ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 03.11.2019
Просмотров: 3832
Скачиваний: 1
Ig M является маркером острой стадии, он определяется уже через
пять дней после начала заболевания.
В течение 10 дней после появления симптомов заболевания
появляются Ig А.
В это же время или с небольшой задержкой - 2-3 недели могут быть
определены Ig G.
Прогрессирование заболевания, переход в хроническую стадию
характеризуется появлением Ig A, Ig G- антител.
Для интерпретации результатов диагностики хламидиоза существует понятие
титров - это наименьшие разведения, в которых тест-системы определяют
антитела против хламидий. Если в первом исследовании титры антител меньше
пограничных, исследование повторяют через 10-14 дней, когда уже можно судить
о наличии или отсутствии хламидийной
. Пограничные титры:
Ig M - 1:50,
Ig А - 1:50,
Ig G - 1:100.
При обострении заболевания происходит скачкообразный подъем титров Ig G
изменения титра Ig А идут параллельно с титром Ig M однако на более низком
уровне. Исследуя титры антител Ig G, Ig A, Ig M можно оценивать эффективность
проведенного лечения в отдаленном периоде (через 1-1,5 месяца).
58. гонорея сифилис
Лабораторная диагностика
гонореи в нашей стране базируется на двух
основных методах исследования: бактериоскопическом и бактериологическом.
Выявление гонококка в препаратах, окрашенных метиленовым синим и по методу
Грама (
бактериоскопия
), возможно лишь при наличии в патологическом
отделяемом типичных форм возбудителя и при правильной окраске его. Однако в
препаратах нередко встречаются гонококки с измененными морфологическими и
тинкториальными свойствами. Кроме того, при хронической и вялотекущей
формах гонореи диагностика осложняется либо обилием сопутствующей
микрофлоры, затрудняющей поиск гонококка, либо малым количеством
возбудителя гонореи в патологическом материале.
Решением этой проблемы является широкое внедрение
бактериологического
метода
обследования, который позволяет получить дополнительные данные об
изучаемом микроорганизме. Выросшую культуру исследуют макроскопически и
микроскопически: изучают форму колоний, морфологические и тинкториальные
свойства микроорганизма. В сомнительных случаях для дифференциации
гонококка от других нейссерий и грамположительных кокков определяют
ферментативные свойства выделенной культуры (оксидазные, каталазные,
сахаролитические). Кроме посева, может использоваться метод Полимеразной
цепной реакции (ПЦР), представляющий собой ДНК-диагностику возбудителя
гонореи
Обнаружение
T.pallidum
в
материале из очагов
поражения,лимфатич
еских
узлов,амниотической
жидкости,ликвора
Обнаружение
типичных
форм
трепонемы
и (РИФ-Тр)
Наличие
флюоресцирующи
х трепонем
ПЦР
Обнаружение
специфической
ДНК T.pallidum
в сыворотке крови
антител
против
фосфолипидов
тканей,разрушенных
сифилитической
инфекцией и липидов
мембраны Т.pallidum
Макроскопический
тест
(Rapid
Plasma
Reagins,
RPR)
Положительный
(позитивный)резу
льтат
Микроскопический
тест
VDRL
(Venereal
Disease
Research
laboratory)
Реакция связывания
комплимента
(
в сыворотки крови
антител
против
антигенов
бледной
трепонемы
РИФ (FTA)
Положительный
(позитивный)
результат
РПГА (TPHA)
ИФА (ELISA)
21, 59. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ОТДЕЛЯЕМОГО
ВЕРХНИХ
ДЫХАТЕЛЬНЫХ
ПУТЕЙ
В отделяемом зева, трахеи, бронхов, носа в норме обнаруживаются следующие
микроорганизмы: − Staphylococcus epidermidis − Streptococcus viridians −
Staphylococcus aureus − Haemophilus influenza − Klebsiella pneumonia − Neisseria
spp.
−
Corynebacterium
spp.
−
Lactobacillus
−
Candidaspp
и
некоторые
другие.
Носовые пазухи в норме стерильны. У носителей чащеобнаруживаются S. aureus,
S. pneumonia, S. pyogenes. Возбудителями гнойно-воспалительных процессов
дыхательных путей чаще всего являются условно-патогенные микроорганизмы
следующих родов и видов: Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes,
Staphylococcus aureus, Haemophilus influenzae, Pseudomonas aeruginosa, Neisseria,
Corynebacterium, Klebsiella, Citrobacter, Proteus, Candida, Actinomyces и др.
При исследовании могут быть выделены Mycobacterium tuberculosis и другие
микобактерии
–
Mycoplasma,
Bacteroides.
При инфекциях дыхательных путей почти всегда в исследуемом материале
обнаруживают представителей нескольких видов микроорганизмов. Заболевания
верхних дыхательных путей могут вызывать такие вирусы, как риновирусы,
реовирусы, вирусы простого герпеса, РС-вирусы, коронавирусы, аденовирусы,
вирусы
гриппа
(А
и
В)
и
парагриппа.
Очень часто причиной ларингобронхитов, особенно во вновь организованных
коллективах, является Mycoplasma pneumoniae. Бактериальную ангину чаще
вызывает B- гемолитический стрептококки группы А: Streptococcus pyogenes.
Ангина Симановского-Венсана (язвенно-пленчатая, некротическая ангина)
вызывается симбиозом Fusobacterium spp. и Treponema vincentii), основным
методомее диагностики является микроскопия мазков из зева и десен при окраске
карболовым фуксином (обнаруживают спирохеты и фузобактерии и большое
количество нейтрофилов.
60. дифтерия
Лабораторная диагностика.
В диагностике дифтерии важное значение имеет
микроскопический метод. Мазки из налетов зева и носа окрашивают метиленовым
синим, по Нейссеру и Граму. Одновременно материал засевают на элективную и
дифференциально–диагностическую
среды.
Выделив
культуру,
ее
идентифицируют по культурально–биохимическим признакам. Затем определяют
токсигенность, испытывая культуру на морских свинках или в реакции
преципитации на пластинчатом фосфатно–пептонном агаре, подсевая ее
бляшками к расположенной вдоль чашки полоске фильтровальной бумаги,
смоченной антидифтерийной сывороткой.
Токсигенные штаммы коринебактерии дифтерии при внутрикожном введении
вызывают местный некроз, а при подкожном – гибель животных с экссудацией в
серозные полости и резкое увеличение надпочечников. Положительная реакция
преципитации в агаре проявляется образованием на границе взаимодействия
антитоксина и продуцируемого экзотоксина равномерно сливающихся полос
преципитации или «стрел–усиков».
Экспресс–диагностика.
Если прямой микроскопией мазков, окрашенных
обычными способами, выявить коринебактерии дифтерии в материале не удается,
то его берут тампоном со свернутой сывороткой (метод Фольгера). Тампон
помещают в термостат для подращивания культуры и через 3–5 ч им делают
мазки.
Иммунитет.
Наиболее восприимчивы дети 1–4 лет. Вырабатывается не очень
прочный антитоксический иммунитет, возможны повторные заболевания
дифтерией. Невосприимчивость зависит главным образом от содержания в крови
антитоксина и АТ (опсонины, преципитины, комплементсвязывающие). Уровень
антитоксического иммунитета устанавливают, определяя в крови антитела
в
РНГА с эритроцитарным диагностикумом
(эритроциты нагружены
дифтерийным анатоксином). Титр 1:20 и выше ? иммунность обследуемого.
Такжеже применяется
реакция Шика
(внутрикожно вводят дифтерийный
токсин, у неимунных людей – местная воспалительная реакция, при наличии
антитоксина реакции нет).
КОРИНЕБАКТЕРИЙ ДИФТЕРИИ С.diphtheriae.
Морфология.
Прямые или слегка изогнутые палочки. В препаратах
располагаются под углом друг к другу в виде букв L, V или китайских иероглифов.
Зерна волютина (на концах палочек) выявляются при окраске синькой Леффлера
или по методу Нейссера. Факультативные анаэробы, хорошо размножаются при
свободном доступе кислорода. К питательным средам требовательны: не
способны утилизировать азот из аммонийных соединений, требуют наличия почти
всех АК, солей Mg, Zn, Cu, Fe; необходимы углеводы ? используются среды,
полученные на основе ферментативного расщепления белка (казеина, дрожжей) с
добавлением крови или сыворотки. На поверхностях плотных сред дифтерийные
палочки образуют темно-серые или черные колонии (биовары гравис, способны
расщеплять крахмал, или миттис). Рост на скошенном сывороточном агаре
сравнивают с шагреневой кожей, колонии не сливаются.
Расщепляют глюкозу и другие моно- и дисахариды с образованием кислоты без
газа, восстанавливают нитраты, расщепляют цистеин.
Лизируются специфичны для отдельных видов вирулентными фагами, что
позволяет устанавливать фаговары исследуемых культур.
61 коклюш и паракоклюш