ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 11.12.2023
Просмотров: 184
Скачиваний: 1
ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
СОДЕРЖАНИЕ
Оксимы как новый тип лигандов для использования в клик-химии
Исследование кинетических особенностей синтеза сложных эфиров
Исследование эффективности препаратов, содержащих лактазу
Поискновыхрастительныхисточниковпроантоцианидинов
Необычные реакции, или реакции в коллоидных растворах
Структуры капсульных полисахаридов Klebsiellapneumoniae03 и Klebsiellapneumoniae 05 (Химия)
Получение полиэлектролитных микрокапсул
Получение перспективных красителей, на основе химически модифицированного хлорофилла
Реакции стирилтрихлорфосфониягексахлорфосфата с основными аминокислотами
Денитрификация газовых выбросов радиохимического
Молекулярные роторы на основе BODIPY
Метод молекулярного наслаивания в технологии оптоволоконных датчиков
способен транспортировать на себе различные молекулы, такие как жирные кислоты, пептиды, ионы металлов и многие другие. Закрепление на альбумине лекарственных препаратов может повысить их биологическую активность и обеспечить адресную доставку в необходимый участок организма. Для сравнения полученных данных был рассмотрен также комплекс альбумина с билирубином, желчным пигментом, переносимым альбумином в организме человека. Оба белка являются модельными в дополнение к описанным свойствам. Таким образом, удалось нанокапсулироватьбарбитуровую в альбумин бычьего сывороточного белка, и получить устойчивые комплексы.
Касимова Анастасия Алексеевна, 11 класс, ГБОУ лицей № 1303 (Москва)
Научный руководитель:Шпирт Анна Михайловна, Институт Органической химии им. Н. Д. Зелинского (Москва)
Постановка задачи:Klebsiellapneumoniae вызывает целый ряд опасных заболеваний у детей и пациентов с ослабленной иммунной системой. Особенностями бактериальной культуры Klebsiellapneumoniaeявляются наличие капсульного полисахарида (КПС), участвующего в образовании пленки биофильма и являющегося защитой против фагоцитов, а так же высокая устойчивость к действию антибиотиков. В настоящее время актуальным становится вопрос поиска альтернативных способов борьбы с данными клиническими штаммами бактерий, включая фаготерапию, основанную на инфицировании бактериальных клеток бактериофагами и их последующем лизисе. Данная работа посвящена изучению строения капсульных полисахаридов и изучению продуктов их расщепления под действием фаговойдеполимеразы.
Методы, использованные автором:первой стадией работы было изучение строения капсульных полисахаридов Klebsiellapneumoniae 03 и Klebsiellapneumoniae 05. Капсульные полисахариды выделялись из сухих бактериальных клеток водно-фенольной экстракцией [1] по классической методике. Выход капсульного полисахарида Klebsiellapneumoniae 03 составил 27,5%,Klebsiellapneumoniae05 – 10,7%. Основным подходом к структурному анализу полисахаридов была
комбинация спектроскопии ЯМР на ядрах 1H и 13C, метода масс- спектрометрии и химических методов анализа.
Основные результаты: строение капсульного полисахарида Klebsiellapneumoniae 03 совпало с известным в литературе [4] и имеет следующую структуру:
→3)-β-D-Galf-(1→3)-α-D-Galp(1→
Далее был проведен метод сахарного анализа [2]: полный кислотный гидролиз полисахарида 2М CF3COOH при 120Сс последующей конверсией высвободившихся моносахаридов в ацетаты полиоловборгидридным восстановлением и ацетилированием при помощи раствора (CH3CO)2O в пиридине, подтвердивший наличие в полисахариде Klebsiellapneumoniae 05 галактозы (Gal) и маннозы (Man). Абсолютные конфигурации Man и Gal в полисахариде были подтверждены методом ГЖХ ацетилированных (S)-октил гликозидов [3].
Дополнительное подтверждение структуры Klebsiellapneumoniae05 было получено путем селективного расщепления полисахарида распадом по Смиту и метилированием.
Заключение и возможные пути развития задачи:на основании данных результатов можно сделать следующие выводы: установлена структура нового капсульного полисахарида бактерии Klebsiellapneumonia 05, изучены продукты расщепления КПС Klebsiellapneumoniae 05 рекомбинантной хвостатой деполимеразой бактериофага K40.
Westphal O.,Jann K. Methods Carbohydr. Chem. 1965, 5, 83-91. Sawardeker J.S., Sloneker J.N., Jeanes A. Anal. Chem.1965, 37, 1602-1603. Leontein K., Lonngren J. Methods Carbohydr. Chem. 1993, 9, 87-89.
Vinogradov E, Frirdich E, MacLean LL, Perry MB, Petersen BO, Duus JO, Whitfield C. J. Biol. Chem. 277:2002, 25070-25081.
Керножицкая Александра Дмитриевна, 10 класс (Республика Беларусь, г.Солигорск) Научный руководитель:Королева Светлана Егоровна, учитель химии ГУО «Гимназия №2 г. Солигорска»
Постановка задачи:включение белков, лекарственных препаратов и биологически-активных веществ в полимерные сферы и капсулы представляет большой научный и практический интерес. Перспективным в этом отношении является гидроксид алюминия, характерной особенностью которого является образование мицеллярных структур в водных растворах. Целью работы является, получение микрокапсул на основе полиэлектролитных комплексов гидроксида алюминия и смеси гидроколлоидов.Для достижения поставленной цели решались следующие задачи: 1) исследовать возможность использования микрочастиц гидроксида алюминия в качестве матрицы для иммобилизации биологически активных веществ: аскорбиновой кислоты и бриллиантового зеленого; 2) осуществить инкапсулирование микрочастиц методом поэтапного нанесения полиэлектролитов: карбоксиметилцеллюлозы и желатина; 3) исследовать высвобождение биологически активных веществ в результате деструкции микрокапсул.
Методы, использованные автором:в качестве ядра микрокапсул используются микрочастицы гидроксида алюминия, полученные при взаимодействии растворов хлорида алюминия и гидроксида натрия. Включение БАВ (аскорбиновой кислоты и бриллиантового
зеленого) в микрочастицы ядра осуществляли методом адсорбции. Эффективность включения БАВ а определяли по разности концентраций активного компонента в исходном растворе и в супернатанте.Капсулирование микрочастиц осуществляли поэтапным нанесением слоев карбоксиметилцеллюлозы и желатина. В качестве модельного раствора для исследования деструкции микрокапсул использовали буферный раствор. Эффективность десорбции БАВ из микрокапсул определяли по разности концентрации активного компонента в исходном растворе и в супернатанте.
Основные результаты: проведенные эксперименты позволяют сделать выводы, что микрочастицы гидроксида алюминия показали высокую эффективность включения БАВ.
Заключение и возможные пути развития задачи: 1) поэтапное нанесение полиэлектролитов (КМЦ и желатин) на полимерные алюминий содержащие частицы позволяет получить смешанный комплекс, используемый для создания микрокапсул; 2) в зависимости от планируемой цели использования полиэлектролитных микрокапсул можно варьировать варианты включения активных компонентов и «дизайн» полиэлектролитной оболочки, что дает возможность их широкого применения.
Список основной использованной литературы
-
Н. Н. Пшенкина, Фармакология, 2011. -
Т. В. Пырков, И. В. Озеров, Е. Д. Балицкая, Р. Г. Ефремов, Биоорганическая химия, 2010. -
Е. В. Кудряшова, А. К. Гладилин, А. В. Левашов, Успехи биологической химии, 2002.
Структуры капсульных полисахаридов Klebsiellapneumoniae03 и Klebsiellapneumoniae 05 (Химия)
Касимова Анастасия Алексеевна, 11 класс, ГБОУ лицей № 1303 (Москва)
Научный руководитель:Шпирт Анна Михайловна, Институт Органической химии им. Н. Д. Зелинского (Москва)
Постановка задачи:Klebsiellapneumoniae вызывает целый ряд опасных заболеваний у детей и пациентов с ослабленной иммунной системой. Особенностями бактериальной культуры Klebsiellapneumoniaeявляются наличие капсульного полисахарида (КПС), участвующего в образовании пленки биофильма и являющегося защитой против фагоцитов, а так же высокая устойчивость к действию антибиотиков. В настоящее время актуальным становится вопрос поиска альтернативных способов борьбы с данными клиническими штаммами бактерий, включая фаготерапию, основанную на инфицировании бактериальных клеток бактериофагами и их последующем лизисе. Данная работа посвящена изучению строения капсульных полисахаридов и изучению продуктов их расщепления под действием фаговойдеполимеразы.
Методы, использованные автором:первой стадией работы было изучение строения капсульных полисахаридов Klebsiellapneumoniae 03 и Klebsiellapneumoniae 05. Капсульные полисахариды выделялись из сухих бактериальных клеток водно-фенольной экстракцией [1] по классической методике. Выход капсульного полисахарида Klebsiellapneumoniae 03 составил 27,5%,Klebsiellapneumoniae05 – 10,7%. Основным подходом к структурному анализу полисахаридов была
комбинация спектроскопии ЯМР на ядрах 1H и 13C, метода масс- спектрометрии и химических методов анализа.
Основные результаты: строение капсульного полисахарида Klebsiellapneumoniae 03 совпало с известным в литературе [4] и имеет следующую структуру:
→3)-β-D-Galf-(1→3)-α-D-Galp(1→
Далее был проведен метод сахарного анализа [2]: полный кислотный гидролиз полисахарида 2М CF3COOH при 120Сс последующей конверсией высвободившихся моносахаридов в ацетаты полиоловборгидридным восстановлением и ацетилированием при помощи раствора (CH3CO)2O в пиридине, подтвердивший наличие в полисахариде Klebsiellapneumoniae 05 галактозы (Gal) и маннозы (Man). Абсолютные конфигурации Man и Gal в полисахариде были подтверждены методом ГЖХ ацетилированных (S)-октил гликозидов [3].
Дополнительное подтверждение структуры Klebsiellapneumoniae05 было получено путем селективного расщепления полисахарида распадом по Смиту и метилированием.
Заключение и возможные пути развития задачи:на основании данных результатов можно сделать следующие выводы: установлена структура нового капсульного полисахарида бактерии Klebsiellapneumonia 05, изучены продукты расщепления КПС Klebsiellapneumoniae 05 рекомбинантной хвостатой деполимеразой бактериофага K40.
Список основной использованной литературы
Westphal O.,Jann K. Methods Carbohydr. Chem. 1965, 5, 83-91. Sawardeker J.S., Sloneker J.N., Jeanes A. Anal. Chem.1965, 37, 1602-1603. Leontein K., Lonngren J. Methods Carbohydr. Chem. 1993, 9, 87-89.
Vinogradov E, Frirdich E, MacLean LL, Perry MB, Petersen BO, Duus JO, Whitfield C. J. Biol. Chem. 277:2002, 25070-25081.
Получение полиэлектролитных микрокапсул
(Химия)
Керножицкая Александра Дмитриевна, 10 класс (Республика Беларусь, г.Солигорск) Научный руководитель:Королева Светлана Егоровна, учитель химии ГУО «Гимназия №2 г. Солигорска»
Постановка задачи:включение белков, лекарственных препаратов и биологически-активных веществ в полимерные сферы и капсулы представляет большой научный и практический интерес. Перспективным в этом отношении является гидроксид алюминия, характерной особенностью которого является образование мицеллярных структур в водных растворах. Целью работы является, получение микрокапсул на основе полиэлектролитных комплексов гидроксида алюминия и смеси гидроколлоидов.Для достижения поставленной цели решались следующие задачи: 1) исследовать возможность использования микрочастиц гидроксида алюминия в качестве матрицы для иммобилизации биологически активных веществ: аскорбиновой кислоты и бриллиантового зеленого; 2) осуществить инкапсулирование микрочастиц методом поэтапного нанесения полиэлектролитов: карбоксиметилцеллюлозы и желатина; 3) исследовать высвобождение биологически активных веществ в результате деструкции микрокапсул.
Методы, использованные автором:в качестве ядра микрокапсул используются микрочастицы гидроксида алюминия, полученные при взаимодействии растворов хлорида алюминия и гидроксида натрия. Включение БАВ (аскорбиновой кислоты и бриллиантового
зеленого) в микрочастицы ядра осуществляли методом адсорбции. Эффективность включения БАВ а определяли по разности концентраций активного компонента в исходном растворе и в супернатанте.Капсулирование микрочастиц осуществляли поэтапным нанесением слоев карбоксиметилцеллюлозы и желатина. В качестве модельного раствора для исследования деструкции микрокапсул использовали буферный раствор. Эффективность десорбции БАВ из микрокапсул определяли по разности концентрации активного компонента в исходном растворе и в супернатанте.
Основные результаты: проведенные эксперименты позволяют сделать выводы, что микрочастицы гидроксида алюминия показали высокую эффективность включения БАВ.
Заключение и возможные пути развития задачи: 1) поэтапное нанесение полиэлектролитов (КМЦ и желатин) на полимерные алюминий содержащие частицы позволяет получить смешанный комплекс, используемый для создания микрокапсул; 2) в зависимости от планируемой цели использования полиэлектролитных микрокапсул можно варьировать варианты включения активных компонентов и «дизайн» полиэлектролитной оболочки, что дает возможность их широкого применения.
Список основной использованной литературы
-
Балабушевич Н.Г., Г.Б. Сухоруков, Н.И. Ларионова. Включение белков в полиэлектролитные микрокапсулы издекстран сульфата, протамина и меламин формальдегида. Вестник моск. Ун-та. Сер. 2. Химия. 2002. Т. 43. № 6 -
Бородина Т.Н., Е.А. Марквичева и др. Использование полиэлектролитных микрокапсул на примере иммобилизации химотрипсина. http://bibliofond.ru/view.aspx?id=6770 -
Букреева Т.В., Б.В. Парахонский и др. Полиэлектролитные микрокапсулы с наночастицами серебра и золота в составе оболочки, полученные на ядрах карбоната кальция и полистирола. Российскиенанотехнологии | том 3 | №1–2 2008 | www.nanorf.ru.