ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 12.08.2021
Просмотров: 1829
Скачиваний: 7
Таблица 1.3.
Требования к безопасности крови, ее продуктов, кровезамещающих растворов и
технических средств, используемых в трансфузионно-инфузионной терапии
В на стоя щее вре мя стан дарт ным ла бо ра тор ным ис сле до ва ни ем на ВИЧ-ин фек цию яв ля ет ся об на ру -
же ние ан ти тел к ВИЧ в им му но фер мент ном ана ли зе (ИФА). Со вре мен ные на бо ры для ИФА, ис поль зуе -
мые в Рос сий ской Фе де ра ции, по зво ля ют в по дав ляю щем боль шин ст ве слу ча ев вы явить ан ти те ла к ВИЧ
в те че ние пер вых трех ме ся цев по сле ин фи ци ро ва ния, в ред ких слу ча ях – че рез 4–9 ме ся цев. При по лу -
че нии по ло жи тель но го ре зуль та та тес та про во дит ся по втор ная по ста нов ка ИФА. Ес ли под твер жда ет ся
по ло жи тель ный ре зуль тат, то про во дит ся ре ак ция им мун но го блот тин га. Ре ак ция им мун но го блот тин га
яв ля ет ся бо лее спе ци фич ным ана ли зом, по зво ляю щим оп ре де лить ан ти те ла к оп ре де лен ным ан ти ге нам
ВИЧ. По ло жи тель ный ре зуль тат это го ис сле до ва ния является лабораторным критерием наличия ВИЧ-ин -
фекции. Со мни тель ные (не оп ре де лен ные) ре зуль та ты им мун но го блот тин га тре бу ют про ве де ния допол-
нительных лабораторных исследований с определением ДНК и РНК ВИЧ.
Се ро ло ги че ская ди аг но сти ка вируса ге па ти та В в за ви си мо сти от ста дии ин фек ции пред став ле на в
таб л. 1.4. Се ро ло ги че ская ди аг но сти ка ге па ти та С вклю ча ет об на ру же ние ан ти тел к ви ру су ге па ти та С
(аnti-HCV) с по мо щью им му но фер мент но го или хе ми лю ми нес цент но го ана ли за. ПЦР при ме ня ет ся для
оп ре де ле ния РНК ВГС и ДНК ВГВ.
Раздел 1
16
Инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи
Безопасность донорской крови и ее компонентов подтверждается отрицательными результатами лаборатор-
ного контроля образцов донорской крови, взятых во время каждой донации, на наличие возбудителей гемо-
трансмиссивных инфекций.
28. Процессы, используемые для заготовки донорской крови и ее компонентов, должны обеспечивать пред-
упреждение механического заноса в них патогенных биологических агентов, а также сохранение биологической
полноценности, функциональной активности и лечебной эффективности донорской крови и ее компонентов.
29. При заготовке донорской крови и ее компонентов должна быть разработана и внедрена система каранти-
низации свежезамороженной плазмы, обеспечивающая ее безопасность.
30. Карантинизация свежезамороженной плазмы осуществляется на срок не менее 180 суток с момента замо-
раживания при температуре ниже – 25
0
C.
31. По истечении срока карантинизации свежезамороженной плазмы проводится повторное обследование со-
стояния здоровья донора и лабораторное исследование крови донора с целью исключения наличия в ней воз-
будителей гемотрансмиссивных инфекций.
32. При отсутствии у донора признаков гемотрансмиссивных инфекций в период, в течение которого осуществ-
лялась карантинизация замороженной плазмы, полученной от этого донора, и отсутствии в крови донора по
истечении срока карантинизации свежезамороженной плазмы возбудителей гемотрансмиссивных инфекций
свежезамороженная плазма выдается для лечебного применения или получения лекарственных препаратов.
33. При поступлении в организацию донорства крови и ее компонентов информации о выявлении у донора в
период карантинизации свежезамороженной плазмы гемотрансмиссивных инфекций или при обнаружении в
крови донора возбудителей гемотрансмиссивных инфекций по истечении срока карантинизации свежезамо-
роженная плазма, заготовленная от этого донора, изолируется и утилизируется с обязательной регистрацией
этой процедуры.
34. В случае неявки донора для повторного обследования по истечении установленного срока карантинного
хранения свежезамороженной плазмы свежезамороженная плазма может быть использована для производ-
ства препаратов крови или переливания реципиенту при условии инактивации патогенных биологических аген-
тов.
35. Не соответствующие требованиям безопасности или неиспользованные донорская кровь и ее компоненты
изолируются и подвергаются утилизации, включающей обеззараживание дезинфицирующими растворами или
применение физических методов дезинфекции с помощью оборудования, разрешенного для этих целей в уста-
новленном порядке, а также удаление образовавшихся отходов.
Постановление Правительства РФ от 26 января 2010 г. № 29 «Об утверждении технического регламента о тре-
бованиях безопасности крови, ее продуктов, кровезамещающих растворов и технических средств, используе-
мых в трансфузионно-инфузионной терапии».
Таблица 1.4.
Серологические маркеры вируса гепатита B
Использование острых предметов при проведении различных медицинских процедур сопряжено с
высоким риском травматизации кожных покровов медицинского работника и, как следствие, высоким
риском заражения инфекциями, передаваемыми через кровь [69]. Наиболее часто травмируются меди-
цинские сестры. Отмечено, что у каждой десятой медсестры по меньшей мере один раз в течение года
были порезы или уколы при исполнении профессиональных обязанностей [70]. Устранение потенциаль-
ных рисков на рабочем месте является важнейшим условием обеспечения профессиональной безопас-
ности медицинского персонала.
Наиболее вероятна травматизация в следующих случаях: при использовании острых предметов во
время работы с пациентом (41%); после использования острых предметов, перед утилизацией (40%); во
время и после надлежащей или ненадлежащей утилизации (15%) [69, 70]. Особую опасность представляют
полые иглы, в частности те, которые используются для забора крови или внутривенного введения кате-
тера. После завершения процедуры в таких иглах может оставаться кровь пациента. В табл. 1.5 перечис-
лены примеры острых предметов, использование которых сопряжено с высоким риском травматизации
медицинских работников.
Таблица 1.5.
Примеры острых предметов, использование которых сопряжено с высоким риском
травматизации медицинских работников
Раздел 1
17
Инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи
Маркеры
Стадия инфекции
Вакцинация
Острая
Хроническая
Излечение
ранняя
разрешающаяся
Инфекционность
высокая
низкая
HbsAg (антиген)
+
+
+
+
–
–
HBeAg (антиген)
+
–
+ или –
–
–
–
IgM антиядерные
+
+
–
–
–
–
IgG антиядерные
+
+
+
+
+
–
ДНК вируса
+
–
+
–
–
–
anti-Нbе (антитела)
–
+ или –
–
+ или –
+ или –
–
anti-Hbs (антитела)
–
–
–
–
+ или –
+
Отрицательный результат тестирования на ВИЧ и вирусы гепатитов В и С не исключает наличия
этих инфекций. Антитела к ВИЧ появляются в среднем в течение первых трех месяцев после ин-
фицирования, к вирусам гепатитов В и С – через полтора месяца. Концентрация вирусов в крови
в этот период наиболее высокая, следовательно, наиболее высок риск инфицирования при кон-
такте с кровью пациентов. Поэтому всем медицинским работникам важно рутинно соблюдать
предосторожность в отношении ВИЧ и вирусных гепатитов при оказании помощи любым пациен-
там, в том числе с отрицательными результатами обследований на вирусные гепатиты и ВИЧ.
Инструменты с полой иглой
Медицинский шприц
Игла-«бабочка»
Внутривенный катетер
Иглы для забора крови и биологических жидкостей
Иглы для аспирации
Инъекционные иглы
Иные предметы
Стеклянные колбы
Лезвие скальпеля
Хирургические сшивающие иглы
Ретракторы
Острые части электрохирургических аппаратов
ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ
•
Риск ИСМП существует в любом акушерском отделении/стационаре. Степень риска ИСМП опре-
деляется комплексом клинических и организационно-технических факторов.
•
От эффективности медицинской помощи зависят частота осложнений, потребность в инвазивных
вмешательствах и длительность пребывания в стационаре, следовательно, и риск ИСМП.
•
При неправильной обработке руки персонала, медицинский инструментарий, оборудование и
средства ухода – главные факторы передачи микроорганизмов в медицинских учреждениях.
•
Медицинским работникам нужно постоянно соблюдать предосторожность в отношении ВИЧ и ви-
русных гепатитов при оказании помощи всем пациентам, в том числе с отрицательными результа-
тами обследований на вирусные гепатиты и ВИЧ.
Литература
1. Покровский В.И., Пак С.Г., Брико Н.И., Данилкин Б.К. Инфекционные болезни и эпидемиология.
2-е изд. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007.
2. Rosen HR. Acquisition of hepatitis C by a conjunctival splash.
Am J Infect Control
1997; 25:242–247.
3. Beltrami EM, Kozak A, Williams IT et al. Transmission of HIV and hepatitis C virus from a nursing home patient
to a health care worker.
Am J Infect Control
2003; 31:168–175.
4. Boyce JM, Pittet D. Guideline for Hand Hygiene in Health-Care Settings. Recommendations of the Healthcare
Infection Control Practices Advisory Committee and the HICPAC/SHEA/APIC/IDSA Hand Hygiene Task Force.
Society for Healthcare Epidemiology of America/Association for Professionals in Infection Control/Infectious
Diseases Society of America.
MMWR Recomm Rep
2002; 51(RR-16):1–45.
5. Bhalla A, , Gries DM et al. Acquisition of nosocomial pathogens on hands after contact with environmental
surfaces near hospitalized patients.
Infect Control Hosp Epidemiol
2004; 25:164–167.
6. Duckro AN, Blom DW, Lyle EA et al. Transfer of vancomycin-resistant enterococci via health care worker hands.
Arch Intern Med
2005; 165:302–307.
7. Perry C, Marshall R, Jones E. Bacterial contamination of uniforms.
J Hosp Infect
2001; 48:238–241.
8. Zachary KC, Bayne PS, Morrison VJ et al. Contamination of gowns, gloves, and stethoscopes with vancomycin-
resistant enterococci.
Infect Control Hosp Epidemiol
2001; 22:560–564.
9. Brooks SE, Veal RO, Kramer M et al. Reduction in the incidence of Clostridium difficile associated diarrhea in
an acute care hospital and a skilled nursing facility following replacement of electronic thermometers with
single-use disposables.
Infect Control Hosp Epidemiol
1992; 13:98–103.
10. Desenclos JC, Bourdiol-Razes M, Rolin B et al. Hepatitis C in a ward for cystic fibrosis and diabetic patients:
possible transmission by springloaded finger-stick devices for self-monitoring of capillary blood glucose.
Infect Control Hosp Epidemiol
2001; 22:701–707.
11. Siegel JD, Rhinehart E, Jackson M et al. (Health Care Infection Control Practices Advisory Committee). Guideline
for Isolation Precautions: Preventing Transmission of Infectious Agents in Healthcare Settings, June 2007. – Cen-
ters for Disease Control and Prevention, 2007. Http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/pdf/isolation2007.pdf.
12. Rutala WA, Weber DJ (HICPAC). Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities, 2008. –
Centers for Disease Control and Prevention, 2008. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/
Disinfection_Nov_2008.pdf.
13. Rayan GM, Flournoy DJ. Microbiologic flora of human fingernails.
J Hand Surg Am
1987; 12:605–607.
14. Kampf G, Kramer A. Epidemiologic background of hand hygiene and evaluation of the most important agents
for scrubs and rubs.
Clin Microbiol Rev
2004; 17:863—893.
15. Lark RL, VanderHyde K, Deeb GM et al. An outbreak of coagulase-negative staphylococcal surgical-site infec-
tions following aortic valve replacement.
Infect Control Hosp Epidemiol
2001; 22:618–623.
16. Adams BG, Marrie TJ. Hand carriage of aerobic gramnegative rods may not be transient.
J Hyg (Lond)
1982;
89:33–46.
17. Price PB. Bacteriology of normal skin: a new quantitative test applied to a study of the bacterial flora and the
disinfectant action of mechanical cleansing.
J Infect Dis
1938; 63:301—318.
18. Larson EL, Hughes CA, Pyrek JD et al. Changes in bacterial flora associated with skin damage on hands of
health care personnel.
Am J Infect Control
1998; 26:513—521.
19. Maki D. Control of colonization and transmission of pathogenic bacteria in the hospital.
Ann Intern Med
1978;
89:777–780.
20. Larson E. Effects of handwashing agent, handwashing frequency, and clinical area on hand flora.
Am J Infect
Control
1984;11:76–82.
21. Patrick DR, Findon G, Miller TE. Residual moisture determines the level of touch-contact-associated bacterial
transfer following hand washing.
Epidemiol Infect
1997; 119:319–325.
Раздел 1
18
Инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи
22. Daschner FD. How cost-effective is the present use of antiseptics?
J Hosp Infect
1988; 11(Suppl A):227–235.
23. Larson EL, , Whittier S et al. Differences in skin flora between inpatients and chronically ill patients.
Heart Lung
2000; 29:298–305.
24. Pittet D, Dharan S, Touveneau S et al. Bacterial contamination of the hands of hospital staff during routine
patient care.
Arch Intern Med
1999; 159:821–826.
25. Pessoa-Silva CL, Dharan S, Hugonnet S et al. Dynamics of bacterial hand contamination during routine neo-
natal care.
Infect Control Hosp Epidemiol
2004; 25:192–197.
26. Boyce JM, Pittet D, Healthcare Infection Control Practices Advisory C, Force HSAIHHT. Guideline for Hand Hy-
giene in Health-Care Settings. Recommendations of the Healthcare Infection Control Practices Advisory Com-
mittee and the HICPAC/SHEA/APIC/IDSA Hand Hygiene Task Force. Society for Healthcare Epidemiology of
America/Association for Professionals in Infection Control/Infectious Diseases Society of America.
MMWR Re-
comm Rep
2002; 51:1–45.
27. Gupta A, Della-Latta P, Todd B et al. Outbreak of extended-spectrum beta-lactamase producing Klebsiella
pneumoniae in a neonatal intensive care unit linked to artificial nails.
Infect Control Hosp Epidemiol
2004;
25:210–215.
28. Boszczowski I, Nicoletti C, Puccini DM et al. Outbreak of extended spectrum beta-lactamase producing Kleb-
siella pneumoniae infection in a neonatal intensive care unit related to onychomycosis in a health care worker.
Pediatr Infect Dis J
2005; 24:648–650.
29. Gupta A, Della-Latta P, Todd B et al. Outbreak of extended-spectrum beta-lactamase producing Klebsiella
pneumoniae in a neonatal intensive care unit linked to artificial nails.
Infect Control Hosp Epidemiol
2004;
25:210–215.
30. McNeil SA, Foster CL, Hedderwick SA, Kauffman CA. Effect of hand cleansing with antimicrobial soap or alco-
hol-based gel on microbial colonization of artificial fingernails worn by health care workers.
Clin Infect Dis
2001; 32:367–372.
31. Grayson L, Russo P, Ryan K et al. Hand Hygiene Manual. – Australian Commission for Safety and Quality in
Healthcare and World Health Organization, 2009.
32. Riggs MM, , Zabarsky TF et al. Asymptomatic carriers are a potential source for transmission of epidemic and
nonepidemic Clostridium difficile strains among long-term care facility residents.
Clin Infect Dis
2007; 45:992–
998.
33. Bhalla A, , Donskey CJ. Staphylococcus aureus intestinal colonization is associated with increased frequency
of S. aureus on skin of hospitalized patients.
BMC Infect Dis
2007; 7:105.
34. Hayden MK, Blom DW, Lyle EA et al. Risk of hand or glove contamination after contact with patients colonized
with vancomycin-resistant enterococcus or the colonized patients’ environment
. Infect Control Hosp Epidemiol
2008; 29:149–154.
35. Grabsch EA, Burrell LJ, Padiglione A et al. Risk of environmental and healthcare worker contamination with
vancomycin-resistant enterococci during outpatient procedures and hemodialysis.
Infect Control Hosp Epide-
miol
2006; 27:287–293.
36. Clark AP, John LD. Nosocomial infections and bath water: any cause for concern?
Clin Nurse Spec
2006; 20:119–
123.
37. Griffith CJ, Malik R, Cooper RA et al. Environmental surface cleanliness and the potential for contamination
during handwashing.
Am J Infect Control
2003; 31:93–96.
38. Rabier V, Bataillon S, Jolivet-Gougeon A et al. Hand washing soap as a source of neonatal Serratia marcescens
outbreak.
Acta Paediatr
2008; 97:1381–1385.
39. Francis MC, Emmanuel ER, Remedios F. Stethoscopes: A potential source of nosocomial infections.
Phil J Mi-
crobiol Infect Dis
2000; 29:9–13.
40. Nagata E, Brito A, Matsuo T. Nosocomial infections in a neonatal intensive care unit: incidence and risk actors.
Am J Infect Control
2002; 30:26–31.
41. Makhoul IR, Sujov P, Smolkin T et al. Epidemiological, clinical and microbiological characteristics of late-onset
sepsis among very low birth weight infants in : a national survey.
Pediatrics
2002; 109:34—39.
42. Yokoe DS, Christiansen CL, Johnson R et al. Epidemiology of and surveillance for postpartum infectious.
Emerg
Infect Dis
2001; 7:837–841.
43. Newman CD. Catheter-related bloodstream infections in the pediatric intensive care unit.
Semin Pediatr Infect
Dis
2006; 17:20–24.
44. Elward AM, Warren DK, Fraser VJ. Ventilator-associated pneumonia in pediatric intensive care unit patients:
risk factors and outcomes.
Pediatrics
2002; 109:758–764.
45. Bertone SA, Fisher MC, Mortensen JE. Quantitative skin cultures at potential catheter sites in neonates.
Infect
Control Hosp Epidemiol
1994; 15:315–318.
46. Boyce JM, Pittet D. Guideline for Hand Hygiene in Health-Care Settings. Recommendations of the Healthcare
Infection Control Practices Advisory Committee and the HICPAC/SHEA/APIC/IDSA Hand Hygiene Task Force.
Society for Healthcare Epidemiology of America/Association for Professionals in Infection Control/Infectious
Раздел 1
19
Инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи
Diseases Society of .
MMWR Recomm Rep
2002; 51(RR-16):1–45.
47. Saiman L, Ludington E, Pfaller M et al. Risk factors for candidemia in Neonatal Intensive Care Unit patients.
The National Epidemiology of Mycosis Survey study group.
Pediatr Infect Dis J
2000; 19:319–324.
48. Mahieu LM, De Muynck AO, Ieven MM et al. Risk factors for central vascular catheter-associated bloodstream
infections among patients in a neonatal intensive care unit.
J Hosp Infect
2001; 48:108–116.
49. Monif GR, Baker DA. Infectious Diseases in Obstetrics and Gynecology. 6th ed. – Informa HealthCare, 2008.
50. Atterbury JL, Groome LJ, Baker SL et al. Hospital readmission for postpartum endometritis.
J Matern Fetal Med
1998; 7:250–254.
51. Newton ER, Prihoda TJ, Gibbs RS. A clinical and microbiologic analysis of risk factors for puerperal endometritis.
Obstet Gynecol
1990; 75:402–406.
52. Maharaj D. Puerperal pyrexia: a review. Part II.
Obstet Gynecol Surv
2007; 62:400–406.
53. Richards MJ, Edwards JR, Culver DH, Gaynes RP. Nosocomial infections in pediatric intensive care units in the
United States. National Nosocomial Infections Surveillance System.
Pediatrics
1999; 103:e39.
54. Peterson EE. Infections in Obstetrics and Gynecology. – Thieme, 2006.
55. Thaver D, . Burden of neonatal infections in developing countries: a review of evidence from community-
based studies.
Pediatr Infect Dis J
2009; 28(Suppl):S3–S9.
56. Zaidi AK, Thaver D, Ali SA, Khan TA. Pathogens associated with sepsis in newborns and young infants in de-
veloping countries.
Pediatr Infect Dis J
2009; 28(Suppl):S10—S18.
57. Wasley A, Scott G, Gallagher K. Surveillance for acute viral hepatitis – United States, 2006. MMWR 2008; 57:
1—24. http://www.cdc.gov/mmwr/preview/mmwrhtml/ss5702a1.htm.
58. Centers for Disease Control and Prevention, for HIV/AIDS, Viral Hepatitis, STD, and TB Prevention. 2006
Disease Profile.
– CDC, 2008. http://www.cdc.gov/nchhstp/Publications/docs/2006_Disease_
Profile_508_FINAL.pdf.
59. Conte D, Fraquelli M, Prati D et al. Prevalence and clinical course of chronic hepatitis C virus (HCV) infection
and rate of HCV vertical transmission in a cohort of 15,250 pregnant women.
Hepatology
2000; 31:751—755.
60. Quinn TC, Wawer MJ, Sewankambo N et al. Viral load and heterosexual transmission of human immunodefi-
ciency virus type 1. Rakai Project Study Group.
N Engl J Med
2000; 342:921—929.
61. CDC. Update: human immunodeficiency virus infections in health-care workers exposed to blood of infected
patients.
MMWR
1987; 36:285—289.
62. Panel on Treatment of HIV-Infected Pregnant Women and Prevention of Perinatal Transmission. Recommen-
dations for use of antiretroviral drugs in pregnant HIV-1-Infected women for maternal health and interventions
to reduce perinatal HIV transmission in the United States. 2012. http://aidsinfo.nih.gov/contentfiles/lvguide-
lines/PerinatalGL.pdf.
63. Kahn JO, Walker BD. Acute human immunodeficiency virus type 1 infection.
J Med
1998; 339:33—39.
64. Department of Health. Hepatitis C. Action plan for England. 2004. http://www.nhs.uk/hepatitisc/SiteCollecti-
onDocuments/pdf/hepatitis-c-action-plan-for-england.pdf.
65. Покровский В.В., Ладная Н.Н., Соколова Е.В., Буравцова Е.В. ВИЧ-инфекция. Информационный бюллетень
№ 35. — М.: Федеральный научно-методический центр по профилактике и борьбе со СПИДом, 2011.
66. Sepkowitz KA. Occupationally acquired infections in health care workers. Part II.
Ann Intern Med
1996; 125:917—
928.
67. Брико Н. И., Лыткина И. Н. Состояние заболеваемости и перспективы вакцинопрофилактики гепатита В
в Москве. Журнал «Лечащий врач» 2000.-N 10.-С.3-9
68. Косарев В.В., Бабанов С.А. Медицинские работники - группа риска по гемоконтактным инфекциям. Жур-
нал «Здравоохранение» 2011. - №2. - С.35-37
69. Do AN, Ciesielski CA, Metler RP et al. Occupationally acquired human immunodeficiency virus (HIV) infection:
national case surveillance data during 20 years of the HIV epidemic in the .
Infect Control Hosp Epidemiol
2003;
24:86—96.
70. ASCC. Occupational exposures in Australian nurses: Report of the project. — Australian Safety and Compen-
sation Council, 2008.
Раздел 1
20
Инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи