Файл: Все лекции по хирургии.doc

ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 16.03.2019

Просмотров: 7821

Скачиваний: 10

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.

СОДЕРЖАНИЕ

Общие принципы обследования больных с заболеваниями легких и плевры

Основные методы диагностики заболевания:

Рентгенологическое исследование:

Бронхоскопия:

Диагностическая плевральная пункция:

Диагностический пневмоторакс:

Диагностический пневмоперитонеум:

Диагностический пневмомедиастинум:

Острые абсцессы и гангрена легкого

ФАКТОРЫ, участвующие в развитии легочных нагноений:

Микробная флора:

Пути возникновения абсцессов и гангрены легкого:

Клиническое течение и диагностика:

Диагностика и дифференциальная диагностика

Осложнения острых легочных нагноений:

Принципы консервативного лечения острых легочных нагноений:

Показания к консервативному лечению острых легочных нагноений:

Методы хирургического лечения:

Показания к хирургическому лечению:

Хронические абсцессы легких

Причины перехода острого абсцесса в хроничекий.

Клиническое течение и диагностика

Рентгенологическая диагностика

Осложнения хронических абсцессов:

Показания к хирургическому лечению:

Основные задачи предоперационной подготовки у больных с хроническими абсцессами легких

Острая и хроническая эмпиема плевры.

Классификация эмпием плевры по определяющему фактору.

Клиническое течение:

Деструкция легкого:

Сообщение с внешней средой:

Распространенность:

Острая эмпиема плевры.

Этиология острой эмпиемы плевры.

Патогенез острой эмпиемы плевры.

Клиническое течение ОЭП и пиопневмоторакса.

Методы диагностики.

Дифференциальная диагностика

Лечение ОЭП

Общее лечение.

Местное лечение.

Виды операций.

Хроническая эмпиема плевры

Этиология и патогенез.

Нагноительные заболевания легких в гериартрической практике

Анатомо-морфологические изменения дыхательной системы при старении.

Абсцесс легкого

Факторы участвующие в развитии легочных нагноений:

Этиология и патогенез.

Пути возникновения абсцессов и гангрены легкого:

Клиническое течение и диагностика:

Осложнения острых легочных нагноений:

Лечение.

Основные принципы консервативного лечения:

Показания к консервативному лечению острых легочных нагноений:

Методы хирургического лечения:

Показания к хирургическому лечению:

Опухоли и кисты средостения

Классификация (И.П.Дедков с соавт.)

По источнику происхождения:

Первичные новообразования средостения:

Группы клинических симптомов:

Специальные методы исследования.

Болезни пищевода вызывающие дисфагию

Анатомия пищевода

Физиология.

Методы исследования.

Общая симптоматика болезней пищевода.

Дивертикулы пищевода

Классификация.

По топографическому принципу:

По механизму возникновения:

Глоточно-пищеводные дивертикулы.

Клиника и диагностика.

Лечение:

Бифуркационные дивертикулы.

Эпифренальные дивертикулы.

Кардиоспазм.

Этиология и патогенез.

Патологоанатомические изменения.

Клиника и диагностика.

Гастроэзофагеальная рефлюксная болезнь

Определение

Эпидемиология

Этиология и патогенез

Классификация

Клиника

Диагностика

Течение и осложнения

Лечение

Литература:

Диагностика и лечение нарушений моторики желудочно-кишечного тракта

Диагностика

Лечение

Литература:

Синдром раздраженного кишечника

Определение

Эпидемиология

Этиология и патогенез

Классификация

Клиника, диагностика, дифференциальная диагностика

Лечение

Прогноз

Литература

Дифференциальная диагностика с синдромом острого живота.

Клинический пример.

Следующий пример.

Клинический пример.

Свищи желудочно-кишечного тракта

Причины возникновения свищей ЖКТ.

Причины, обусловленные патологическими процессами в брюшной полости и ее органах.

Причины, обусловленные тактическими ошибками.

Причины, обусловленные техническими ошибками и погрешностями.

Классификация свищей желудочно-кишечного тракта

По локализации.

По морфологии.

По степени сформированности.

По функции.

По осложнениям.

По характеру шпоры (шпора отмечается только при губовидных свищах).

Фон, на котором развивается и протекает свищ.

Методы обследования больных со свищами желудочно-кишечного тракта.

Задачи исследования:

Методы исследования:

Общие и местные нарушения при свищах ЖКТ.

Нарушения водного, электролитного, белкового обмена и их коррекция.

Клинические признаки нарушения водного баланса.

Изменения со стороны печени, почек, надпочечников и их коррекция.

Парентеральное питание

Энтеральное питание.

Методы обтурации свищей ЖКТ.

Абсолютные противопоказания к обтурации:

Относительными противопоказаниями

Все известные методы обтурации можно разделить на внутрикишечные, внекишечные и смешанные.

Внутрикишечная обтурация.

Внекишечные методы обтурации

Смешанные методы обтурации.

Мероприятия по предупреждению и лечению дерматита.

Свищи желудка

Хирургическое вмешательство состоит из следующих основных этапов:

Свищи ДПК

Основными причинами возникновения свищей ДПК являются:

Этиология, патогенез и профилактика острых эрозий и язв слизистой оболочки органов желудочно- кишечного тракта.

Литература.

Кровотечения при заболеваниях пищеварительного тракта

Классификация:

По этиологическим признакам.

По локализации источника кровотечения:

По клиническому течению:

По степени тяжести кровотечения:

Патогенез кровотечений при заболеваниях пищеварительного тракта

Клиника и диагностика кровотечений при заболеваниях ЖКТ

Перитонит

Частота

Прогноз

Анатомические особенности строения брюшины

Этиология

Классификация перитонитов

По клиническому течению различают:

В связи с этим по характеру экссудата и выпота различают:

По происхождению

Источниками перитонитов являются:

Перитонит считается:

Стадии:

Характеристика стадий заболевания острого гнойного перитонита такова:

Патогенез

Клиника разлитых гнойных перитонитов

Алгоритм лечения перитонита

Методы лечения

Хирургические

Общие

Предоперационная подготовка

Обезболивание.

Хирургическая тактика.

Операция состоит из шести последовательно выполняемых этапов:

Методы послеоперационного ведения.

Корригирующая терапия в послеоперационном периоде.

Список использованной литературы:

Постгастрорезекционные синдромы

Классификация.

Функциональные расстройства:

Органические поражения:

Смешанные расстройства:

Демпинг синдром.

Клиническая картина ДС.

Клиническая классификация.

Лечение.

Примерное меню.

Агастральная астения.

Клинические проявления:

ПА сопровождается рядом осложнений:

Лечение.

Синдром приводящей петли.

Клиническая картина:

Неспецифический язвенный колит

Этиология и патогенез.

Патологическая анатомия.

Классификация.

В зависимости от протяженности патологического процесса:

По клиническому течению:

Клиническая картина и диагностика:

Местные или кишечные осложнения НЯК.

Общие осложнения неспецифического язвенного колита.

Дифференциальная диагностика.

Консервативное лечение НЯК.

Оперативное лечение.

Показания к хирургическому лечению:

Панкреатит.

Анатомия.

Топография поджелудочной железы.

Кровоснабжение и иннервация:

Классификация.

острый панкреатит.

Этиология:

Классификация острого панкреатита.

Патогенез:

Клиническая картина.

Жалобы:

Объективно:

Диагностика.

Лечение.

Хирургическое лечение панкреонекроза.

Хронический панкреатит.

Этиология.

Классификация.

Кисты и свищи поджелудочной железы

Классификация кист.

По этиологическому принципу:

По клиническим признакам:

По тяжести течения:

Первичные и рецидивирующие кисты.

Клиника и диагностика.

Рентгенологические признаки кисты поджелудочной железы:

Методы оперативного лечения.

Свищи поджелудочной железы.

Показания к операциям на желчном пузыре и ЖВП.

Показания к холецистэктомии.

При хроническом холецистите.

При остром холецистите.

Экстренная операция – показания:

Срочная операция – показания:

Отсроченная операция:

Показания к холедохотомии.

Абсолютные:

Относительные:

Противопоказания к холедохотомии:

Показания к ревизии холедоха:

Наружное дренирование холедоха

Виды:

Временное наружное дренирвоание показано:

Продолжительное дренирование показано:

Показания для длительного наружного дренирования:

Показания к наружному дренированию холедоха:

Внутреннее дренирование холедоха.

Папилосфинктеротомия.

Абсолютные показания:

Относительные:

Не показана:

Холедоходуоденостомия.

Показания:

Противопоказания:

Показания к двойному внутреннему дренированию холедоха:

Операции при холангиогенном панкреатите с поражением магистральных желчных протоков и большого дуоденального сосочка

Операции на магистральных желчных протоках

Временное наружное отведение желчи

Внутреннее дренирование желчных путей

Наружное дренирование общего желчного протока

Постхолецистэктомический синдром

Терминология и классификация

Э.И.Гальперин выделяет следующие группы заболеваний:

Заболевания желчных протоков и БДС

Стеноз БДС.

Недостаточность БДС.

Избыточная культя пузырного протока и “остаточный” желчный пузырь.

Стриктуры желчных протоков.

Кистозные расширения гепатикохоледоха.

Различают две формы болезни Кароли:

Опухоли желчных протоков.

Заболевания печени и поджелудочной железы.

Заболевания ДПК

Функциональные моторно-эвакуаторные нарушения ДПК.

Хроническая дуоденальная непроходимость.

Дивертикулы ДПК.

Клинические проявления

Методы диагностики.

Дооперационные методы диагностики.

Операционные методы исследования.

Повторные восстановительные и реконструктивные операции на желчных путях

Осложнения после операций на желчных протоках

Ранние

Поздние осложнения

Послеоперационные грыжи

Классификация послеоперационных грыж (К.Д.Тоскин):

Этиология и патогенез.

Клиника и диагностика.

Оперативное лечение послеоперационных грыж

Предоперационная подготовка.

Основной план операции:

Ущемленные грыжи

Диагностика.

Ожог, Ожоговая болезнь.

Термические ожоги.

Ожоговая болезнь.

Ожоговый шок.

Острая ожоговая токсемия.

Септикотоксемия.

Период реконвалесценции.

Вопросы переливания крови, клиники и лечения гемотрансфузионных осложнений.

Группы крови.

Резус-фактор.

Определение групп крови системы АВО.

Определение групп крови по стандартным сывороткам.

Определение групп крови системы АВО перекрестным способом.

Определение резус-принадлежности.

Метод определения резус-фактора в чашках петри наводяной бане.

Определение резус-фактора в пробирках без подогрева.

Проба на групповую совместимость крови донора и реципиента.

Биологическая проба.

Правила хранения и оценка годности крови к переливанию.

Переливание крови.

Методы гемотрансфузий.

Различают:

Гомологичная трансфузия.

Аутологичная трансфузия (аутотрансфузия).

В зависимости от путей введения различают:

Гемотрансфузионные реакции и осложнения.

Лечение посттрансфузионных осложнений.

Можно разделить на два этапа.

Список литературы.

Оглавление

  1. группа ab – в крови отсутствуют антигены (агглютиногены).

  2. группа Аb – в крови нет одноименных антител и антигенов.

  3. группа Ва – (агглютининов и агглютиногенов).

  4. группа АВ – в крови отсутствуют антитела (агглютинины).

Процентное соотношение лиц с различными группами крови в различных местах земного шара не одинаково. В странах СНГ оно приблизительно таково:

О(I гр.) 34%; А(II гр.) 38%; В(III гр.) 21%; АВ(IV гр.) 8%.


Резус-фактор.

В 1937 году Ландштейнер и Винер открыли резус-фактор (Rh – фактор). В ходе опытов по иммунизации кролика эритроцитами обезьяны макака-резус (Makakus rhesus) была получена сыворотка, агглютинировавшая 85% образцов эритроцитов человека – независимо от групповой принадлежности. Так было установлено наличие в эритроцирах человека вещества антигенной природы, аналогичной таковому у макаки-резус. Оно получило название резус-фактор. Люди, вкрови которых этот фактор есть, стали обозначаться как "резус-положительные", те, у кого он не определялся – "резус – отрицательные". Резус-фактор содержится в крови около 85% людей и в отличие от агглютиногенов (антигенов) А и В не имеет, как правило, естественных антител. Антитела против резус-фактора (анти-резус) возникают только вследствие сенсибилизации резус-отрицательного (не имеющего резус-фактора) человека эритроцитами, содержащими резус-фактор. Антитела могут также появиться в крови резус-отрицательной беременной женщины в ответ на резус-положительный плод. Резус-несрвместимость (резус-конфликт) возникает в случае повторного контакта сенсибилизированного человека с резус-фактором (переливание крови, беременность).

В крови существует множество других антигенов. Они обозначены как системы МN, Келл, Даффи, Льюис, Лютеран и др. Выраженные посттрансфу зионные осложнения и гемолитическая болезнь вызываются ими крайне редко. В настоящее время антигены выявлены в лейкоцитах, тромбоцитах, других белковых структурах общей чичленностью около 300 видов.

Перед каждой гемотрансфузией обязательны следующие исследования крови и пробы:
  1. Определение группы крови – системы АВО у донора и реципиента.

  2. Определение резус-принадлежности крови донора и реципиента.

  3. Определение групповой совместимости крови донора и реципиента.

  4. Определение резус-совместимости крови донора и реципиента.

  5. Проведение биологической пробы.

Только правильное и полное выполнение этих проб и реакций гарантирует от переливания несовместимой крови, от развития гемотрансфузионных осложнений.


Определение групп крови системы АВО.

Возможны два способа определения группы крови:
  1. При помощи стандартных сывороток, когда устанавливают отсутствие или наличие в эритроцитах антигенов А и В.

  2. Одновременное определение по стандартным сывороткам антигенов в эритроцитах, а по стандартным эритроцитам изоагглютининов а и В в той же крови (перекрестный способ).



Определение групп крови по стандартным сывороткам.

Стандартные гемагглютинирующие сыворотки (из крови доноров или ретроплацентарной крови) поступают в ампулах на 2 мл. Перед определением следует убедиться в наличии на этикетке ампулы обозначения группы сыворотки, срока годности, номера серии и наименования учреждения его изготовившего. Срок годности сыворотки – 4 месяца со дня изготовления.

Если в ампулах с сывортками обнаруживаются хлопья или взвесь, то они для использования не пригодны, несмотря на неистекший срок. Для удобства пользования сыворотка окрашивается в различные цвета. Сыворотка 1-й группы не окрашивается, 2-й группы – окрашивается в голубой цвет, 3-ей группы в розовый, 4-ой группы в желтый. Аналогичного цвета полосами маркируются ампулы. Ампулы хранятся в холодильнике при температуре +4 – +6 град.С или при комнатной температуре. Сыворотками лучше пользоваться в день вскрытия ампул, но допускается хранение открытых ампул 3-4 дня в холодильнике при условии, если горлышко заклеивается пластилином, лейкопластырем, закрывается ваткой.

Определение группы крови проводится при температуре +15 – +25 град. С намаркированной плоскости (тарелке) белого цвета, где записывается фамилия лица, у которого определяется кровь, согласно международной классификации маркируются точки нанесения сыворотки. Используются стандартные сыворотки двух серий групп О(I), А(II), В(III). После их нанесения получается шесть капель, расположенных в два ряда в следующем порядке: О(I), А(II), В(III). Каждая сыворотка наносится своей пипеткой. Исследуемая кровь углами предметного стекла или стеклянными палочками вносится в сыворотку в количестве в десять раз меньшем и тщательно перемешивается. Можно перемешивать кровь с сывороткой одним и тем же углом предметного стекла (или стеклянной палочкой), но в этом случае после каждого перемешивания необходимо промывать стекло в воде и насухо вытирать. За ходом реакции, в общей сложности, наблюдают не менее 5-ти минут, периодически покачивая тарелку. В капли, где к третьей минуте наблюдения произошла агглютинация, вносят по капле физ.раствора и наблюдают еще две минуты. Добавление физиологического раствора не разрушает истинной агглютинации и позволяет отдифференцировать ее от псевдоагглютинации, обусловленной самопроизвольным склеиванием эритроцитов в монетные столбики. Результат оценивается по наличию агглютинации.

Эритроциты группы О(I) не содержат антигенов и в реакцию агглютинации не вступают. Эритроциты группы А(II) не дают агглютинации только с сывороткой своей группы, эритроциты В(III) также не дают агглютинации только с сывороткой своей группы. Если во всех сыворотках произошла агглютинация, то для исключения неспецифической панагглютинации и подтверждения, что это эритроциты IV группы крови, следует дополнительно исследовать их стандартной сывороткой группы АВ (IV). Для этого используется одна сыворотка, исследование проводится с соблюдением всех выше указанных условий. Сыворотка группы АВ(IV) не содержит никаких антител, а поэтому не должна давать агглютинации. При определении групп крови следует обратить особое внимание на сроки чтения результата они не должны быть менее 5-ти минут. Так разновидность второй группы крови А2(II) дает агглютинации, как правило, раньше чем обычно – к исходу 3-4-ой минуты.



Определение групп крови системы АВО перекрестным способом.

Для выполнения этого способа требуется то же оснащение, что и для определения групп крови с помощью стандартных сывороток. Дополнительно надо иметь стандартные эритроциты группы А(II), В(III). Стандартные эритроциты готовятся из крови резус-отрицательных доноров. Требования, предъявляемые к этикеткам и условия те же, что для стандартных сывороток. Длительность хранения 2-3 суток при температуре +4 – +8 град.С.

Техника определения следующая: к нанесенным в два ряда стандартным сывороткам, внизу дополнительно наносят ряд стандартных эритроцитов А(II), В(III). От исследуемого кровь забирается в пробирку. Ей дают отстояться. Затем к стандартным эритроцитам добавляют сыворотку исследуемой крови, а в стандартные сыворотки вносят эритроциты исследуемой крови. Наблюдение за реакцией проводят в течение 5-ти минут. Через 3 минуты в каждую каплю, где наступила агглютинация, добавляют каплю физиологического раствора, продолжая наблюдение до истечения 5-ти минут. Результаты реакций, полученные при помощи стандартных эритроцитов и стандартных сывороток должны совпадать, т.е. указывать на содержание агглютиногенов и агглютининов, соответствующих одной и той же группе крови.


Определение резус-принадлежности.

В повседневной практике определение резус- фактора производится либо с помощью антирезусных (групповых или универсальных) сывороток на чашках Петри в водяной бане, либо с помощью сыворотки для экспресс метода в пробирках без подогрева. Последний метод получает все большее распространение и является предпочтительным.

Метод определения резус-фактора в чашках петри наводяной бане.

Выпускаются универсальные анти-резусные сыворотки, пригодные для определения резус-фактора в эритроцитах всех групп, и групповые антирезусные сыворотки, пригодные для определения резус-фактора только в крови указанной группы. Во втором случае перед проведением определения резус-фактора необходимо определить группу крови, в остальном методика определения совпадает. Использовать эритроциты свежей, не свернувшейся крови для определения резус-фактора не следует. При помещении свежей крови на водяную баню, выпадает фибрин, что может искажать результат. Лучше пользоваться свободными эритроцитами после взятия крови в пробирку и образования в ней сгустка. В чашку Петри наносятся две капли антирезусных универсальных или групповых, если известна группа крови, сывороток разных серий, в которые в соотношении 1:10 вносятся исследуемые эритроциты. Чашка помещается на водяную баню, где температура воды автоматически поддерживается в среднем +46 – +48 град.С. В качестве водяной бани можно использовать любой сосуд емкостью не менее 5-ти литров (при меньшем количестве воды температура ее быстро падает). Чтение результата производят через 10 минут. Если исследуемые эритроциты образуют агглютинаты, это значит они содержат резус-фактор. Если агглютинация отсутствует, исследуемая кровь относится к резус-отрицательному типу. При чтении результата возможны два типа ошибок, которые не зависят от правильного выполнения методики определения. Это так называемый ложно-положительный и ложно-отрицательный результат. Ложный положительный результат часто встречается при исследовании крови больных злокачественными новообразованиями, при заболевании крови и хронических гнойно-воспалительных процессов, при печеночной патологии. Он обусловлен аутоагглютинацией. Для ее проверки в сыворотку больного вносят его собственные эритроциты в соотношении 1:10 и выдерживают в чашке Петри на водяной бане 10 минут. После этого читают результат. При наличии аутоагглютинации видна положительная реакция эритроцитов с собственной сывороткой с образованием агглютинатов.


Ложный отрицательный результат может быть получен при исследовании крови длительных сроков хранения. Определение резус-фактора в крови со сроком хранения свыше 15 суток становится затруднительным, однако способность давать посттрансфузионные реакции такая кровь сохраняет. Примечание: при определении резус-фактора добавлять физиологический раствор в ходе реакции запрещается.

Определение резус-фактора в пробирках без подогрева.

Для проведения данного исследования используется универсальная антирезусная сыворотка для экспресс-метода (анти-Д). Исследуемая кровь берется из пальца, непосредственно перед исследованием или консервированная, также эритроциты из пробирки после образования сгустка и отстаивания сыворотки. На дно пробирки наносят одну каплю стандартной антирезусной сыворотки для экспресс-метода и добавляют одну каплю исследуемой крови. После чего осторожными движениями добиваются, чтобы образовавшаяся жидкость растекалась по стеклу пробирки. Через 3 минуты после внесения эритроцитов добавляют в пробирку 2-3 мл физиологического раствора. Пробирку осторожно переворачивают 2-3 раза. Затем читают результат. Наличие глыбок агглютинатов свидетельствует о содержании в эритроцитах резус-фактора. В случае резус-отрицательной крови агглютинация не наблюдается.


Проба на групповую совместимость крови донора и реципиента.

Проба на резус-совместимость крови донора и реципиента.

Проба на групповую совместимость крови донора и реципиента производится с каждым флаконом, непосредственно перед гемотрансфузией, одновременно с определением группы донора и реципиента при комнатной температуре (от +15 до +25 град.С). С помощью пробы на групповую совместиммость устанавливают наличие или отсутствие в крови реципиента антител, направленных против донорской крови из данного флакона. Природа антител, если они обнаруживаются, этой пробой не устанавливается. На тарелку наносят сыворотку реципиента, в нее помещают в 10 раз меньшую каплю донорской крови. Результат читают через 5 минут, при наличии агглютинации добавляют каплю физиологического раствора и продолжают наблюдение еще 2 минуты. При отрицательном результате агглютинация не наступает и капля остается равномерно окрашенной в красный цвет. Это означает, что в сыворотке реципиента антитела против эритроцитов донорской крови отсутствуют и противопоказаний к переливанию этой пробой не установлено. Проба на резус-совместимость крови донора и реципиента производится также с каждым флаконом. Эта проба дает возможность выяснить наличие или отсутствие антител системы резус в крови реципиента, направленных против эритроцитов донора. В чашку Петри помещают сыворотку реципиента, а в нее в 10 раз меньшую каплю крови донора. Чашку помещают на водяную баню с температурой +46 – +48 град.С и через 10 минут читают результат. При положительном результате видна агглютинация эритроцитов, выраженная в большинстве случаев неярко. При отрицательном результате агглютинация не наступает и капля остается равномерно окрашенной в красный цвет. Положительный результат указывает на то, что в сыворотке реципиента содержатся антитела, вызывающие агглютинацию эритроцитов донора. Это значит, что кровь несовместима и ее переливать нельзя. Отрицательный результат – отсутствие агглютинации указывает и на то, что противопоказаний к переливанию данной пробой не выявлено, по исследуемым параметрам кровь совместима. Постановка пробы на резус-совместимость может в отдельных случаях сопровождаться возникновением ложной положительной реакции – псевдоагглютинации донорских эритроцитов в сыворотке реципиента. Дифференцировать истинную и псевдоагглютинацию можно только при рассмотрении под микроскопом свежеприготовленного мазка. Результат учитывается при малом увеличении микроскопа с окуляром.(х15). Истинная агглютинация дает глыбки агглютинатов в виде "тутовых ягод" или "гроздей винограда". При ложном положительном результате на фоне свободных эритроцитов видны разной длины цепочки эритроцитов, сложившихся в монетные столбики.


Следует помнить:

Проба на резус-совместимость не заменяет пробы групповой совместимости и ограничиваться ее проведением нельзя. Практика показывает, что в ряде случаев проба на резус-совместимость бывает отрицательной, в то время как на групповую совместимость дает четко положительный результат, что указывает на недопустимость переливания крови этого донора.


Биологическая проба.

Биологическая проба проводится с каждым флаконом переливаемой крови. После пункции вены больного, струйно, трехкратно, с интервалами в три минуты переливают по 15 мл крови. Для предупреждения свертывания крови в игле во время 3-х минутного интервала трансфузию продолжают редкими каплями (20 капель в минуту). Если за это время реакция на переливание (беспокойство, чувсво жара во всем теле, боли в животе, пояснице, голове, цианотично-красная окраска лица, сменяющаяся бледностью, снижение артериального давления, учащение дыхания и пульса) не выявляется, то можно переливать требуемую дозу. У детей кровь при проведении биопробы переливают струйно трехкратно с интервалами по три минуты в следующих дозах:

  1. детям до 2-х лет – 2 мл;

  2. до 5-ти лет – 5 мл;

  3. до 10-ти лет – 10 мл;

  4. старше 10-ти лет – 15 мл.

Только быстрое введение несовместимой крови дает стремительное нарастание в крови реципиента продуктов распада и проявляется клинически сразу же. Медленное введение крови создает накопление продуктов распада постепенно и видимое проявление несовместимости может наступить слишком поздно, когда большая часть или вся кровь уже перелита. При переливании крови больному, находящемуся под наркозом, необходимо обращать внимание на величину артериального давления, частотупульса и дыхания, окраску кожных покровов. После переливания первых 100 мл крови из каждого флакона, в чистую сухую пробирку с несколькими каплями гепарина берут 5 мл крови и центрифугируют. Наличие розовой окраски плазмы (а также и учащенный пульс, и падение артериального давления) указывает на гемолиз и на то, что перелита несовместимая кровь. Если плазма имеет обычную окраску, то кровь признают совместимой и можно продолжать трансфузию.


Правила хранения и оценка годности крови к переливанию.

Флаконы с кровью должны храниться в специально отведенном для этого холодильнике. Оптимальная температура хранения консервированной крови от +4 до +6 град.С. Срок годности к переливанию составляет при этом 21 день. Допустимо хранение крови и при температуре +8 – +12 град. С, но в этих условиях срок годности сокращается соответственно на 5 -10 суток. Следует отметить, что надо стремиться переливать кровь небольших сроков хранения (1 – 3 суток), использование для трансфузий крови со сроком хранения при +4 – +6 град.С свыше 10 суток нецелесообразно, всвязи со значительным снижением при этом кислородно-транспортной функции эритроцитов. В процессе хранения рекомендуется как можно меньше передвигать флаконы и тем более взбалтывать кровь. До проведения всех проб на совместимость и проверки группы крови и резус-фактора консервированной крови, следует убедиться в пригодности крови к переливанию. Для этого осторожно, чтобы не взболтать кровь, берут флакон и осматривают его, оценивая состояние герметичности упаковки, этикетки и содержимого флакона. Кровь признается годной лишь в том случае, если на флаконе нет трещин, пробка плотно прилегает к горлышку и кровь не поступает сквозь проколы в пробках. Этикетка флакона должна быть сохранена так же, как и номер флакона, группа крови, резус-фактор, дата заготовки и т.д. должны на ней отчетливо читаться. Наличие хотя бы одного из перечисленных дефектов позволяет считать кровь не пригодной к переливанию. Особое значение имеет оценка вида крови во флаконе. Кровь не пригодна к переливанию, если в ней определяется бактериальное загрязнение, гемолиз. Бактериальное загрязнение проявляется наличием белой мути или пленки на поверхности плазмы. Часто беловатый налет появляется в хилезной ("жирной") крови. Для быстрого определения природы беловатого налета следует флакон поместить на 30 минут в термостат или водяную баню при температуре +34 – +37град.С. В этих условиях хилезная пленка исчезнет, а если имеет место бактериальное загрязнение, то она сохраняется. Наличие гемолиза устанавливается просматриванием флакона с кровью на свет. Если в крови нет гемолиза, то при длительном стоянии в ней четко определяется три слоя. Верхний слой желтоватый, опалесцирующий, прозрачный – плазма, нижний слой – темно-красный – осевшие эритроциты и тромбоциты и на его поверхности тонкий беловатый лейкоцитарный слой. При гемолизе плазма имеет розовую окраску. Если флакон оказался взболтанным, допустимо взять из него 5-7 мл крови и отцентрифугировать. Образование золотисто-желтого слоя надосадочной жидкости указывает наотсутствие гемолиза. При гемолизе отстой будет иметь розоватый или красно-бурый оттенок.