Файл: РУКОВОДСТВО ПО ВНУТРЕННИМ БОЛЕЗНЯМ.doc

ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 07.09.2021

Просмотров: 1227

Скачиваний: 3

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.

Туберкулиновые пробы при наличии туберкулезного процесса становятся положительными через 2 нед — 1 мес после заражения.

На вскрытии свинок, погибших от туберкулеза, наблюдается картина генерализованного туберкулеза. Если при заражении в ма­териале были слабовирулентные микобактерии туберкулеза, то раз­витие процесса может ограничиться увеличением лимфатических узлов и единичными очажками в органах. Во время вскрытия делают мазки-отпечатки из органов для бактериоскопических исследований. Кроме того, кусочки лимфатических узлов, селезенки, печени и легких вырезают стерильным инструментом, помещают в стериль­ную ступку, гомогенизируют и засевают на плотные питательные среды. Посевы производят обязательно при отсутствии в органах макроскопически видимых изменений туберкулезного характера. Кроме того, в сомнительных случаях проводят гистологическое ис­следование тканей.

Для оценки распространенности и характера туберкулезного по­ражения у морских свинок предложено несколько схем учета мак­роскопических изменений в органах. Наибольшее распространение в нашей стране получили схемы, разработанные М. В. Триус и Ю. К. Вейсфейлером. По этим схемам специфические изменения в органах и лимфатических узлах оцениваются в зависимости от степени их выраженности плюсами, которые затем переводятся в цифровые показатели.

Микробиологическая диагностика L-трансформированных и фильтрующихся вариантов микобактерии. Все изложенное выше касается разнообразных методов выявления и идентификации клас­сических бактериальных форм возбудителя туберкулеза, не учиты­вая многообразные формы, возникшие в результате морфологиче­ской, тинкториальной и биологической изменчивости микобактерии.

В настоящее время традиционные методы выделения микобак­терии туберкулеза все меньше удовлетворяют нужды клиники, так как информативность микробиологических исследований явно недо­статочна. Применяемые методы малоэффективны и не позволяют составить представление об истинном состоянии микобактериальной популяции, вегетирующей в организме больного. Это объясняется, с одной стороны, недостаточной чувствительностью ряда методов, а с другой (в значительно большей степени), тем, что большинство таких методов не позволяет выявить возбудитель, находящийся в L-трансформированном состоянии.

L-трансформация — закономерный этап жизненного цикла ми­кобактерии. L-формы — это варианты бактерий с дефектом кле­точной стенки. Им придают особое значение в патологии человека и животных в связи с их способностью длительно существовать в макроорганизме и реверсировать в исходный вид с восстановлением свойственной ему вирулентности. Возможность попеременного или одновременного существования возбудителя в бактериальной и L-форме не только значительно затрудняет диагностику, но и влияет на развитие эпидемического процесса, создавая ложное впечатление об абациллировании источников и стерилизации очагов инфекции.


Таким образом, результаты бактериологических исследований, рассчитанных на выделение только бактериальных форм возбудителя, не могут служить основанием для исключения туберкулезной инфек­ции и должны дополняться данными, полученными специальными ме­тодами, которые направлены на выявление L-форм микобактерии. По­следние, как известно, являются закономерно существующей формой возбудителя при разных клинических проявлениях туберкулезного процесса, а также основной формой персистирования микобактерии.

Установлено, что L-трансформация микобактерии закономерна и при использовании специальных методов исследования она может быть выявлена. Из-за биологических особенностей L-форм, для ко­торых характерны резко измененная морфология бактериальных клеток и сниженный метаболизм, выделение их требует специальных методов культивирования и идентификации. L-формы могут обна­руживаться в виде гигантских зернистых тел, скоплений различных по размеру, гомогенности и оптической плотности шаров, гранул, сферопластоподобных образований, светопреломляющих тел и др. L-фсрмы и близкие к ним варианты возбудителя туберкулеза ха­рактеризуются повышенной хрупкостью и требуют применения осо­бых методов выделения и условий культивирования: щадящих ме­тодов обработки материала, элективных питательных сред, наличия нативных белков и осмотических стабилизаторов.

L-формы выделяются преимущественно у больных, недавно пре­кративших выделять бактериальные формы. У данного контингента больных с сохранившимися полостями деструкции и воспалитель­ными изменениями в легочной ткани выделение L-форм продолжа­ется еще в течение 3—4 мес и более после прекращения выделения бактериальных форм. Таким образом, целенаправленные поиски L-форм микобактерии показаны у больных, не выделявших или прекративших выделять бактериальные формы, но имеющих явные клинические признаки активного туберкулезного процесса. К таким признакам относится наличие участков деструкции легочной ткани, каверн с неравномерно широкими стенками и с эволютивными воспалительными изменениями в окружающей легочной ткани.

Поиски L-форм микобактерии туберкулеза должны проводиться повторно, многократно, так как выделение их носит периодический характер. В настоящее время разработаны и применяются разнооб­разные методы микробиологической диагностики L-трансформиро-ванных вариантов: бактериоскопические, культуральные, биологи­ческие, серологические, иммунофлюоресцентные, гистологические. Разработаны методические основы культурального выделения L-фсрм, сконструированы элективные питательные среды, предло­жены методы обработки материала, подобраны адекватные детер­генты и осмотические стабилизаторы, разработана схема посева и контролей. Предложены методы окраски L-форм в чистой культуре и патологическом материале; разработаны стандартные и ускоренные методы реверсии и др. Все это позволяет выделять L-формы из разнообразного патологического материала и устанавливать их ви­довую специфичность.


Основные принципы выделения и идентификации L-форм изло­жены в методических рекомендациях «Выделение L-форм микобак­терии туберкулеза из патологического материала» (М., 1984) и «Экспресс-индикация L-форм микобактерии туберкулеза методом иммунофлюоресценции» (Минск, 1981).

Исследованиями последних лет (А. Г. Хоменко, В. И. Голышев-ская) установлено, что при многих клинических проявлениях ту­беркулеза (особенно на фоне длительной комбинированной химио­терапии) в организме больных и экспериментальных животных об­наруживаются и ультрамелкие формы возбудителя, проходящие через бактериальные фильтры. Частота обнаружения этих микроорганизмов варьирует в зависимости от формы процесса и особенно от лекарст­венного режима.

Для выделения ультрамелких форм разработаны культуральный и биологический методы. Основной принцип этих методов заклю­чается в том, что исследованию подвергается материал, последова­тельно профильтрованный через мембранные фильтры с размером пор 0,65; 0,45 и 0,22 мкм. При этом исследуемый субстрат полностью очищается от бактериальных форм возбудителя, осколков микобак­терии и других вариантов изменчивости, в материале остаются только фильтрующиеся формы. Полученный фильтрат засевают на специальные питательные среды или вводят морской свинке. Ре­зультаты оценивают по данным бактериоскопии мазков, приготов­ленных из культивированного фильтрата или в результате реверсии возбудителя в бактериальную форму.



4.7. МОРФОЛОГИЯ КРОВИ ПРИ ТУБЕРКУЛЕЗЕ


Различные формы туберкулеза при разной реактивности организма вызывают значительные отклонения в лейкоцитарной формуле и ко­личестве лейкоцитов. Поданным Н. А. Шмелева (1959), число лейко­цитов у больных туберкулезом чаще (58%) достигает 6в109/л, при острых и тяжелых формах процесса — 12—15в109/л (35% случаев). Число лейкоцитов более 15в109/л встречается редко (3% больных), и в этих случаях надо искать другое заболевание или сочетание его с туберкулезом. По числу лейкоцитов можно судить о степени реакции отдельных частей кроветворной системы, поэтому при туберкулезе, как и при других заболеваниях, этот показатель не следует оценивать «оторванно» от лейкоцитарной формулы.

У взрослых туберкулезный процесс обычно вызывает увеличение числа палочкоядерных нейтрофилов. У больных с инфильтративны-ми и очаговыми формами без распада отмечается палочкоядерный сдвиг (7—10%). При наличии деструкции легочной ткани количество палочкоядерных нейтрофилов может доходить до 10—20%. Значи­тельное увеличение сдвига влево отмечается при обострении фиб-розно-кавернозного туберкулеза, а также при распространенных процессах с явлениями распада. В этих случаях процент палочко­ядерных может достигать 20—30, иногда появляются мета- и про-миелоциты (0,5—0,25%).

При туберкулезе изменяется и характер зернистости нейтрофи­лов. Вместо обычной тонкой может появиться грубая патологическая зернистость, которая имеет не меньшее значение, чем изменение ядра. Для определения числа нейтрофилов с патологической зерни­стостью мазки крови надо окрашивать в буферном растворе. В норме до 6% нейтрофилов имеет патологическую зернистость. Увеличение в периферической крови числа нейтрофилов с патологической зер­нистостью указывает на истощение пула миелоцитов нейтрофильного ряда и образование из них менее дифференцированных клеток костного мозга. У больных с тяжелыми формами туберкулеза почти все нейтрофилы (80—90%) могут содержать патологическую зер­нистость, которая при затихании патологического процесса обычно сохраняется дольше других изменений гемограммы, свидетельствуя о неполном восстановлении функции костного мозга.


Клинически выраженный туберкулез протекает с нормальным числом эозинофилов в крови. Небольшая эозинофилия при отсут­ствии сдвига влево в сочетании с лимфоцитозом сопровождает бла­гоприятно протекающие туберкулезные процессы. Гипоэозинофилия и особенно анэозинофилия отмечаются при тяжелом состоянии боль­ных.

Число узкоплазменных лимфоцитов повышается в период ранней туберкулезной интоксикации, в начальный период первичного ту­беркулеза. Высокое число лимфоцитов Н. А. Шмелев (1959) связы­вает с реактивностью раннего периода первичной инфекции. Уве­личение данного показателя в крови наблюдается и при затихании вспышки, инфильтративном и очаговом туберкулезе легких. При прогрессировании болезни он снижается вплоть до выраженной лим-фопении (10% и менее). Это закономерное явление, связанное с угнетением лимфопоэза.

Нормальное количество моноцитов отмечается у 66% больных туберкулезом, ниже нормы — у 22%. Стойкое увеличение показа­теля бывает при свежей гематогенной диссеминации, которая может иметь место во всех фазах туберкулезного воспаления. В этих случаях определяется от 10 до 20% моноцитов при повторных анализах крови. Резкое снижение количества моноцитов может быть при тяжелом течении первичного туберкулеза и казеозной пневмо­нии [Тимашева Е. Д., 1947]. Колебания в содержании этих клеток зависят и от других агентов, вызывающих раздражение ретикуло-гистиоцитарной системы. Некоторую роль в данном процессе может играть также непереносимость химиопрепаратов, вызывающих по­бочные реакции, которые протекают с увеличением количества аг-ранулоцитарных форм, в том числе моноцитов [Ковязина А. И., 1970].

При обычном исследовании крови базофилы встречаются у 0,5— 1,8% больных. Н. А. Шмелев и А. И. Ковязина (1971), А. К. Герман и Б. П. Ли (1970) отметили увеличение абсолютного числа базофилов у 30% больных с активной формой туберкулеза легких. Способность базофильных лейкоцитов изменять свои морфологические свойства при реакции антиген — антитело широко используется в серологи-


5—1213

ческом тесте Шелли для выявления антител к различным (в первую очередь лекарственным) антигенам [Тимашева Е. Д., Ковязина А. И., 1969, и др.].

Состав красной крови у большинства больных туберкулезом ос­тается в пределах нормы. Анемии отмечаются при первичной ка­зеозной пневмонии, милиарном туберкулезе [Alterescu R. et al., 1975; Payl J. et al., 1977] и некоторых формах диссеминированного туберкулеза [Тимашева Е. Д., 1963]. Число эритроцитов при этих формах падает до 1—2,5в1012/л, уровень гемоглобина — до 50 — 60 г/л.

В процессе химиотерапии могут возникать разнообразные изме­нения показателей крови, обусловленные токсическим и аллерги­ческим воздействием препаратов на организм больного. Наиболее часто наблюдается реакция эозинофилов. Их число возрастает при лечении антибиотиками (стрептомицин, виомицин и канамицин, реже циклосерин и рифампицин). Гиперэозинофилия иногда может служить предшественником агранулоцитарных реакций, проявляю­щихся уменьшением числа гранулоцитов, нарастающим падением числа лейкоцитов, относительным повышением числа лимфоцитов и моноцитов и появлением в гемограмме плазматических и рети-кулогистиоцитарных элементов. При использовании рифампицина, протионамида, этионамида и ПАСК наблюдается повышение про­цента моноцитов (до 10—18). При применении изониазида, ПАСК, стрептомицина, циклосерина и рифампицина описаны тяжелые ос­ложнения в виде гемолитических и апластических анемий [Аркавина Э. А., Берлинер А. А., 1971]. Гемолитические анемии могут разви­ваться при повторном и интермиттирующем приемах рифампицина, протекать с острой почечной и печеночной недостаточностью [Nastase М. et al., 1975; Miyachi S. et al., 1982]. Кроме того, из гематологических осложнений при лечении рифампицином и этам-бутолом описаны тромбоцитопении [Calietti F. et al., 1978; Rabinovitz M. et al., 1982].


Лейкемоидные реакции, связанные с туберкулезной инфекцией, встречаются редко и наблюдаются преимущественно при диссеми-нированных формах в фазе острой диссеминации, протекающей с поражением костного мозга, селезенки и печени, лимфатических узлов, брюшной полости, и при остром туберкулезном сепсисе. В нашей стране они описаны Е. М. Тареевым (1948), Е. Д. Тимашевой (1963), за рубежом — Н. Reinwein. W. Rosing (1938), J. Tripatti и соавт. (1984).

Различают два типа реакций: гиперпластические (собственно лейкемоидные) и гипопластические. При первом типе число лейко­цитов может достигать 20—30в109/л. Наряду с моноцитозом выяв­ляются лимфопения, резкий сдвиг влево нейтрофилов с появлением единичных миелоцитов и промиелоцитов. Со стороны красной крови отмечается гипохромная анемия с уменьшением числа эритроцитов до 2—2,5в1012/л. Лейкемоидные реакции гиперпластического типа большей частью преходящи, иногда наблюдается цикличность в их течении, которую можно связать с волнами гематогенной диссеми-

нации. Гипопластический тип реакции наблюдается преимущест­венно при остром туберкулезном сепсисе, но иногда может возникать и у больных с диссеминированной формой, милиарным туберкулезом [Cordier J. Е. et al., 1978]. В этих случаях для гемограммы харак­терна стойко выраженная тромбоцитопения 20,0—30,0»109> лей­копения 1—2в109/л с нейтропенией и относительным лимфоцитозом, иногда граничащие с агранулоцитозом, в красной крови — резко выраженная анемия: эритроциты до 1,5—2»1012/л, количество ге­моглобина падает до 40,0—50,0—60,0 г/л.

С целью уточнения характера реакции крови и для ранней диагностики милиарного туберкулеза (протекающего с поражением гемопоэтической системы) рекомендуется производить цитологиче­ское исследование костного мозга, лимфатических узлов. Это дает возможность в случаях туберкулезной этиологии процесса обнару­жить специфические элементы туберкулезной гранулемы и мико­бактерии туберкулеза.



4.8. ИНСТРУМЕНТАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ


Инструментальные методы исследования находят все большее распространение в диагностике и дифференциальной диагностике туберкулеза. Среди них эндоскопические исследования бронхов за­нимают ведущее место, так как в большинстве случаев они соче­таются с комплексом дополнительных микрохирургических вмеша­тельств биопсийного характера. Современная бронхология распола­гает большим числом разнообразных эндобронхиальных диагности­ческих манипуляций для своевременного распознавания различных патологических процессов как в бронхах, так и непосредственно в легочной ткани. С помощью этих методов можно достаточно эф­фективно оценивать визуально изменения как в крупных, так и в более мелких бронхах, а также получить биопсийный материал для морфологического и бактериологического исследования по существу из любого участка терминальных бронхов или легкого.

Успех инструментальной диагностики заболеваний органов ды­хания и средостения в каждом конкретном случае зависит от пра­вильного выбора метода исследования. При этом необходимо по­мнить, что инструментальные методы диагностики не всегда явля­ются безобидными и нетравматичными для больного, поэтому всегда следует руководствоваться принципом — от простого диагностиче­ского вмешательства к сложному.

Бронхоскопия. Этот метод позволяет осмотреть внутреннюю по­верхность бронхов, изучить состояние слизистых оболочек крупных бронхов, определить в них патологические изменения. Успешное проведение брохоскопии в значительной степени зависит от того, насколько хорошо проведено обезболивание. Выбор последнего обус­ловливается общим состоянием больного, наличием сопутствующих заболеваний, характером и продолжительность эндоскопического вмешательства, арсеналом необходимой аппаратуры и инструмен­тария, опытом эндоскописта и анестезиолога.