ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 03.11.2019
Просмотров: 3890
Скачиваний: 1
хроническое течение. У одних пациентов болезнь с самого
начала приобретает медленное, торпидное, хроническое
течение, у других – острая фаза заболевания переходит в
хроническую.
Несмотря на широкое распространеноость процессаПредполагается, что
хронизации оппортунистических инфекций способствуют:
− предшествующая заболеванию недостаточность иммунной системы;
− усугубление или вторичное развитие иммунодефицита в процессе болезни;
− пожилой возраст пациента;
− слабая иммуногенность антигенов многих условно- патогенных микробов;
− малая база возбудителя в случаях поверхностной локализации патологического
процесса или небольшого по территории очага поражения; − неадекватная
терапия.
7. Оппортунистические инфекции имеют выраженную тенденцию к
генерализации.
сепсис.
бактериальным шоком.
8. Оппортунистические инфекции с трудом поддаются терапевтическим
мероприятиям, что обусловлено:
− широким распространением множественно устойчивых к антимикробным
препаратам штаммов;
− гетерогенностью и изменчивостью популяций и биоценозов возбудителей;
− недостаточной активностью факторов естественного иммунитета.
9. Оппортунистические инфекции отличаются от инфекций, вызванных
облигатно-патогенными микробами, следующими эпидемиологическими
особенностями:
− широкое распространение в больничных стационарах; − множественность
источников инфекции;− частая и массивная контаминация;− способность ряда
возбудителей размножаться в объектах внешней, в том числе больничной
среды,− одновременное протекание в микропопуляции человека нескольких
эпидемических процессов;
− избирательность поражения населения (так называемые категории риска);
− невысокая контагиозность больных и носителей; − низкая восприимчивость
здоровых людей.
28.Общие принципы микробиологической диагностики
оппортунистических инфекций. Главным методом диагностики в настоящее
время является бактериологический, состоящий в выделении чистой культуры
возбудителя и определении необходимых для терапевтических и
профилактических целей свойств.
Микроскопический метод выявляет бактерии только в случае массивного
содержания в материале, отнести выявленную культуру только к крупным
таксонам. Его результаты могут быть использованы для выбора питательных
сред и предварительного суждения о возможном возбудителе. Введение в
клиническую практику иммуноферментного и иммунофлюоресцентного методов
Серологический метод ставятся обычно с аутокультурой, результат оценивается
по нарастанию титра антител в процессе болезни (в 4 и более раз).
Правила забора, транспортировки и хранения
биологического материала
1. Вид биоматериала определяется клинической картиной заболевания,
2. Собирают достаточное количество материала
3. Материал берут по возможности в начальном периоде болезни,
4. Забор материала должен осуществляться до начала антимикробной терапии.
5. Необходимо предупредить возможную контаминацию материала собственной
нормальной микрофлорой.
6. Следует предупредить возможность попадания в биоматериал антимикробных
препаратов
7. Любой клинический материал должен расцениваться как потенциально
опасный для человека.
8. После взятия материал в возможно более короткие сроки необходимо
доставить в лабораторию и начать его исследование.
9. Любой доставляемый в лабораторию биоматериал должен иметь направление .
Направление подписывает врач.
10. В процессе доставки материал следует оберегать от действия света, низкой и
высокой температуры, механических повреждений.
11. Неоднородный по консистенции материал в лаборатории гомогенизируют,
например, мокроту обрабатывают муколитиками, а однородный материал может
быть обогащен центрифугированием, адсорбцией.
12. После исследования остатки биоматериала подлежат уничтожению
29. ОРГАНИЗАЦИЯ САНИТАРНО-
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ В КЛИНИКЕ
Основные задачи санитарной микробиологии:
1. Изучение биоценозов, в которых существуют микробы, патогенные для
человека, изучение его роли в их накоплении.
2. Разработка методов микробиологических исследований внешней среды,
микробиологических нормативов и мероприятий по оздоровлению объектов
окружающей среды.
Принципы проведения санитарно-микробиологических исследований:
− Пробы необходимо отбирать с соблюдением всех необходимых условий.
Исследования проводить быстро; материал хранят в холодильнике не более 6–8
часов.
− Для получения объективных результатов следует отбирать несколько проб из
разных участков объекта.
− Более адекватные результаты можно получить проведением повторных
отборов и анализов проб.
− При проведении анализов следует использовать только стандартные и
унифицированные методы исследования.
− В работе необходимо использовать комплекс тестов – прямых (выявляющих
патогены) и косвенных.
− Интерпретацию результатов санитарно-микробиологи- ческих исследований
следует проводить с учетом других гигиенических
Методы санитарно-микробиологических исследований
Базовые санитарно-микробиологические методы направлены на определение
общей микробной обсемененности (общее микробное число), санитарно-
показательных микроорганизмов (СПМ).
Методы прямого обнаружения патогенных микроорганизмов Методы прямого
обнаружения – Наиболее часто проводядят посев материала на питательные
среды.
Методы косвенной идентификации: общее микробное число (ОМЧ) и
содержание санитарно-показательных микроорганизмов (СПМ).
ОМЧ определяют путём подсчета всех микроорганизмов (растущих на
питательных средах) в 1 г или в 1 мл субстрата, более адекватно расценивать
ОМЧ как показатель интенсивности загрязнения внешней среды органическими
веществами.
Санитарно-показательными называют микроорганизмы, по которым можно
косвенно судить о возможном присутствии патогенов во внешней среде. С
помощью специальных камер (например, Петрова или Гельбера) либо
специальных электронных счетчиков.
2. Посев на питательные среды.
Содержание СМП выражают в титрах и индексах.
Титр СМП – наименьший объем исследуемого материала (в мл) или весовое
количество (в г), в котором обнаружена хотя бы одна особь СМП.
Индекс СМП – количество СМП, обнаруженное в определенном объеме или
количестве исследуемого объекта
Индикаторы загрязнения
Группа А. Включает обитателей кишечника человека и животных. В нее входят
эшерихии, энтерококки, протеи, сальмонеллы. В данную группу включены также
сульфитвосстанавливающие клостридии (Clostridium perfringes и др.),
термофилы, бактериофаги, бактероиды, синегнойная палочка, кандиды,
ацинетобактер и аэромонады.
Группа В. Включает обитателей верхних дыхательных путей и носоглотки. В нее
входят зеленящие стрептококки, стафилококки (плазмокоагулирующие,
лецитиназа-положительные, гемолитические. Группа С. Включает
сапрофитические микроорганизмы, обитающие во внешней среде.
Микроорганизмы расценивают как индикаторы процессов самоочищения. В нее
входят бактерии-протеолиты, бактерии-аммонификаторы и бактерии-
нитрификаторы, некоторые спорообразующие бактерии, грибы, актиномицеты,
целлюлозобактерии и сине-зеленые водоросли.
33. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ОТДЕЛЯЕМОГО РАН
Микробиологические методы исследования
открытых инфицированных ран
При появлении гнойно-воспалительного процесса в ране ее отделяемое (гной,
кусочки инфицированных тканей грануляции, мышцы и др.) подвергают
микробиологическому исследованию.
Возбудителями гнойно-воспалительных процессов могут быть представители
разных родов как патогенной, так и условно- патогенной микрофлоры (аэробной,
микроаэрофильной и анаэробной).
Чаще встречаются виды следующих родов: Staphylococcus, Streptococcus,
Pseudomonas, Escherichia, Proteus, Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter, Hafnia,
Serratia, Aeromonas, Alcaligenes, Acetobacter, Haemophilus, Peptococcus, Bacillus,
Clostridium, Corynebacterium, Propionobacterium, Bacteroides, Nocardia, Listeria,
Fusobacterium, Neisseria, Mycrococcus, Mycoplasma. Реже – Yersinia, Ervinia,
Salmonella, Acinetobacter, Moraxella, Brucella, Candida, Actinomyces.
Микроорганизмы могут вызывать и поддерживать гнойный процесс в ране как в
монокультуре, так и в ассоциации.
Взятие исследуемого материала
Взятие материала производит лечащий врач при соблюдении правил асептики.
Материал из раны берут стерильным ватным тампоном. Кожу вокруг раны
предварительно обрабатывают спиртом или другим антисептиком.
Некротические массы, детрит и гной удаляют стерильной салфеткой. Взятие
материала стерильным тампоном производят круговыми вращательными
движениями от центра к периферии по поверхности раны. Материал берут двумя
тампонами, один из которых используют для микроскопии, а другой для посева.
При наличии в ране дренажей для активной аспирации отделяемого последнее
отсасывают шприцем и в количестве 1–2 мл помещают в стерильную пробирку.
Кусочки тканей, гной, промывную жидкость из дренажа также берут в
стерильные пробирки при соблюдении всех правил асептики.
Не более чем через 1 час после взятия материал следует доставить в
микробиологическую лабораторию для немедленного посева. При
невозможности доставить материал в течение этого времени он должен
храниться в холодильнике, но не более 2-х часов.
Микроскопия исследуемого материала Материал, взятый одним из стерильных
ватных тампонов, распределяют по стерильному предметному стеклу,
окрашивают по Граму и исследуют под микроскопом. При обнаружении
микроорганизмов отмечают их морфологическую характеристику
(грамположительные и грамотрицательные палочки, кокки и др.) и степень
обсемененности. В соответствии с результатами микроскопии определяют ход
бактериологического исследования.
Посев исследуемого материала
Питательные среды: 5% кровяной агар, сахарный бульон, «среда для контроля
стерильности».
Материал, взятый другим ватным стерильным тампоном из того же участка
раны, засевают на чашку с 5% кровяным агаром, на «среду для контроля
стерильности» и сахарный бульон, а твердые кусочки тканей засевают на «среду
для контроля стерильности» и сахарный бульон.
Посев на чашку с агаром производят методом «тампон- петля». Тампоном
проводится дорожка по диаметру чашки, затем другой стороной тампона в
обратном направлении засевается еще одна дорожка, параллельная первой.
После этого материал рассевают по чашке петлей штрихами,
перпендикулярными дорожкам. Такой посев позволяет выделить разные
микроорганизмы в виде отдельных колониеобразующих единиц даже из
ассоциации микроорганизмов.
Засеянные жидкие и плотные питательные среды инкубируют в термостате при
37°С в течение 18–24 часов. При обнаружении роста производят отсев
отдельных колоний на элективные среды для идентификации. Отмечают, как
растут микроорганизмы: в виде монокультуры или в ассоциации. При
обнаружении ассоциации на плотной питательной среде ассоциации.
При отсутствии роста в первые сутки, посевы оставляют в термостате. При этом
просматривают ежедневно и, при визуальном обнаружении роста, также
производят соответствующие отсевы. Ответ об отсутствии роста выдают через 5
суток термостатирования.
В заключении лаборатории указывают: какие виды микроорганизмов выделены
и в каком количестве (слабый, умеренный или обильный рост на плотной
питательной среде). При выделении ассоциации мик
34. факультативные анаэробы
Описаны прокариотные организмы, которые могут расти как в аэробных, так и в
анаэробных условиях. Изучение этого явления показало, что природа его
различна. Бактерии, не нуждающиеся в О2 (последний не участвует в
осуществляемых ими метаболических реакциях), но способные расти в его
присутствии, являются по типу осуществляемого ими метаболизма
, устойчивыми к О2 внешней среды. Примером таких организмов
служат молочнокислые бактерии. Многие прокариоты, относящиеся к этой же
группе, приспособились в зависимости от наличия или отсутствия О2 в среде
переключаться с одного метаболического пути на другой, например с дыхания на
брожение, и наоборот. Такие организмы получили название факультативных
анаэробов, или факультативных аэробов. Представителями этой физиологической
. В аэробных условиях они получают
энергию в процессе дыхания. (Среди факультативных анаэробов в условиях
осуществления
ими
метаболизма
аэробного
типа
также
могут
быть
). В анаэробных условиях источником энергии для них
служат процессы брожения или анаэробного дыхания.
Среди
бактерий
факультативных
анаэробных
спорообразующих
грамположительных палочек, заболевания у человека способны вызывать
представители рода Bacillus семейства Васillaсеае (отдел Firmicutes).
Отличительные особенности бацилл: • представлены крупными прямыми
палочками, положительно окрашивающимися по Граму, • способны образовывать
споры в аэробных условиях, • единственным патогенным для человека видом
выступает Bacillus anthracis (палочка сибирской язвы), • некоторые условно-
патогенные виды также способны вызывать пищевые интоксикации и
госпитальные инфекции. Бациллы выделяют из почвы, пресной и морской воды,
а также с растений. Они могут расти в интервале температур от 5 до 75 °С, а их
выживанию в экстремальных условиях способствует спорообразование.
Госпитальные поражения (пневмонии, септицемии, эндокардиты, менингиты и
др.) вызывают В. subtilis, В. cereus и В. megaterium (рис. 4, см. цветную вклейку),
В. alvei, В. laterosporus, В. pumilus, В. thuringiensis и В. sphaericus. Поражения
регистрируют сравнительно редко, а их развитию у человека способствуют
широкая распространённость бактерий и высокая устойчивость их спор к
различным воздействиям.
Факультативные анаэробные грамотрицательные ферментирующие бактерии
составляют разнообразные бактерии семейств Enterobacteriaceae, Vibrionaceae и
Pasteurellaceae, обитающие в различных биотопах и предъявляющие различные
требования к условиям культивирования. Их физиологические свойства точно
определяет термин «ферментирующие бактерии», так как они ферментируют
углеводы и утилизируют их в качестве источника энергии, что легко установить в
тесте Хью-Лёйфсона.