюдения условий асептики. Для повышения эффективности процесса представляет инте- рес снижение продолжительности ферментации за счет оптимизации состава подпитки.

ЛИТЕРАТУРА

  1. Друзь, К.Д. Свойства уксуснокислых бактерий, выделенных из природных источников / К.Д. Друзь, И.А. Гребенчикова // 72-я науч.- техн. конф. учащихся, студентов и магистрантов: тезисы докладов: в 4- х ч. – Минск, 12–23 апреля 2021 г. [Электронный ресурс] – Минск: БГТУ, 2021. – Ч. 2. – С. 49–50.

  2. Муратова, Е.И. Биотехнология органических кислот и белко- вых препаратов: учебное пособие / Е.И. Муратова, О.В. Зюзина, О.Б. Шуняева. – Тамбов: Изд-во Тамб. гос. техн. ун-та, 2007. – 80 с.

УДК 577.151+577.152.18

Студ. И.А. Луцик

Науч. рук. доц. А.В. Игнатенко (кафедра биотехнологии,