ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 27.11.2019
Просмотров: 4032
Скачиваний: 98
АВ11 и АВ12 играют ключевую роль в АБК-индуциро-
ванном сигнальном пути [Merlot, Giraudat, 1997; Gosti et al.,
1999]. Наблюдались рН-зависимая и М§
2+
-
зависимая акти-
вация ABU [Leube et al., 1998].
У протеинфосфатаз МР2С основной мишенью является
МАРККК, активируемая при воздействии различных стрес-
соров. Такая специфика становится объяснимой, если
учесть, что у некоторых протеинфосфатаз обнаружены ме-
ста связывания с соответствующими им протеинкиназами
[Williams et al., 1997; Li J. et al., 1999] -
участниками сигналь-
ных систем клеток. Это позволяет обеспечивать существо-
вание комплекса протеинкиназа-протеинфосфатаза и свое-
временно и эффективно блокировать преобразование и пе-
редачу в геном сигнального импульса. Принцип работы этого
механизма достаточно прост: накопление определенной
протеинкиназы - интермедиата сигнальной цепи - активи-
рует фосфопротеин-фосфатазу и приводит к дефосфорили-
рованию (инактивации) протеинкиназы. Например, актива-
ция некоторых протеинкиназ может привести к фосфори-
лированию и активации соответствующих протеинфосфа-
таз. При исследовании функционирования протеинфосфа-
таз часто используют специфические ингибиторы, напри-
мер окадаевую кислоту и каликулин [Li et al., 1994b].
ФАКТОРЫ РЕГУЛЯЦИИ ТРАНСКРИПЦИИ
Синтез матричных РНК катализируется ДНК-зависи-
мыми РНК-полимеразами'- одними из наиболее крупных
белковых комплексов, состоящих из двух больших и 5-13
малых субъединиц, что определяется сложностью и важ-
ностью их функций. Эти субъединицы имеют консерва-
тивные последовательности аминокислот, в большей или
меньшей степени общие для животных и растений, iАктив-
ность РНК-полимеразы и узнавание транскрибируемых
генов регулируются с помощью нескольких типов белков.
Наибольшее внимание привлекают факторы регуляции
транскрипции.' Эти белки способны взаимодействовать с
другими белками, в том числе с идентичными, изменять
конформацию при фосфорилировании нескольких входя-
щих в их состав аминокислот,[узнавать регуляторные пос-
ледовательности нуклеотидов в промоторных участках ге-
нов, что приводит к изменению интенсивности их экспрес-
сии.: Именно факторы регуляции транскрипции направля-
ют РНК-полимеразу на точку инициации транскрипции
соответствующего гена (или совокупности генов), не
участвуя непосредственно в каталитическом акте син-
теза мРНК.
У животных организмов определены особенности
структуры более 1 тысячи факторов регуляции транс-
крипции. Клонирование их генов способствовало получе-
нию информации, позволившей осуществить классифика-
цию этих белков.
Все факторы регуляции транскрипции содержат три ос-
новных домена. Наиболее консервативным является ДНК-
связывающий домен. Последовательность аминокислот в
нем определяет узнавание определенных последовательно-
стей нуклеотидов в промоторах генов.
В зависимости от гомологии первичной и вторичной
структур ДНК-связывающего домена факторы регуляции
транскрипции подразделяются на четыре суперкласса: 1) с
доменами, обогащенными основными аминокислотами; 2) с
ДНК-связывающими доменами, координирующими ионы
цинка, - "цинковыми пальцами"; 3) с доменами типа спи-
раль-поворот-спираль; 4) с доменами типа |3-скэффолд, об-
разующими контакты с малой бороздкой ДНК [Патрушев,
2000]. Каждый суперкласс подразделяется на классы, се-
мейства и подсемейства. В суперклассе 1 обращают на себя
внимание факторы регуляции транскрипции с доменами ти-
па "лейциновая застежка-молния", представляющими со-
бой ос-спирали, у которых каждая седьмая аминокислота яв-
ляется лейцином, выступающим с одной стороны спирали.
Гидрофобное взаимодействие остатков лейцина одной мо-
лекулы с аналогичной спиралью другой молекулы обеспе-
чивает димеризацию (по аналогии с застежкой-молнией)
факторов регуляции транскрипции, необходимую для взаи-
модействия с ДНК.
В суперклассе 2 "цинковые пальцы" представляют со-
бой последовательности аминокислот, содержащие четыре
остатка цистеина, которые оказывают координирующее
действие на ион цинка. "Цинковые пальцы" взаимодейству-
ют с большой бороздкой ДНК. В другом классе этого су-
перкласса структура "цинковых пальцев" обеспечивается
двумя остатками цистеина и двумя остатками гистидина
(рис. 5), еще в одном классе координация двух ионов цинка
в одном "пальце" осуществляется шестью остатками цисте-
ина. Вершины "цинковых пальцев" контактируют с боль-
шой бороздкой ДНК.
Исследование структуры факторов регуляции транс-
крипции у растений позволило установить гомологию с бел-
ками этого типа, характерными для животных объектов.
Типичные факторы регуляции транскрипции содержат сле-
дующие три основных структурных элемента: ДНК-связы-
вающий, олигомеризационный и регуляторный домены [Liu
et al.,
1999]. Мономерные формы транскрипционных факто-
ров неактивны, в отличие от димерных (олигомерных). Об-
разованию олигомерных форм предшествует фосфорили-
рование мономерных форм в цитозоле, затем происходит
их ассоциация и после этого доставка в ядро или с помощью
Рис. 5. Структура "цинкового пальца"
фактора
регуляции
транскрипции
[Hardie, 1999]
Г - остаток гистидина; Ц-S - остаток
цистеина
специальных транспортных белков
или благодаря взаимодействию с
рецепторными белками в порах
ядерной мембраны, после чего они
переносятся в ядро и взаимодейст-
вуют с промоторными участками
соответствующих генов. 'Факторы регуляции транскрипции
кодируются мультигенными семействами, и их синтез может
индуцироваться патогенами и элиситорами, а активность
изменяться в результате посттрансляционной модификации
(главным
образом,
фосфо-рилирования
или
дефосфорилирования).
В настоящее время создана все более расширяющаяся база
данных о структуре различных факторов регуляции
транскрипции и их генов у растений [Wingender et al., 2000].
Показано, что специфичность связывания с ДНК определяется
аминокислотными
последовательностями
стержневой
и
петлевой зон в уже упоминавшихся лейциновых "застежках-
молниях", представляющих собой одну из наиболее
многочисленных и консервативных групп эукариотиче-ских
факторов регуляции транскрипции [Niu et al., 1999]. Часто
факторы регуляции транскрипции классифицируются именно по
структуре ДНК-связывающих доменов, которые могут включать
спиральные последовательности аминокислот, "цинковые
пальцы" - участки с двумя цистеино-выми и двумя
гистидиновыми остатками или со многими ци-стеиновыми
остатками и т.д. У растений от одного до четырех "цинковых
пальцев" найдены в ДНК-связывающих доменах факторов
регуляции транскрипции [Takatsuji, 1999].
Механизм взаимодействия факторов регуляции транс-
крипции с ДНК-зависимыми РНК-полимеразами и промо-
торными участками генов остается одной из ключевых и все
еще недостаточно изученных проблем функционирования генома
клеток.
Особенно
скудна
информация,
касающаяся
растительных объектов.
Мутации в генах, кодирующих факторы регуляции
транскрипции у животных, могут привести к определенным
заболеваниям [Latchman, 1997].
У растений описаны представители семейства генов, ко-
дирующих факторы регуляции транскрипции [Aso et al.,
1999] с лейциновыми "застежками-молниями". Было пока-
зано, что транскрипционные факторы этого типа отвечают
за салицилатиндуцированное образование защитных анти-
патогенных белков и что мутации в указанных генах
приводят к потере способности синтезировать эти белки
[Zhang et al., 1999].
ПРОМОТОРЫ ГЕНОВ БЕЛКОВ
СИГНАЛЬНЫХ СИСТЕМ И ЗАЩИТНЫХ БЕЛКОВ
В настоящее время интенсивно исследуется структура
промоторных участков генов, отвечающих за приобретение
иммунитета к различным патогенам. Уже давно привлекает
внимание факт практически одновременного синтеза цело-
го ряда патогениндуцируемых белков: Это может быть вы-
звано как дивергенцией сигнальных путей в одной сигналь-
ной системе, что обусловливает активацию нескольких ти-
пов факторов регуляции транскрипции, так и "включени-
ем" тем или иным элиситором нескольких сигнальных сис-
тем, которые, функционируя параллельно, активируют не-
сколько типов факторов регуляции транскрипции и, вслед-
ствие этого, вызывают экспрессию нескольких видов за-
щитных белков. Не исключена также возможность того,
что промоторы генов нескольких индивидуальных белков
имеют одну и ту же структуру регуляторных элементов, что
приводит к их одновременной экспрессии даже в случае сиг-
нальной активации одного представителя факторов регуля-
ции транскрипции.
1
Последний вариант имеет место при действии на расте-
ния стрессового фитогормона этилена, когда фактор регу-
ляции транскрипции взаимодействует с GCC-боксом промо-
торных участков нескольких этилениндуцируемых генов,
что обеспечивает более или менее одновременное образо-
вание целой группы этилениндуцируемых белков [Thara et
al.,
1999]. Такой принцип пакетного синтеза защитных бел-
ков реализуется при ответе клеток на различные стрессоры
или элиситоры (к вторичным элиситорам можно отнести и
стрессовые фитогормоны). Например, при действии повы-
шенных температур индуцируется транскрипция группы ге-
нов, содержащих в промоторных участках общий регуля-
торный элемент HSE (heat shock element), отсутствующий у
других генов [Latchman, 1997]. Эта закономерность была
подтверждена с помощью приема создания гибридных ге-
нов с промотором гена теплового шока, состыкованного с
другим геном, обычно не изменяющим интенсивности экс-
прессии при действии повышенных температур. В случае
же трансгенных растений начиналась его экспрессия.
В эукариотических клетках обнаружены также промоторные
участки со сходными последовательностями нуклеотидов у
различных генов, индуцируемых одним и тем же интерме-
диатом (вторичным посредником) сигнальных систем, на-
пример циклическим АМФ. В последнем случае сигнальная
последовательность нуклеотидов промоторного участка
имеет обозначение CRE (cyclic AMP response element).
У арабидопсиса обнаружена глюкокортикоидная систе-
ма активации факторов регуляции транскрипции, включе-
ние которой приводило к экспрессии патогениндуцируе-
мых защитных генов [Н. Kang et al., 1999]. Распространен-
ными последовательностями нуклеотидов в G-боксе про-
моторов были CCACGTGG, а в С-боксе - TGACGTCA [Niu
et al., 1999].
Вирус табачной мозаики и салициловая кислота вызы-
вали у растений табака индукцию двух генов факторов ре-
гуляции транскрипции класса WRKY, узнающих в промо-
торных участках защитных генов определенную последова-
тельность нуклеотидов - TTGAC (W-box). Активация этих
факторов регуляции транскрипции осуществлялась с помо-
щью их фосфорилирования протеинкиназами [Chen, Chen,
2000]. Все белки класса WRKY, в отличие от других классов
транскрипционных факторов (таких, как bZIP и myb), име-
ют консервативный домен, содержащий гептамерный пеп-
тид WRKYGQK [Rushton, Somssich, 1998].
(
Один из доменов фактора регуляции транскрипции, от-
вечающего за преобразование жасмонатного сигнала, акти-
вирует регуляторный участок промотора нескольких генов,
кодирующих жасмонат- и элиситор-индуцируемые белки, в
частности стриктозидин-синтазу [Van der Fits, Memelink,
2001]. Оказалось, что активирующим действием обладает
N-
концевой кислый домен фактора регуляции транскрип-
ции, а обогащенный остатками серина С-концевой домен -I
ингибирующим.
Показано, что промотор гена фенилаланин-аммиак-лиа-
зы (важнейшего стартового фермента разветвленного ме-
таболического процесса синтеза соединений, играющих за-
щитную роль, - салицилата, фенольных кислот, фенилпро-
паноидных фитоалексинов и лигнина) содержит по две ко-
пии обогащенных АС-повторами участков [Gray-Mitsumune
ctal., 1999].
При изучении промотора гена другого фермента синте-
ia
фитоалексинов - халконсинтазы, у культуры клеток бо-
бов, табака и риса было обнаружено, что в активации про-
мотора принимают участие G-бокс (CACGTG) в области от
-
74 до -69 пар нуклеотидов и Н-боксы (ССТАСС) в области
от -61 до -56 и от -126 до -121 пар нуклеотидов [Arias et al.,
1993].
В других опытах было выяснено, что при действии эли-
ситоров экспрессия гена халконсинтазы у растений гороха
зависит от области промотора от -242 до -182 пар нуклео-
тидов, в которой два участка содержат идентичные AT по-
следовательности -ТААААТАСТ-, причем одна из них,
располагающаяся в области от -242 до -226, была необхо-
дима для проявления максимальной активности гена [Seki et
al., 1996].
Промотор гена стриктозидин-синтазы, одного из клю-
чевых элиситориндуцируемых ферментов синтеза терпе-
ноидных фитоалексинов, имеет активируемую факторами
регуляции транскрипции область от -339 до -145 пар нук-
леотидов [Memelink et al., 1999]. G-бокс, расположенный
вблизи -105 пары нуклеотидов, не влиял на активность
промотора.
При исследовании активности гена |3-1,3-глюканазы у
растений табака было обнаружено, что она зависит от об-
ласти промотора от -250 до -217 пар нуклеотидов, содержа-
щей последовательность -GGCGGC-, характерную для про-
моторов генов, кодирующих патогениндуцируемые щелоч-
ные белки [Alonso et al., 1995].
Так называемый PR-бокс промоторных участков мно-
гих патогениндуцируемых белков содержит последователь-
ность (5'-AGCCGCC-3'), с которой связываются соответст-
вующие факторы регуляции транскрипции, что приводит к
экспрессии генов этих белков, в частности эндохитиназ и
Р-1,3-глюканаз у растений томатов [Jia, Martin, 1999].
Многие гены патогениндуцируемых белков содержат в
промоторах так называемые ocs-элементы, с которыми
взаимодействуют факторы регуляции транскрипции, имею-
щие в своей структуре лейциновые застежки-молнии.
У растений арабидопсиса факторы регуляции транскрип-
ции, ответственные за преобразование этиленового сигна-
ла, связываются и с GCC-боксом и с ocs-элементами промо-
торов, что приводит к экспрессии целого ряда защитных
белков [Buttner, Singh, 1997].
Исследование трансгенных растений табака с промото-
ром щелочной хитиназы и репортерным геном GUS позво-
лило установить, что активируемая этиленовым сигналом
область промотора находится между -503 и -358 парами ну-
клеотидов, где имеются две копии GCC-бокса (5'-
TAAGAGCCGCC-3') [Shinshi et al., 19
95], который характе-
рен для промоторов многих этилениндуцируемых белков.
Дальнейший анализ показал, что ответственный за реак-
цию на этилен участок промотора с двумя копиями GCC-бо-
кса расположен между -480 и —410 парами нуклеотидов.
При исследовании реакции растений табака на обработ-
ку этиленом и инфицирование вирусом мозаики было обна-
ружено, что активность промотора гена (3-1,3-глюканазы
зависит от области, расположенной между -1452 и -1193 па-
рами нуклеотидов, где имеются две копии гептануклеотида
5-AGCCGCC-3' [Vogeli-Lange et al.,
1994]. Найдены и допол-
нительные области, существенные для регуляции актив-
ности промотора.
Рассмотренные выше элиситоры, рецепторы элисито-
ров, G-белки, протеинкиназы, протеинфосфатазы, факторы
регуляции транскрипции, соответствующие им промотор-
ные участки генов принимают участие в функционировании
целого ряда сигнальных систем клеток, от которых зависит
их реакция на сигналы различной природы и интенсивно-
сти: аденилатциклазной, МАР-киназной, фосфатидатной,
кальциевой, липоксигеназной, НАДФН-оксидазной, NO-
синтазной и протонной.
АДЕНИЛАТЦИКЛАЗНАЯ СИГНАЛЬНАЯ СИСТЕМА
Эта сигнальная система получила свое название по впер-
вые охарактеризованному Сазерлендом [Sutherland, 1962]
ферменту аденилатциклазе, катализирующей образование
основного сигнального интермедиата этой системы - цик-
лического аденозинмонофосфата (цАМФ). Схема адени-
латциклазной системы такова: внешний химический сигнал,
например гормон или элиситор, взаимодействует с белком-
рецептором плазмалеммы, что приводит к активации G-
белка (связывания им ГТФ) и передаче сигнального
импульса на фермент аденилатциклазу (АЦ), который ка-
тализирует синтез цАМФ из АТФ (рис. 6).
В аденилатциклазной системе различают Gs-белки, сти-
мулирующие аденилатциклазу, и (5,-белки, тормозящие ак-
тивность фермента. Различия между этими двумя видами
белков определяются в основном особенностями ос-субъ-
единиц, а не (3- и у-субъединиц. Молекулярные массы oc
s
-
субъединиц G-белка равны 41-46 кДа, а
г
субъединиц -
40-
41 кДа, (3,- и Р
2
-
субъединиц - 36-35 кДа, у-субъединиц -8-
10 кДа. Связывание G-белками ГТФ и его гидролиз до ГДФ и
неорганического ортофосфата обеспечивают обратимость
процессов активации аденилатциклазы [Gilman, 1987].
Аденилатциклаза является мономерным интегральным
белком плазматической мембраны и поэтому с трудом под-
дается экстракции и переходу в растворимую форму. Моле-
кулярная масса аденилатциклазы клеток животных равна
120-
155 кДа; имеются также растворимые формы адени-
латциклазы 50-70 кДа, не чувствительные к кальмодулину
и G-белкам [Ichikawa et al., 1997]. У растений молекулярная
масса аденилатциклазы составляет 84 кДа. Кривая зависи-
мости активности аденилатциклазы от рН имела одновер-
шинный характер, причем пик активности для этого фер-