Файл: Практический навык.pdf

ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 30.10.2019

Просмотров: 4043

Скачиваний: 33

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
background image

генциановый  фиолетовый,  который  подавляет  рост  гнилостной 
микрофлоры.  В  среды  также  добавляют  сульфит  натрия  в 

качестве  стимулятора  роста  чумной  палочки,  и  орошают 
антифаговой  сывороткой  для  подавления  размножения  чумного 

бактериофага.  На плотных средах бактерии  образуют R-колонии. 
Причем,  если изучать структуру колоний с помощью микроскопа, 

можно  выявить  три  стадии  роста  культуры.  После  10-12  часов 

культивирования под микроскопом видны «молодые» бесцветные 
микроколонии  с  неровными  краями  («битое  стекло»).  Через  18- 

24  часа  микроколонии  сливаются,  формируя  нежные  плоские 
колонии  с  фестончатыми  краями  и  приподнятым  желтоватым 

центром  («кружевные  платочки»). 

А  после  40-48  часов 

культивирования  вырастают  «взрослые»  колонии  -  крупные,  с 
бурым зернистым центром и неровными краями («ромашки»).

Простым  и  надежным  методом диагностики  чумы  являются 

серологические  реакции.  Антигены  чумной  палочки  можно 

выявлять 

в 

РИГА 

с 

использованием 

эритроцитарного 

диагностикума 

(эритроциты 

барана, 

нагруженные 

моноклональными 

антителами 

к 

капсульному 

антигену 

возбудителя),  ИФА  и  др.  С  целью  обнаружения  антигенов 
Y pestis  в  тканях  погибших  животных  проводят  реакцию 

термопреципитации  по  Асколи. 

Антитела  в  сыворотке  крови 

больных 

выявляют 

с 

применением 

реакций 

непрямой 

гемагглютинации  (РИГА),  ИФА  и  др.  Для  ретроспективной 
диагностики  ставиться  также  кожно-аллергическая  проба  с 

пестином (белком, выделенным из культуры возбудителя).

Для 

проведения 

ускоренной 

диагностики 

можно 

использовать 

чумной  бактериофаг. 

Его  высокая  специфичность 

и  вирулентность  для  чумной  палочки  делает  его  полезным  при 

проведении  идентификации  чумы  с  применением  метода  слоев 
по  Грациа,  метода  стекающей  капли.  Можно  также  выявлять 

увеличение  титра  бактериофага  в  исследуемом  материале 

(свидетельствует о положительном результате).

Для  микробиологической  диагностики 

сибирской  язвы 

в 

качестве  патологического  материала  используют  содержимое 
пустулы,  гнойное  отделяемое  из  карбункула,  кровь,  мочу, 

мокроту,  испражнения  и  рвотные  массы.  При  постмортальнои 

диагностике 

исследуют 

кусочки 

органов. 

Кроме

78

■■и

1

. и'риоскопического 

метода, 

предполагающего 

выявление 

'-'И

1

И

1111

  и  мазке  (см.  выше),  используются  бактериологический  и 

■'  |И

11

1

 ический  методы  диагностики.  Бактерии  выращивают  на

•  I (иироючном  мясо-пептонном  агаре,  на  котором  обнаруживают 

.  ис  к-колонии  серовато-белого  цвета  с  неровно  очерченным

'  |'.и  м 

При 

изучении  колоний 

под 

малым  увеличением 

|м|. |

1

П

1

 копа 

обнаруживается 

их 

неоднородная 

структура, 

мишмимающая 

переплетающиеся, 

спутанные 

волосы 

(это

•  мм (.ПИ)  с  расположением  бацилл  в  мазке  в  виде  длинных 
ипи'иидиых  цепочек,  расходящихся  от центра),  поэтому  колонии 
 

УШЛИ  название «грива льва» или «голова медузы».

11(>лученную  чистую  культуру  возбудителя  используют  для 

11111

  ыиоики 

теста 

«жемчужное 

ожерелье». 

Для 

этого 

в

• 

1 1

т

1

|ни()чмый  бульон 

С 

пенициллином  (0.5  ЕД/мл)  вносят 

и |.  цусмую  культуру  бацилл,  инкубируют  в  течение  3  часов 
и|и(  !/" ('  и  затем  готовят  из  культуры  мазки,  окрашивают

t.  шмсиоиым  синим  и  микроскопируют.  Бациллы  сибирской

..... .  мыра

1

ценные  в  среде  с  пенициллином,  образуют  в  мазке

Н.

1

И

1

ЧКИ,  состоящие  из  шарообразных  клеток,  напоминающих 

Иепатогенные  бациллы,  а  также  B.cereus  сохраняют 

и|м

1

  куш.гимировании  в  среде  с  пенициллином  палочковидную

■|И4|1М\

11||||  аишшзе  трупов  погибших  животных,  а  также  при 

•i  »(

1

ич  ишемии 

санитарного 

надзора 

перерабатываемого

..... .. 

сырья,  например  меха  и  шкур  в  кожевенной

 

||'"М

1

.

1

т л с

1

М

1 0

сти, 

применяется 

реакция термопреципитации  по

 

1

  о '

1

и.  Гс-рмостабильные антигены возбудителя сибирской язвы 

. 1

1

||.м ирукп  из  исследуемого материала кипячением на водяной 

'"ИИ  пицучаю'г  экстракт,  содержащий термостабильный антиген, 
и  t.uiM  Iш ияг  реакцию  кольцепреципитации  с  использованием 

им. 

имшммупной 

специфической 

преципитирующей

ш м циттм пю й  сыворотки  (содержит  специфические  антитела к 

ми ИИ  ним  ночбудителя).  Реакция  термопреципитаций  по  Асколи

..... .  НИИ  иажна  в  тех  случаях,  когда  из  патологического

уже  не  удается  выделить  живой  возбудитель  и 

>1

  И

1

.ЫИ

.1

  ()акгериологических исследований (посевов на среды) 

||>ии.

1

ич|ы

1

ы.  В  качестве  контролей  используют  стандартный

• 

и темный  антиген  -   для 

контроля  преципитирующей

79


background image

сыворотки,

  а  также  сыворотку  здорового  человека 

контроля антигена.

для

Занятие №  23

МИКОБАКТЕРИИ. АКТИНОМИЦЕТЫ. ЛИСТЕРИИ

 

Микробиологическая диагностика туберкулеза, проказы,

 

актиномикоза, листериоза

Практические навыки, приобретаемые на занятии

1.  Обнаружение  в  мазках  из  мокроты,  окрашенных  по  Цилю- 

Нильсену, микобактерий.

2.  Идентификация  по  мазку  стрептомицетов  (повторение  навыка 

для его закрепления).

3.  Иммунопрепараты (повторение навыка для его закрепления).

Обнаружение в мазках из мокроты, окрашенных

 

по Цилю-Нильсену, микобактерий

Препараты 

для 

идентификации 

кислотоустойчивых 

микобактерий  готовят  из  гнойных  частиц  мокроты.  По  Цилю  -  
Нильсену  возбудитель  туберкулеза  окрашивается  в  рубиново­

красный  цвет,  все  остальные  элементы  мокроты:  клеточные 
элементы,  слизистое  веш,ество  мокроты  (т.е.,  фон  препарата)  -  в 
голубовато-синий.  Микобактерии  имеют  вид  тонких,  слегка 
изогнутых  палочек  (рис.28)  с  утолш,ением  на  одном  из  концов  -  
«швейная 

игла». 

Располагаются 

в 

мазке 

группами 

или 

поодиночке.  Обнаружение  микобактерий  в  мазке  -   достоверный 
признак туберкулезного процесса в легких.

Кроме 

изучения 

мазка, 

в 

диагностике 

туберкулеза 

используются  бактериологические  исследования.  В  этом  случае 

проводят  посевы  мокроты  на 

среду  Левенштейна  -   Йенсена.

 

Среда  является  селективной  для  микобактерий  туберкулеза, 

поскольку  содержит  малахитовый  зеленый,  подавляющий  рост 
контаминирующей патологический материал микрофлоры.

Для 

стимулирования 

роста 

возбудителя 

туберкулеза 

добавляют  картофельный  крахмал  и  препарат,  приготовленный 
из куриных яиц.

80

Микобактерии в мазке из мокроты: тонкие слегка 

изогнутые палочки

I'.ii  i'yi'  микобактерии  очень  медленно,  наиболее  часто 

[П)ста  отмечают  на  2 0 ^ 0 -й   день:  появляются  сухие 

|м I |

11

и  I I.IC  колонии  белого  или  слегка  желтоватого  цвета, 

инипмиипкицие цветную капусту.

Vi hopcmibm 

метод 

бактериологической 

диагностики

и.  vMi.'i  |ц)|ик)т, 

выращивая 

микрокультуры 

микобактерий 

(и.уипа 

-   метод  Прайса. 

Микроколонии  получают  на 

м(м  .(м.'шых  стеклах,  нанося  на  них  в  виде  толстого  мазка 

•111

  и  '|усм

1

.

1

й  материал,  и  погружая  стекла в  среду  Прайса (кровь 

смешанная  с  5%  цитратом  натрия  и  разведенная 

ttt.  иишироианной  водой).  После  7-10  дней  культивирования

  "  I п р о м ы в а ю т ,  

окрашивают 

по 

Цилю-Нильсену 

и 

мм

1

.|м

1

.  м птрую т. 

Под 

микроскопом 

микрокультуры 

1

српй  туберкулеза  располагаются  в  виде  «жгутов»  или

•  

(|iiu'.2‘)).

1

1

  /')  МIIкроколонии патогенных микобактерий, выращенных 

МП I  ICKJIC по  методу Прайса (видны отдельные палочки 

губеркулеза,  формирующие «косу»)

81


background image

Занятие № 2 4

 

а н а э р о б н ы е

 

б а к т к р и и

« 

„ ™ к „  „„агностика а..а .р<Л..ой  газовой

 

'""К'~®“ о " ; „ 7 “ . . и , « . л б н я к а ,  ботулизма

„ ,а ш п и .е с .и е  « а ш ш . - р и о б р е ^

идентиф икация 

Г ^ Г ой  

гангрены

Вегетативные 

клетки 

^

 

варьировать от

представлены  "“ ^ “

^ “ р т о л о ж и т е л ь н ы   при  окраске  по

мелких  до  крупных. 

окоаски  не  прокрашиваются  и

Граму.  Споры  при  этом 

участков,  овальной  или

видны  в  мазке  в  виде 

у  клостридии

Д—

« « к !,-, в месте расположения споры образуете,

вздутие (утолщение).

Рис.30. Мазок, содержащий патогенные клостридии,

окрашенные по Граму

т т 

_  Нильсену вегетативная часть клетки

о к р а ш Г Г Т е Т н Г н в ^ .   а  кислотоустойчивые  споры  -   в 

красный. 

патологического  материала

„р „  Г а г Г с ^ Г а ^ ^ н о »   раневой  иифекнни,  характерно

отсутствие лейкоцитов.

82

У  возбудителя  газовой  гангрены  С.  perfringens  споры 

крупные по размеру, овальные, могут быть расположены в  клетке 
центрально  либо  субтерминально.  В  мазках  из  патологического 
материала только этот вид клостридий образует капсулу.

У  возбудителя  столбняка  C .tetani  споры  круглые,  обычно 

расположены  терминально.  Их  диаметр  в  2-3  раза  превышает 

толщину  вегетативной части  клетки,  вследствие чего  в  мазке  они 

напоминают по форме «барабанные палочки».

С. 

botulinum   -  палочка с закруглёнными  концами,  в  мазках 

располагается  поодиночке,  иногда  в  виде  коротких  цепочек. 
Эндоспоры  -   крупные,  имеют  овальную  форму,  расположены 
чаще  всего  субтерминально,  что  придает  палочке  ботулизма 

([)орму «теннисной ракетки».

Материалом  для  микробиологических  исследований  при 

раневой  анаэробной  инфекции (газовая  гангрена) служат кусочки 
пораженных  некрозом тканей,  перевязочный  и  шовный  материал 

(при  исследовании  на  обсемененность  спорами  патогенных 

к^юстридий),  образцы  почвы.  При  ботулизме  -   испражнения  и 
продукты.  Основным методом диагностики является выделение и 
идентификация возбудителей, а также их токсинов.

Для  выполнения  процедуры  выделения  и  идентификации 

нозбудителей клостридиозов используют такие  среды,  как Китта- 

Гирогщи  (для  накопления  возбудителя),  агар  Цейсслера  и  среда 

Нильсона-Блэра  -   для  выделения  чистой  культуры.  Выделять 

чистую  культуру  С. 

novyi

  можно  на  агаре  с  бензидином, 

поскольку  колонии  возбудителя,  выращенные  на  этой  среде, 

(M.ic i po чернеют при попадании воздуха.

11ри засеве в  среду Вильсона-Блэра С. 

perfringens

 уже после 

'1

  часов  культивирования вызывает почернение столбика среды 

(|И.р

1

пование 

сульфида 

железа 

из 

Маг8 

и 

FeC^), 

1

  ч||(ц»иождающееся  появлением  разрывов  среды  (обусловлено 

и(.|

1

а юнанием  СО

2

).  Культура  С. 

perfringens

  (особенно  типа  А) 

•и  IUCI  характерный  запах  масляной  кислоты.  Эти  бактерии 
ипичниипо  створаживают  молоко  с  образованием  губчатого 
'  I  и 

11

,1

  и  пены  -   феномен,  известный  как  «ш торм овая 

pi'oi. цни».  На  агаризованных  средах  возбудитель  образует  R-
• и  и.ПИИ 

неправильной 

формы, 

бугристые, 

с 

неровными 

>.■< |м

1

ч п|тп,

1

ми  краями.  На  агаре  Цейсслера  колонии  окружены

83


background image

г

зоной  гемолиза.  Рост  колоний  в  глубине  столбиков  агара 
напоминает комочки ваты,  а при засеве материалом,  содержащим 
возбудитель,  на  среду  Китта-Тароцци  уже  через  1-2  часа  могут 
появляться  помутнение  и  пузырьки  газа,  которые  всплывают  из- 
под  кусочков  паренхиматозных  органов,  нахо;

1

ящихся  на  дне 

пробирок с посевами,  при встряхивании.

Для  выявления  и  идентификации  типа  токсина  используют 

реакцию  преципитации  в  геле  и  реакции  нейтрализации  токсина 
специфическими 

антитоксическими  сыворотками. 

Особенно 

важно выявить тип токсина при ботулизме.

Посев патологического материала на среду  К ип а-Гароцци

1.  Для  посева используют пробирки  со  средой  Ки гга-Тароцци, 

предварительно  прокипяченной  и  быстро  остуженной  до 
40°С,  на  поверхность  которой  наносится  гопкий  слой 
стерильного вазелинового масла.

2.  Стерильной  пастеровской  пипеткой  с  том ко  очтянутым 

капилляром 

делается 

забор 

неболыпо1Ч) 

количества 

патологического  материала  и  посев  на самое  дно  пробирки, 
через слой вазелинового масла.

3.  Пробирки  плотно  закрывают  пробками  и 

1

к

1

ра(|)и

11

ируют. 

Затем помещают в термостат для культивироиапня.

Занятие №  25

К О РИ Н Е БА К Т Е РИ И . Б О РД ЕТЕЛ Л Ы .  П Л Ч О Ф И Л Ы .

Л Е Г И О Н Е Л Л Ы  

М икробиологическая диагностика дифте|>ии, коклю ш а, 

заболеваний, вы зы ваем ы х гемофилами, Jiei нопслл1‘зив

Практические навыки, приобретаемые на занятии

1.  Идентификация  по  мазку  коринебактерий  (иоигоргиис  навыка 

для его закрепления).

2.  Иммунопрепараты (повторение навыка для  его чмкрсмлсния).

И дентиф икация по м азку кориш-Лакк-рнй

В  мазке  коринебактерии  обнаруживаю!  и  ипдс  ю пких,  в

основном  прямых  палочек,  которые  утолщены  на  концах. 
Обычно  микроскопируют  мазки,  окрашенные  по  Леффлеру  (с 
применением щелочной  метиленовой  синьки Леффлера),  либо  по 
Нейссеру.  По  Леффлеру  палочки  окрашиваются  в  бледно- 
голубой  цвет,  а  зерна  валютина  -   в  тёмно-синий,  по  Нейссеру 

зёрна  валютина  вьп'лядят  тёмно-коричневыми  на  фоне  желтой 

цитоплазмы.  В  мазках  палочки  С. 

diphtheriae

  располагаются  в 

виде латинских  букв  V,  Y,  L  или  X,  а образовавшиеся  «вздутия» 

на  концах  палочки  в  местах  расположения  гранул  валютина 
придают ей  форму  булавы.  Отсюда и  название семейства  и  рода: 
от греческого слова 

согупе,

 булава.

Для 

культи ви р о ван и я 

коринебактерий 

чаще 

всего 

используют  кровяные  среды  с  теллуритом  калия  или  натрия  -  
среды  Клауберга.  Поскольку  дифтерийная  палочка  устойчива  к 
высоким  концентрациям  теллурита,  добавление  его  в  среду 
ингибирует  рост  сопутствующей  микрофлоры  и  создает  для 

возбудителя 

селективные 

условия. 

При 

выращивании 

коринебактерий  на  среде  Клауберга  возбудитель  образует 
серовато-чёрные  колонии.  Черная  окраска  обусловлена  тем,  что 
при  росте  на  среде  происходит  восстановление  теллурита  до 
металлического  теллура  и  накопление  металла  в  бактериальной 
клетке.

Следует  помнить,  что  при  диагностике  дифтерии  очень 

важным  является  тест  на  выявление  продукции  возбудителем 

дифтерийного  экзотоксина  (нетоксигенный  штамм  не  способен 
вызывать  дифтерию).  Для  этих  целей  используется  реакция 
иммунодиффузии  в  геле по Оухтерлони. При постановке реакции 
используют  агаризованную  среду  с  пониженным  содержанием 
Fe 

,  чтобы  вызвать  интенсивное  токсинообразование.  На  центр 

застывшего  в  чашке  Петри  агара  накладывают  полоску 

фильтровальной 

бумаги, 

пропитанной 

антитоксической 

сывороткой,  и  по  обе  стороны  от  этой  полоски  высевают 

вьщеленную  из  патологического  материала  чистую  культуру 
возбудителя  и  два  контрольных  штамма,  токсигенного  и 

нетоксигенного.  В  результате  встречной  диффузии  токсина  и 
антитоксина  в  месте  их  контакта  появляются  дуги  («усы») 
преципитации.

84

85


background image

I I

dcci

) тампоном слизи из зева на среду Ру

I  Магсриал  отбирают  стерильными  ватными  тампонами, 

сухими  или  смоченными  (до  стерилизации!)  5%  раствором 
глицерина.

2.  При заборе материала (берется  только  фибринозная  пленка) 

при  этом  стараются  не  касаться  ротовой  полости  и  глотки 
(рис. 31).

3.  Делается засев тампоном на среду Ру.
4.  Пробирки с посевами помещают в термостат.

Рис.31. Техника забора патологического материала и посева на 

среду Ру при дифтерии зева.

Если 

материал 

нужно 

транспортировать, 

тампоны 

помещают  в  специальный  раствор,  предохраняющий  их  от 
охлаждения и  высыхания.  Полученный патологический  материал 

должен  быть  использован  для  посевов  не  позднее,  чем  через 

2-4

 

часа после взятия проб.

Возбудитель коклюша А  perftissfc-  мелкая грамотрицательная 

овоидная 

палочка 

(коккобактерия). 

При 

культивировании 

бордетелл  в  культуральной  среде  накапливаются  жирные 
кислоты,  ингибирующие  их  рост.  В  связи  с  этим  в  среды  для 
выращивания  бордетелл  вносят  адсорбенты  -  активированный 
уголь,  крахмал,  альбумин  и  др.,  поглощающие  вредные  для  их 
роста  продукты  метаболизма.  Для  культивирования  возбудителя 
коклюша  обычно  используют  среду  Борде-Жан ly  и  казеиново­
угольный  агар (КУА).  Скорость роста составляет обычно  от 3  до

5  суток.  На  среде  Борде-Жангу  коклюшная  па

1

ючка  образует

небольшие  (1  мм  в  диаметре)  сероватые,  выпуклые  и  блестящие 

колонии,  напоминающие  капельки  ртути  или  жемчужины, 

окружённые 

зоной  слабого 

гемолиза. 

На  КУА  колонии 

блестящие, серовато-кремового цвета.

В 

диагностике 

коклю ш а 

применяются 

как 

бактериологические, так и иммунологические методы.

Для  вьщеления  культуры  возбудителя  используют  мокроту 

и  слизь  из  зева.  Для  засева  можно  применять  метод  «кашлевых 
пластинок»  (подносят чашку  со  средой  ко рту больного  во  время 
приступа  кашля,  избегая  контаминации  слюной,  мокротой  и 
рвотными  массами),  либо  производить забор  слизи  специальным 
тампоном.  Материал  берут  с  задней  стенки  глотки,  стараясь  не 

прикасаться  к  слизистой  оболочке  щёк,  языка  и  миндалин. 

Доставку  патологического  материала в  лабораторию для  посевов 

необходимо осуществить в течение 2-4  часов.

Антигены 

возбудителя 

можно 

выявлять 

в 

РА 

со 

специфическими  видовыми  сыворотками  (с  неадсорбированными, 

либо  с  адсорбированными  монорецепторными  сыворотками).  Для 

экспресс-диагностики 

используют 

сыворотки, 

меченные 

флюоресцеинами.  В  случае  невозможности  вьщелить  возбудитель, 
либо 

при 

проведении  ретроспективных  эпидемиологических 

обследований  выявляют  специфические  антитела  в  сыворотке 
больных в реакциях агглютинации, РСК и др.

Занятие №  26

С П И РО Х Е ТЫ .  БА РТ О Н Е Л Л Ы .  О РИ ЕН Ц И И . ЭРЛИХИ. 

РИ К К Е ТС И И . ХЛАМ ИДИИ. М И К О П Л А ЗМ Ы   ^ 

М икробиологическая диагностика сифилиса, леитоспироза, 

боррелнозов, риккетсиозов, хламидиозов, микоплазмозов

Практические навыки, приобретаемые на занятии

1. Постановки 

и 

учёт 

реакции 

связывания 

комплемента 

(повторение навыка для его закрепления).

2. Проведение  и  учёт  объёмной  реакции  агглютинации  для 

определения  титра  антител  (повторение  навыка  для  его 
закрепления).

3. Иммунопрепараты (повторение навыка для его закрепления).

86

87