ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 03.11.2019
Просмотров: 3880
Скачиваний: 1
35. бактероиды и фузобактерии
Бактероиды (род Bacteroides)
Грамотрицательные палочки, неподвижны, спор не образуют, образуют капсулу.
Типовой вид - Bacteroides fragilis. Бактерии группы Bacteroides fragilis.
Культивируются на анаэробном кровяном агаре; лучше растут на комплексных
средах. Образуют белые, прозрачные S-формы колоний.
Протеолитическая активность умеренная, лецитиназу не образуют, не вызывают
гемолиза эритроцитов, образует H
2
S, образование кислоты при ферментации глк.,
лактозы, сахарозы.
Содержат соматический О-АГ, могут иметь Н- и К-АГ.
Факторы патогенности: образуют капсулу и продуцируют супероксиддисмутазу,
эндотоксин, нейраминидаза.
Колонизируют слизистые полости рта, верхних дыхательных путей, гениталий и
кишечника.
Фузобактерии. Род фузобактерий. Свойства фузобактерий. Палочка Шморля.
Палочка Плаута. Род фузобактерий образуют веретенообразные [лат. fusus,
веретено] неподвижные тонкие палочки с заострёнными концами, размером 0,5-
1x2-3 мкм. В мазках фузобактерий располагаются одиночно, реже образуют
короткие цепочки из 2, редко 3 клеток. Некоторые из них могут иметь
эллиптические утолщения. В чистых культурах фузобактерий могут образовывать
нитевидные или ветвящиеся формы. Фузобактерии растут на мясных и
печёночных бульонах; рост стимулируют внесением в питательную среду
сыворотки или асцитической жидкости. Рост фузобактерий сопровождается
помутнением среды, образованием осадка, газообразованием и появлением
«сырного» запаха. Утилизируют пептон и углеводы, но ферментативная
активность в целом слабая. На КА образуют мелкие (1-2 мм) выпуклые
желтоватые колонии фузобактерий, окружённые зоной а-гемолиза. Через 48 ч F.
necrophorum формирует мелкие негемолизирующие колонии палевого цвета;
иногда наблюдают зелёное окрашивание прилегающих участков среды после
контакта с воздухом. Клетки колоний фузобактерий полиморфные, часто
изогнутые и со вздутиями; по Граму окрашиваются неравномерно. Фузобактерии
обитают в полости рта, кишечнике и органах мочеполовой системы
млекопитающих. У человека фузобактерии вызывают гингивиты, периодонтиты,
поражения мягких тканей головы и шеи, аспирационные пневмонии,
плевропневмонии и остеомиелиты. Основные возбудители — F. nucleatum
(палочка Плаута) и F. necrophorum (палочка Шморля). Патогенез поражений
фузобактериями обусловлен способностью бактерий секретировать фосфолипазу
А (облегчает инвазию бактерий в глубокие ткани), лейкоцидин (проявляет
цитотоксическое действие на различные клетки).
36.
ИССЛЕДОВАНИЯ
ОТДЕЛЯЕМОГО
ГЛАЗ
Для диагностики инфекционных заболеваний глаз и обоснованного выбора
рациональных методов их профилактики и лечения нередко требуются
бактериологическое, вирусологическое и серологическое исследования. В ряде
случаев материал для такого исследования и направления в соответствующую
лабораторию получает врач-офтальмолог. В сопроводительном документе
указывают дату взятия материала, его характер, источник получения и
определяют цель исследования. Микробиологическое исследование проводится
при
заболеваниях
конъюнктивы,
век,
слезных
мешков,
роговицы.
В норме из конъюнктивы в небольшом количестве регулярно выделяются
Staphylococcus
epidermidis,
Corynebacterium
xerosis,
Corynebacterium
pseudodiphteriticum, непатогенные микроорганизмы семейства Neisseriaceae,
Sarcina. У отдельных лиц временно могут выделяться Staphylococcus aureus,
микроорганизмы семейства Streptococcaceae (S. pneumoniae, S. feacalis, S.
viridans), представители семейства Enterobacteriaceae, рода Haemophilus,
микоплазмы.
Причиной конъюнктивитов в преобладающем количестве случаев являются
стафилококки. Staphylococcus aureus чаще обнаруживается при остром, а
Staphylococcus
epidermidis
–
при
хроническом
конъюнктивите.
Другими возбудителями острых гнойных и хронических конъюнктивитов
являются Neisseria gonorrhoeae, Moraxella lacunata, Branhamella catarrhalis,
Corynebacterium diphteriae, Streptococcus pyogenes, Streptococcus viridans,
Streptococcus
faecalis,
Haemophilus
aegypticus,
Haemophilus
influenzae,
Pseudomonas aeruginosa, микроорганизмы семейств Enterobacteriaceae, родов
Proteus, Klebsiella, Escherichia. Реже встречаются Listeria monocytogenes, грибы
рода
Candida,
Aspergillus.
Поражение конъюнктивы может быть обусловлено бактериями, вирусами,
грибами или простейшими. Вирусные конъюнктивиты могут быть обусловлены
аденовирусами типов 3, 7, реже типов 1, 2, 5, 6; энтеровирусами (вирусы Коксаки
А типов 9, 10, 16; Коксаки В типа 5; ЕСНО1, 4, 6, 9, 16, 20). Энтеровирусы типа 70
вызывают геморрагический конъюнктивит, аденовирусы 8 и 19 – эпидемический
кератоконъюнктивит.
Поражения глаз при первичной герпетической инфекции встречаются чаще всего
у детей и протекают в виде одностороннего фолликулярного конъюнктивита с
выраженным отеком конъюнктивы и век, на которых иногда появляются
везикулы. У взрослых герпетический конъюнктивит встречается редко и
поражение глаз чаще проявляется кератитом, который может прогрессировать в
язву роговицы. Язва роговицы и конъюнктивит могут иметь место и на фоне
инфекции,
обусловленной
герпес-зостер.
Хламидийные конъюнктивиты вызывают Chlamydia trachomatis серовары D, E, F,
G, H, I, Y, K, то есть те же, которые обуславливают урогенитальный хламидиоз. В
связи с этим, во- первых, для диагностики хламидийного конъюнктивита могут
быть использованы те же методы, что и для диагностики урогенитального
хламидиоза, во-вторых, кроме соскобов с конъюнктивы целесообразно
исследовать
и
материал
из
половых
органов.
На фоне длительной антибиотикотерапии может иметь место заселение
конъюнктивы глаза грибами Candida и Aspergillus. Необходимо учитывать
возможность профессионального носительства кандид, например, у пекарей и
молочников. Причиной заболеваний глаз могут быть и другие грибы: нокардии,
пенициллумы,
мукоры.
Причиной кератитов, кроме уже упомянутого вируса простого герпеса, могут
быть
бактерии,
грибы
и
простейшие.
Факторами, способствующими возникновению бактериальных кератитов,
являются травматические поражения глаз, в том числе связанные с ношением
контактных линз, роговицы и обусловленное этим применение антибиотиков и
кортикостероидов, а также очаги хронической инфекции. Чаще всего развитие
бактериальных
кератитов
обусловлено
микроорганизмами
из
родов
Staphylococcus, Streptococcus, Pseudomonas. При этом наиболее тяжелые
поражения с образованием язв вызывают Pseudomonas aeruginosa. Реже причиной
кератитов являются грамотрицательные микроорганизмы из родов Escherichia,
Neisseria, Proteus, Moraxella. Единичные случаи кератитов обусловлены Nocardia.
37.
ИССЛЕДОВАНИЯ
ОТДЕЛЯЕМОГО
УШЕЙ
Гнойно-воспалительный процесс может быть локализован в наружном слуховом
проходе (фурункул, диффузные поражения), на барабанной перепонке
(мирингит), в среднем ухе (отит), а также в сосцевидном отростке (мастоидит).
Исследованию подлежит отделяемое из наружного уха, аспират из среднего уха
либо материал, полученный из внутреннего уха во время операции. Анализ
проводится до начала антибактериальной терапии. Точная идентификация
возбудителя и определение его чувствительности к антибиотику позволяет
максимально быстро ликвидировать заболевание и предотвратить переход в
хроническую
форму.
В норме микрофлора содержит эпидермальный стафилококк (S. еpidermidis до 102
КОЕ/мл).
К патогенным микроорганизмам, выявляемым в данном анализе, относятся:
энтеробактерии (Enterobacteriaceae), протей (P. аeruginosa), золотистый
стафилококк (S. аureus), стрептококки (S. pyogenes, S. pneumoniae, S. viridans),
непатогенные дифтероиды (Corynebacterium sp.) и грибы рода кандида.
В среднем и внутреннем ухе микрофлора отсутствует. При остром отите
возбудителями могут быть Staphylococcus aureus, S. epidermidis, Streptococcus
pyogenes, Streptococcus viridans, Streptococcus pneumoniae, а также Haemophilus
influenzae,
E.
coli,
C.
diphtheriae,
Bacteroides.
При хронически протекающей инфекции чаще обнаруживают ассоциации
микроорганизмов рода Proteus, Klebsiella, Enterobacter, Escherichia, Pseudomonas,
а также Mycobacterium tuberculosis, Actinomyces и плесневые грибы Aspergillus,
Mucor.
Взятие
исследуемого
материала
При поражении наружного уха проводят обработку кожи антисептиком с
последующим промыванием физиологическим раствором, затем отделяемое из
очага собирают на стерильный ватный тампон (во время операции или перевязки).
Взятие
мазка
из
наружного
слухового
прохода
Для взятия мазка следует пользоваться тонким тампоном, на конец стержня
которого накручено незначительное количество ваты так, чтобы можно было под
контролем зрения легко ввести в наружный слуховой проход. В момент взятия
мазка тампон вынимают из стерильной пробирки и берут в правую руку, левой
рукой оттягивают ушную раковину обследуемого назад и кверху, а конец тампона
с накрученной на нем ватой осторожно заводят в наружный слуховой проход
приблизительно
на
глубину
1–2
см.
При поражениях среднего и внутреннего уха исследуют пунктаты и материал,
полученный во время оперативных вмешательств, собранный в стерильную
посуду. Материал доставляется на исследование не позднее 2-х часов. В
транспортной среде материал может храниться до 24 часов при комнатной
температуре.
Микроскопия
исследуемого
материала
Бактериоскопия
нативного
материала
Проводят с целью обнаружения друз и элементов гриба при подозрении на микоз
методом «раздавленной капли». Исследуемый материал помещают на предметное
стекло в каплю физиологического раствора и покровным стеклом осторожно
накрывают так, чтобы жидкость была без пузырьков воздуха. Правильно
сделанная капля заполняет все пространство между покровным и предметным
стеклом, но при этом жидкость не выступает за края покровного стекла.
Микроскопию проводят при опущенном конденсоре сначала при малом
увеличении (объектив х 8), затем при большом (объектив х 40).
Бактериоскопия
окрашенного
материала
Во всех случаях исследования окрашивание мазков проводят по Граму или
метиленовым синим. При подозрении на туберкулез – по методу Циль-Нильсена,
на
актиномикоз
–
по
Романовскому-Гимзе.
При положительных результатах сообщается лечащему врачу. Дальнейший ход
микробиологического исследования определяется видом предполагаемого
возбудителя.
Посев
исследуемого
материала
Питательные среды Внутреннее ухо: − кровяной агар; − шоколадный агар; − среда
Эндо (среда МакКонки); − ЖСА, 0,1% полужидкий сывороточный агар или
тиогликолевая
среда;
−
среда
Сабуро
при
подозрении
на
грибы;
− анаэробный агар при подозрении на анаэробную инфекцию. Наружное ухо: −
кровяной агар; − шоколадный агар; − агар Эндо (Мак Конки агар); − ЖСА;
−
при
подозрении
на
грибы
–
агар
Сабуро.
Культивирование
− на кровяном агаре при 35–37°С, 5–10% СО2, в течение 24–48 ч;
− на шоколадном аг
38. нормальная микрофлора полости рта
Микрофлора полости рта. Микробиоценоз полости рта характеризуется: во-
первых, необычайной гетерогенностью составляющих таксономических групп; а
во-вторых, динамическим равновесием авирулентных и патогенных форм одних
и тех же видов, взаимодействие которых с иммунными и защитными механизмами
обеспечивает стабильность симбиоза с макроорганизмом. Микрофлора ротовой
полости представлена многочисленными видами, так как здесь имеются
благоприятные условия для развития микроорганизмов (влажность, постоянная
температура, остатки пищи и т.д.). Соотношение анаэробов и аэробов составляет
10:1. Концентрация бактерий в 1 мл слюны достигает 107 - 108 КОЕ/мл. Среди
бактерий доминируют стрептококки, составляющие 30-60% всей микрофлоры: S.
mitior тропен к эпителию щек, S. salivaris- к сосочкам языка, S. sanguis и S. mutans
- к поверхности зубов. Менее вентилируемые участки колонизируют анаэробы -
актиномицеты, бактероиды, фузобактерии, вейлонеллы, превотеллы. В полости
рта также обитают грибы рода Candida, спирохеты (T. dentica, T. orale, T.
macrodentium), микоплазмы (M. salivarium, M. orale).
Накапливаясь на зубах, микроорганизмы образуют зубные бляшки. Основные
поражения полости рта (кариес, пульпиты, периодонтиты и др.) вызывают
стрептококки, пептострептококки, актиномицеты, лактобациллы, коринебактерии
и др.
Исследование десневого кармана.
Для микроскопического исследования забор материала из десневого кармана
проводят на целлулоидные узкие пластинки, которые осторожно вводят в карман
и прижимают к поверхности корня со стороны десны. С внутренней стороны
пластинки прилипают микробы с корневой части зуба, с наружной – свободно
находящиеся в десневой жидкости микробы. Материал из кармана можно также
брать с помощью стерильной кюретажной ложечки.
Исследование ротовой жидкости.
Ротовую жидкость (нестимулированная слюна) обычно берут у больных утром,
через 2 часа после приема пищи, собирая ее в течение 10 минут в стерильные
пробирки. Стимулированную слюну получают после нанесения на спинку языка
1-2 капель стерильного 2% раствора лимонной кислоты или жевания 5 г парафина
в течение 30 секунд.
Исследование кариозной полости.
Сначала из кариозной полости стерильным бором убирают поверхностные слои
размягченного дентина, смоченного слюной. Другим стерильным бором, не
допуская попадания слюны, обрабатывают полость и помещают дентин с
помощью стерильной гладилки в транспортную среду.
Исследование корневых каналов.
Материал из корневых каналов берут корневыми иглами, на которых находятся
стерильные ватные турунды.
Исследование десневой жидкости.
Десневую жидкость собирают по принципу капиллярности стерильной
микропипеткой, стерильными фильтровальными полосками, стерильными
нитками.
Исследование слизистой оболочки.
Соскоб со слизистой оболочки, спинки языка делают стерильным шпателем или
гладилкой. Перед взятием материала из эрозий, язв удаляют поверхностный налет
сухим или смоченным физ.р-ром тампоном, не применяя антисептиков. Для
бактериоскопического исследования готовят мазки-отпечатки со слизистой
оболочки или из элементов поражения. Для этого сухое обезжиренное стекло с
зашлифованными краями прикладывают несколько раз к исследуемому участку.
Для взятия материала из труднодоступных мест можно использовать стерильные
резиновые столбики, приготовленные из ластиковой резины, которые
прикладывают сначала к пораженному участку, а затем к стеклу.
39.
ergillus
spp.
и
др.
Микробиологическая диагностика менингококковой инфекции и гнойных
менингитов
(ГМ)
осуществляется:
1. Бактериологическим методом – выделение и идентификации возбудителя.
2. Серологическим методом – выявление специфических антигенов в жидкостях
организма (ликвор, кровь, синусоидальная жидкость и др.) или антител в
сыворотке
крови.
3.
Методом
ПЦР.
Менингиты
бактериальной
природы
–
тяжелейшие
Методы
исследования
1.
Бактериоскопический
метод
Мазок
препарата
На середину предметного стекла наносят каплю крови и распределяют с помощью
чистого стерильного апликатора. Стекло оставляют в горизонтальном положении