Файл: Ветеринарне акушерство, Яблонський, 2006.pdf

ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 22.02.2019

Просмотров: 15238

Скачиваний: 17

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
background image

Сперма. Фізіологія та біохімія сперми

145

Перед  використанням  яєць  їх  миють  щіткою,  витирають  марлевою  серветкою  і 

протирають спиртовим тампоном або ж опромінюють бактерицидними лампами (на 
шкаралупі яйця виявлено 13 видів мікроорганізмів та 7 видів пліснявих грибів).

Молоко для виготовлення молочних розріджувачів повинно бути свіжим, від здо-

рових корів. Можна також використовувати сухе напівжирне молоко.

Дистильована вода має бути чистою, прозорою, без слідів металу. Для окислення 

летких органічних речовин до води, що піддається дистиляції, додають марганцево-
кислий калій до червоного забарвлення.

Готують розріджувачі у скляній посудині і безпосередньо перед одержанням спер-

ми з таким розрахунком, щоб від моменту його виготовлення і до застосування про-
йшло не більше 1–2 годин.

Розріджувати сперму слід не пізніше, як через 10–15 хв. після її отримання.
Перед розрідженням сперми обов’язково визначають у ній концентрацію та рух-

ливість сперміїв і на підставі цих даних визначають ступінь розрідження, тобто відно-
шення об’єму середовища, котре додається на кожен мілілітр еякуляту, що має певні 
межі. Граничний ступінь розрідження можна визначити за формулою:

С

р 

= 1 : (С × Р

е

 × Р

о 

× 0,01× О

д:

 КС

ппр

 × 1,2–1),

Ср – граничний ступінь розрідження;
С – концентрація сперміїв у розріджуваному еякуляті, млрд/ мл;
Р

е

 – рухливість сперміїв у еякуляті, бали;

Р

о

 – мінімально допустиме розрідження сперміїв перед осіменінням, бали;

0,01 – коефіцієнт поправки на рухливість сперміїв;
О

д

 – об’єм дози розрідженої сперми, мл;

КС

ппр

 –  мінімальна  кількість  сперміїв  з  прямолінійно-поступальним  рухом  у

 

       дозі, млрд;

1,2 – коефіцієнт поправки на КС

ппр

.

Сперму  бугая,  барана  спочатку  розріджують  1 : 1  або  1 : 2  у  спермоприймачі,  а 

тоді переливають її у чистий, стерильний, підігрітий до 40 ºС градуйований змішувач 
чи  мензурку  і  поступово  доливають  решту  середовища.  Температура  розріджувача 
повинна відповідати температурі сперми. Якщо час між отриманням двох еякулятів 
складає більше 20 хвилин (а сперму отримують дуплетною садкою), то до розріджен-
ня еякуляту в нього додають 5–10 % жовтка (1–2 краплі на 1 мл сперми). Середовища, 
що містять гліцерин, краще додавати до сперми двомоментно: спочатку 0,5 : 1, а через 
15–20 хв. повторно, до потрібного розрідження. Щоб переконатися, що розрідження 
не  погіршило  якості  сперми,  зразу  після  змішування  її  з  середовищем  перевіряють 
активність сперміїв. Якщо вона знизилась – розріджувач виготовлений не вірно. У та-
ких випадках готують новий розріджувач. Розрідження сперми проводять у стериль-
них умовах у камері УНБК–1 або в лабораторії, обладнаній бактерицидними лампами 
БУВ–30.


background image

146

Розділ 4

Ступінь розрідження встановлюють залежно від концентрації і активності спер-

міїв. Допускається до розрідження сперма бугая та барана з активністю не нижче 8 
балів,  кнура –  7,  жеребця –  не  нижче  5  балів,  при  концентрації  сперміїв  у  бугая  не 
менше 0,7, барана – 1,0, кнура і жеребця – 0,15 млрд на мл.

Сперму бугая можна розріджувати в 10–32 рази, сперму барана у 2–3 рази, жереб-

ця і кнура – 2–5 раз. Найвищі ступені розрідження застосовують, отже, до сперми бу-
гая. При потребі цей ступінь розрідження можна збільшити, довівши його до 1 : 100, 
а то й до 1 : 200. У дозі розрідженої сперми має бути 15–25 млн рухливих сперміїв.

Використовувані на станції середовища повинні періодично піддаватися біокон-

тролю, особливо, коли переходять на застосування нових рецептів середовищ або ж 
нових  серій  реактивів  і  антибіотиків;  контроль  середовищ  проводять  за  методикою 
визначення абсолютного і відносного показника живучості сперміїв. При цьому вста-
новлюють оптимум та максимум розрідження.

Оптимум розрідження – це такий ступінь розрідження, при якому досягають най-

вищої живучості сперміїв.

Максимум розрідження – найбільший ступінь розрідження, при якому живучість 

сперміїв не падає нижче їх живучості у нерозрідженій спермі.

Чинними інструкціями, постановами та методичними вказівками з штучного осіме-

ніння рекомендовані варіанти середовищ для усіх видів сыльськогосподарських тварин 
для зберігання сперми при 2–5 °C, кімнатних температурах та у замороженому вигляді.

Для розрідження та короткочасного зберігання сперми бугая при 2–5 °C застосо-

вують глюкозо-цитратно-жовткове середовище.

Для  розрідження  та  заморожування  сперми  бугая  у  формі  гранул  користуються 

лактозо-жовтково-гліцериновим,  а  для  облицьованих  гранул –  лактозо-фруктозо-ра-
фінозо-магнієво-гліцерино-жовтковим середовищем.

Найширше  розповсюдження  при  розрідженні  сперми  барана  отримав  глюкозо-

жовтково-цитратний розріджувач. Останнім часом акцент переноситься на глюкозо-
фосфатне середовище.

При зберіганні сперми кнура у жовткових розріджувачах наштовхнулися на пере-

шкоди, обумовлені наявністю у плазмі сперми фосфоліпази А, що є у секреті цибу-
линно-сечівниковох залоз. Цей ензим гідролізує лецитин жовтка до жирних кислот і 
лізолецитину, які токсичні для сперміїв і викликають коагуляцію розріджувача. Ток-
сичний ефект можна частково зменшити, видаляючи плазму сперми, або хірургічно 
видаляючи у кнура ці залози.

Із численних середовищ для розрідження сперми кнура при температурі 16–20 °С 

найбільше розповсюдження отримали глюкозо-хелато-цитратні.

При фракційному методі осіменіння свиней застосовують розріджувачі-заповню-

вачі (сольовий, цукровий, молочний).

Для розрідження сперми жеребця частіше всього застосовують глюкозо-жовткове, 

молочно-жовткове і лактозо-жовткове середовища. У тих випадках, коли осіменіння 
кобил проводять свіжоодержаною спермою, можна використовувати глюкозне чи цу-
крове середовища.


background image

Сперма. Фізіологія та біохімія сперми

147

Зберігання сперми. Штучне осіменіння сільськогосподарських тварин нині про-

водиться  переважно  збереженою  спермою.  Отже,  ефективність  використання  цього 
методу залежить, в першу чергу, від тривалості виживання сперміїв у спермі, що збе-
рігається. Як уже підкреслювалося, воно залежить як від енергетичних запасів спер-
ми, так і від інтенсивності їх використання.

Розробляючи методи зберігання сперми, вчені виходили з наявності у природі двох 

станів живих організмів: життєдіяльного та нежиттєдіяльного (А. М. Голдовський). У 
життєдіяльному  стані  істота  може  проявляти  повну  активність  (біоз)  чи  дещо  упо-
вільнену активність (гіпобіоз); у нежиттєдіяльному стані вона може перебувати в ана-
біозі (тобто не проявляючи функції життєдіяльності), або ж у мезабіозі (проявляючи 
лише процеси дисиміляції, тобто розпаду речовин клітини).

Звичайно  метою  зберігання  живих  об’єктів  є  переведення  їх  у  нежиттєдіяльний 

стан, коли життєспроможні структури не ушкоджуються, енергетичні запаси не витра-
чаються, а їхня функція, при певних умовах, може бути відновлена (Ф. І. Осташко).

Для збільшення виживання сперміїв поза організмом необхідно знизити у них ак-

тивність обмінних процесів, загальмувати їх рухливість і розрідити секрети додатко-
вих статевих залоз розчинами, що не активують рухливості сперміїв та не руйнують 
їх ліпопротеїдного покриву. Цього можна досягти шляхом застосування відповідних 
розріджувачів, зниження температури сперми, створення у ній анаеробних умов, вне-
сення  у  розріджувачі  метаболічних  інгібіторів  (органічні  кислоти,  хелатон  та  ін.)  і 
зниження за рахунок цього рухливості сперміїв.

Зберігати можна лише сперму доброї якості. При виборі способу зберігання спер-

ми виходять з її видових особливостей. Сперма тварин з піхвовим типом природно-
го осіменіння відрізняється вищою живучістю сперміїв поза організмом самця, ніж 
сперма тварин з матковим типом осіменіння. При будь-якому методі зберігання необ-
хідно  перевести  спермії  у  стан  анабіозу.  Найширше  для  цього  застосовують  холод, 
не допускаючи швидкого охолодження, яке може призвести до загибелі сперміїв від 
холодового удару.

У практиці тваринництва нині користуються короткотривалим зберіганням спер-

ми  при  температурі  2–5 °C  (бугаїв –  до  72 год.,  баранів –  до  24 год.,  жеребців  –до 
48 год.), короткотривалим зберіганням при температурі 16–20 °C (кнурів – до 72 год.) 
і тривалого зберігання – у парі рідкого азоту при –196 °С.

Короткочасне зберігання сперми при температурі танення льоду (2–5 °С). Цей 

метод досить простий, доступний, він зіграв велику роль у широкому розповсюджен-
ні штучного осіменіння. Після розрідження і півгодинного витримування сперми при 
кімнатній температурі, її розфасовують у флакони (ампули, пробірки і т. п.) і ставлять 
на зберігання у холодильник при температурі 4 °С чи у термос з льодом. У першому 
випадку флакони зі спермою обгортають шаром вати, поміщають у поліетиленові мі-
шечки і ставлять у кювету з льодом, додаючи туди трохи холодної води, і поміщають 
на полицю холодильника, де температура підтримується у межах 2–5 °С. Якщо ж для 
зберігання  сперми  користуються  широкогорлим  харчовим  термосом,  то  його  попе-


background image

148

Розділ 4

редньо заповнюють наполовину об’єму дрібними кусками чистого промитого у воді 
льоду з температурою 0 °С. Якщо температура льоду нижче нуля (не видно танення), 
то після промивання водою дають йому постояти у теплому приміщенні, поки не по-
чне танути.

Зверху льоду кладуть кружок поліетиленової плівки, тоді шар сірої вати, товщи-

ною 0,5 см, а тоді ставлять зверху вертикально чи похило флакони зі спермою. Через 
3–4 години  шар  вати  видаляють  і  ставлять  флакони  безпосередньо  на  лід.  У  такій 
спермі дихання та фруктоліз сперміїв гальмується у 2–25 разів (М. П. Шергін). Проте 
сперма окремих бугаїв погано переносить охолодження.

Зберігання сперми при кімнатній температурі. Ще у 1924 р. К. Н. Кржижковсь-

кий та Г. Н. Павлов встановили, що виділювана під час дихання сперміїв СО

2

, всту-

паючи в реакцію з водою, утворює вугільну кислоту, яка легко проникає крізь обо-
лонку сперміїв і гальмує у них обмін речовин. На цій підставі Ван Демарк і Шарма у 
1957 р. запропонували розріджувач ІВТ (іллінойський для варіюючих температур). У 
розрідженій ним спермі після насичення її вуглекислим газом до рН 6,2–6,4 спермії 
зберігали  свою  живучість  при  кімнатній  температурі  до  5–7  днів.  В. К. Милованов 
та  М. В. Ситіна  запропонували  бікарбонатно-фосфатний  розріджувач,  у  якому  СО

утворювалася безпосередньо у розрідженій спермі внаслідок взаємодії між гідрокар-
бонатом натрію і однозаміщеним фосфатом калію:

NaHCO

3

 + KH

2

PO

4

 = NaKHPO

4

 + H

2

CO

3

Дослідники Корнельського університету (Фут, Янг, Данн) запропонували в 1958 р. 

своє середовище, головним інгібітором рухливості сперміїв у якому була лимонна кис-
лота, а Кок в Нідерландах використав з цією метою хелатон (трилон Б, ЕДТА – етилен-
діамінтетраоцтова кислота). Це започаткувало серію середовищ для зберігання сперми 
при кімнатній температурі, до складу яких входять органічні кислоти (аскорбінова, са-
ліцилова, винна, янтарна, яблучна та ін.) чи хелатон. Розріджену таким середовищем 
сперму розфасовують у щільно закупорювані флакони чи запаювані ампули і зберіга-
ють у коробці з добрим теплоізолюючим матеріалом чи термосі з льодом, що тане.

Сперму кнура, розріджену хелатоновим середовищем (за М. Т. Плішко), зберіга-

ють у термосі, заповненому на 1/4 льодом, поверх якого кладуть поліетиленову плів-
ку, а на неї – шар вати товщиною 1–1,5 см.

Колби чи флакони з розрідженою спермою закривають (не герметично) плівкою 

або пергаментним папером і ставлять поверх вати у термосі. Сперму жеребця збері-
гають у термосі в простерилізованих скляних банках місткістю 100 мл з притертими 
корками або в спеціальних скляних ампулах місткістю 30 мл, що закриваються гумо-
вими  корками;  їх  поміщають  у  двошарові  ватно-марлеві  мішечки  і  повільно  охоло-
джують у термосі.

Наявний у складі розріджувача хелатон при кімнатній температурі інактивує фер-

менти і пригнічує обмін речовин у сперміїв. При підігріванні сперми до температури 
тіла (у геніталіях осімененої самки) поновлюється рухливість сперміїв.


background image

Сперма. Фізіологія та біохімія сперми

149

Тривале зберігання сперми при низьких температурах є найбільшим досягненням 

у галузі штучного осіменіння другої половини ХХ сторіччя. Короткочасне зберігання 
сперми при 2–5 °C та при кімнатній температурі має істотні недоліки: короткотрива-
лість, великі транспортні витрати (необхідно щодня чи через день доставляти сперму 
на пункти), неповне використання сперми на пунктах, велике навантаження і нерівно-
мірне використання плідників. Ці недоліки відпадають при зберіганні сперми у гли-
боко замороженому стані. Воно дозволяє рівномірно використовувати протягом року 
плідників, повністю використовувати сперму на пунктах і створювати її запаси (банки 
сперми) на племпідприємствах; створюються необмежені можливості для племінної 
роботи, оскільки сперма тепер може транспортуватися на безмежні віддалі, включа-
ючи й міжнародну торгівлю; її можна зберігати десятки років; спрощується й оцінка 
плідників за якістю нащадків.

Проблема біологічної дії холоду на спермії бере свій початок з досліджень Спалан-

цані (1787), Монтегаца (1866), І. І. Іванова (1907), К. Н. Кржижковського та Г. Н. Пав-
лова (1922). Було встановлено, що тривале зберігання гамет можливе лише в умовах 
повного анабіозу, при якому гальмуються всі біохімічні процеси.

Сперма – це біологічна рідина, у якій зважені клітини (спермії). При повільному 

її заморожуванні наступає кристалізація води. Її можна уникнути при надшвидкому 
заморожуванні (вітрифікація) з швидкістю 5 тис. градусів за секунду.

При  вивченні  явища  анабіозу  у  рослинних  та  тваринних  клітин  П. Г. Бахметьєв 

(1902) прийшов до висновку, що однією з причин їх загибелі є втрата води їх прото-
плазмою при охолодженні. Академік Максимов (1913) довів, що додавання до замо-
рожуваних рослинних клітин гліцерину захищає їх від обезводжування протоплазми, 
денатурації білка, кристалізації льоду. Згодом це підтвердили на сперміях А. Д. Бер-
нштейн та В. В. Петропавловський (1936), які вивчали зміни живучості сперміїв при 
їх охолодженні до –15…–23 °C. Проте цей факт не був критично оцінений і викорис-
таний. Дещо пізніше Янель (1938) встановив, що спермії чоловіка володіють надто 
високою стійкістю до охолодження у рідкому азоті (мінус 196 ºС) і навіть у рідкому 
гелії (мінус 269 ºС).

У 1948 р. І. В. Смирнов вперше заморозив нерозріджену сперму жеребця, кроля, 

бугая та барана у пакетиках з алюмінієвої фольги на поверхні твердого двоокису вуг-
лецю (мінус 79 °C) та у парі рідкого кисню, але більша частина сперміїв при цьому 
гинула.  Внаслідок  багаторазового  осіменіння  овець  та  корів  такою  спермою  автор 
отримав у 1950–1951 рр. ягнят та телят. Цю роботу було визнано відкриттям.

У 1948 році група англійських біологів з Кембріджського університету на чолі 

з  С. Полджем,  опрацьовуючи  технологію  заморожування  сперми  півня,  випадко-
во виявили захисні властивості гліцерину і запропонували у 1952 році технологію 
заморожування  сперми  бугая  з  його  використанням.  Технологія  виявилася  склад-
ною – спочатку сперму розріджували, охолоджували 4 години до 5 ºС, повторно роз-
ріджували охолодженим середовищем з вмістом 20 % гліцерину, знову витримували 
12–18 годин при 5 ºС, розфасовували у скляні ампули і заморожували у ступінчас-
тому режимі.